Tincion

Manual de Procedimientos
1
Tinción e interpretación
de la Muestra de
Citología Cervical

2
Manual de Procedimientos. Tinción e interpretación
de la Muestra de Citología Cervical.
Primera Edición 2006.
D.R. © Centro Nacional de Equidad de Género y Salud Reproductiva.
Secretaría de Salud.
Homero 213, piso 7
Col. Chapultepec Morales
Deleg. Miguel Hidalgo
México, D.F., C.P. 11570.

3
Contenido
Introducción
Proceso de Interpretación Citológica
I. Objetivo del manual
II. Marco Jurídico
III.Procedimientos
1. Recepción de laminillas
de citología exfoliativa
cérvico – uterina.
2. Tinción y montaje
de las laminillas
3. Lectura e interpretación
de las muestras de citología
exfoliativa cérvico – uterina
4. Control de calidad interno
Glosario de términos
Anexo: Figuras
5
6
7
8
10
16
27
35
42
47

5
El cáncer cérvico uterino es un padecimiento que
puede ser detectado a través de pruebas de tami-
zaje como la citología exfoliativa o Papanicolaou y
la visualización directa con ácido acético. No obs-
tante que existen pruebas biomoleculares para de-
tectar diferentes tipo de VPH (virus de papiloma
humano) como son la Reacción de la Polimeriaza
en Cadena (RPC) y la captura de híbridos, la cito-
logía es el método más usual en los programas
de prevención de cáncer cérvico uterino, debido a
que es una prueba de bajo costo y accesible a la
mayor parte de la población, y ha demostrado ser
efectiva en la reducción de la incidencia y mortali-
dad por esta patología en muchos países.
Una parte fundamental del programa de preven-
ción de cáncer cérvico uterino es la existencia de
infraestructura de salud adecuada, donde el la-
boratorio de citología es un componente esencial
dentro del programa y parte del éxito del mismo.
El laboratorio de citología debe garantizar niveles
de alta calidad, por lo que es recomendable que
sus servicios se encuentren centralizados. A ma-
yor centralización, mayor eficiencia, por lo que en
nuestro país sería importante que los laboratorios
se organicen a nivel estatal o regional, dependien-
do de su población de mujeres a atendider.
De acuerdo con la Organización Mundial de la Sa-
lud (OMS, 2002), un laboratorio de citología de-
bería procesar un mínimo de 15 a 25 mil citologías
por año o cincuenta laminillas por citólogo en una
jornada de ocho horas diarias. El tiempo estimado
para la interpretación de una laminilla es de aproxi-
madamente seis minutos, cinco para la lectura y
uno para escribir el reporte.
Para brindar un servicio adecuado en el laboratorio
de citología se deben hacer estimaciones de los
requerimientos de citotecnólogos necesarios para
atender a su población blanco, es decir, el personal
debe ser proporcional al volumen de laminillas que
Introducción
se espera recibir para alcanzar una cobertura de
tamizaje de 70 a 80%.
El control de calidad debe considerar condiciones de
trabajo óptimas, las que incluyen manuales de pro-
cedimientos técnicos y normas de seguridad, de
acuerdo con las Normas Oficiales Mexicanas para el
manejo de deshechos, materiales infecciosos, con-
taminantes, inflamables y tóxicos. Los manuales
deberán estar siempre actualizados, disponibles y
seguirse tal como se indica en cada uno de ellos.
Otro de los aspectos y tal vez uno de los más im-
portantes del control de calidad del laboratorio,
es la capacidad técnica y profesional del perso-
nal que ahí labora. El responsable del laboratorio
debe ser un médico con amplia experiencia en la
interpretación citológica: un citólogo, patólogo o
citopatólogo. Además, el personal de apoyo los
citotecnólogos, deben contar con una formación
calificada y con experiencia suficiente para lograr
un grado óptimo de certeza diagnóstica, por lo
que se debe enfatizar la importancia de que el
personal que ahí se desempeña participe en pro-
gramas de educación continua. Con lo anterior se
espera realizar un trabajo óptimo que garantice la
efectividad y eficiencia de los laboratorios de ci-
tología cérvical.
Este manual requerirá de actualización periódica
para incorporar los avances tecnológicos y cientí-
ficos más recientes y las posibles modificaciones
que pudiera experimentar la organización de los
servicios de salud.
De acuerdo con lo anterior será imperioso incluir
un apartado referente al Control de Calidad Ex-
terno, lo cual será importante que se realice de
manera sistemática, a través de diferentes instancias
e instituciones, aplicando evaluaciones académicas
a los integrantes del equipo del laboratorio y de
reproducibilidad diagnóstica.

6
Limites del proceso.
Para efectos de este Manual de Procedimientos se
delimita el proceso principal a los pasos directos de
la interpretación citológica que se realizan al interior
del laboratorio de citología. Se excluyen aquellos pro-
cesos de interfase, localizados fuera del laboratorio de
citología.
Inicio del proceso.
El proceso productivo principal del Laboratorio de Ci-
tología se inicia con un paso de planificación entre el
laboratorio de citología y las unidades de salud que
toman muestras y la dirección nacional y local del Pro-
grama de Cáncer Cérvico Uterino. Es este el paso que
permite que el laboratorio reciba unidades muestra-so-
licitud de examen de Papanicolaou en los laboratorios
de citología que funcionan en el contexto del Programa
de Cáncer Cérvico Uterino.
Se puede decir que este proceso finaliza exitosamente
si se alcanza lo siguiente:
a) Seguridad
Mantener durante todo el proceso la identidad o con-
cordancia entre la solicitud - muestra - paciente - in-
forme de resultados para el total de las unidades.
b) Efectividad
Los resultados de los exámenes de Papanicolaou
informados por el laboratorio corresponden a las
laminillas y son válidos. Esto quiere decir que si una
muestra tiene células preinvasoras o invasoras, és-
tas deben ser detectadas como tales y traducirse
en el diagnóstico; por el contrario, si una muestra
carece de ellas, el laboratorio debe establecer que
el examen es negativo en cuanto a premalignidad
o malignidad.
c) Adecuación
Los resultados de los exámenes de Papanicolaou se
reportan con base en una clasificación de reporte
universal o que sea homologable a las clasificaciones
vigentes
Proceso de Interpretación Citológica
d) Oportunidad
El tiempo de procesamiento de los exámenes de
Papanicolaou hasta el reporte del resultado es ra-
zonable para efecto de las decisiones clínicas pos-
teriores y satisfacción de las mujeres (21 días como
máximo).
e) Continuidad en el registro
de la información
Los resultados de los exámenes de Papanicolaou
están registrados en el Sistema de información del
laboratorio, para aportar información y apoyar el
diagnóstico de la paciente y mejorar la calidad del
laboratorio.
f) Continuidad en el resguardo de laminillas
Los exámenes de Papanicolaou informados están res-
paldados en el laboratorio por laminillas citológicas
debidamente identificadas, debidamente teñidas, de-
bidamente montadas, adecuadamente archivadas,
recuperables fácilmente cuando se requieran y man-
tenidas por el tiempo requerido (cinco años para las
laminillas negativas y permanentemente para las la-
minillas positivas) y apropiado a las necesidades del
seguimiento de las pacientes.
g) Eficiencia
Los recursos del laboratorio se usan óptimamente
para obtener exámenes de Papanicolaou de má-
xima calidad.
h) Satisfacción de los clientes
Los exámenes de Papanicolaou reportados y las
consultas realizadas al personal del laboratorio,
relacionado con dichos exámenes, satisfacen las
necesidades y expectativas de los centros de salud
y de los pacientes que son de responsabilidad del
laboratorio.
i) Higiene y seguridad
El proceso de citodiagnóstico se realiza protegiendo
la salud del personal del laboratorio y preservando el
medio ambiente.

7
Establecer los lineamientos generales de operación
que contribuyan a mejorar la calidad de los procesos
y resultados que realiza tanto el personal secretarial,
como el de capturistas, citotecnólogos, citólogos,
técnicos en tinción y patólogos, en relación con la
I. Objetivo del Manual
recepción, tinción, montaje, lectura e interpretación,
archivo y control de calidad de las muestras citológi-
cas de las mujeres atendidas en las unidades médicas
de la Secretaría de Salud, para su procesamiento y la
detección oportuna del cáncer cérvico-uterino.

8
Constitución Política de los Estados Unidos
Mexicanos.
D.O.F. 05/II/1917.
Ref. D.O.F. 03/II/1983, 07/IV/1986, 06/IV/1990,
27/VI/1990, 06/I/1992, 28/I/1992, 05III/1993,
20/VIII/1993, 03/XI/1993, 25/X/1993, 19IV/1994,
31/XII/1994, FE DE ERRATAS: 03/I/1995, 22/
VIII/1996, 20/III/1997.
LEYES
Ley General de Salud.
D.O.F. 07/II/1984.
Ref: D.O.F. 27/V/1987, 23/XII/1987, 14/VI/1991,
07/V/1997.
Ley Federal de Responsabilidades
de los Servidores Públicos.
D.O.F. 31/XII/1984.
Ref. D.O.F. 11/I/1991, 21/VII/1992, 10/I/1994,
12/XII/1995, 24/XII/1996, 04/XII/1997.
Ley Orgánica de la Administración Pública
Federal
D.O.F. 29-XII-1992
Ref…
REGLAMENTOS
Reglamento de la Ley General de Salud en Ma-
teria de Prestación de Servicios de Atención
Médica.
D.O.F. 14/V/1986.
Reglamento de la Ley General de Salud en Ma-
teria de Investigación para la Salud.
D.O.F. 06/I/1987.
Reglamento Interior de la Comisión Interinsti-
tucional para la Formación de Recursos Huma-
nos para la Salud.
D.O.F. 28/XI/1987.
II. Marco Jurídico
Reglamento Interno de la Comisión Nacional
de Arbitraje Médico.
D.O.F. 12/X/1996.
Aclaración D.O.F- 07/X/1996.
Reglamento Interior de la Secretaría de Salud.
D.O.F. 06/XII/1997.
DECRETOS
Decreto por el que la Secretaría de Salubridad
y Asistencia organizará el registro Nacional de
Cáncer, como programa permanente destina-
do a la prevención información y asesoría en
la lucha contra el cáncer.
D.O.F. 14/XI/1982.
ACUERDOS DEL SECRETARIO.
Acuerdo No. 71.
Por el que se crea el sistema de capacitación y
Desarrollo del Sector Salud.
D.O.F. 20/IV/1987.
Acuerdo No. 79.
Relativo a la aplicación, instrumentación y
actualización del manual para la referencia
y contrarreferencia de pacientes y envió de
muestras y especímenes.
D.O.F. 22/IX/1988.
NORMAS OFICIALES MEXICANAS.
Norma Oficial Mexicana NOM/014/SSA2/1994,
para la prevención, tratamiento y control del
cáncer del cuello del útero (modificada, en 2006).
Norma Oficial Mexicana NOM -017-SSA2-1994,
Para la Vigilancia Epidemiológica.
Norma Oficial Mexicana NOM-168-SSA1-1998,
Del expediente clínico

9
NOM 087-ECOL-SSA1-2002 Para el manejo de
residuos peligrosos biológico infecciosos.
NOM -005-STPS-1998 Condiciones de seguri-
dad e higiene en los centros de trabajo para
el manejo, transporte y almacenamiento de
sustancias químicas peligrosas.

10
1. Procedimiento para la Recepción
de Laminillas de las Muestras
de Citología Cérvico Uterina

11
1.0 Propósito
Establecer cada una de las actividades que debe
realizar el personal secretarial, administrativo y
de apoyo, para hacer la recepción de muestras de
citología cérvico uterina de manera adecuada en
los laboratorios de citología de la Secretaría de
Salud.
2.0 Alcance
2.1 A nivel interno el procedimiento es apli-
cable en los laboratorios de citología cérvico uteri-
no de cada una de las entidades federativas.
2.2 A nivel externo el procedimiento es apli-
cable a los laboratorios de citología cérvico ute-
rino, que son responsabilidad de la Secretaría de
Salud.
3.0 Políticas de operación, normas
y lineamientos
3.1 La Norma Oficial Mexicana NOM 014
SSA2-1994, para la prevención, detección, diag-
nóstico, tratamiento y vigilancia epidemiológica
(modificada en 2006), es un documento técnico
de observancia obligatoria para todas las unidades
de los sectores público, social y privado a nivel na-
cional, por lo que las actividades y tareas en el
laboratorio de citología encuentran su sustento en
ella básicamente.
3.2 La vigilancia para la aplicación de los
lineamientos respecto a la entrega recepción
de las solicitudes y laminillas en los laborato-
rios de citología cérvico uterina corresponde a
la Secretaría de Salud tanto del nivel federal
como estatal, en sus respectivos ámbitos de
competencia.
3.3 El jefe o coordinador del laboratorio
deberá verificar que el personal encargado de la
recepción de las muestras citológicas realice las ac-
tividades correspondientes.
3.4 El incumplimiento de estas políticas y
normas se sancionará conforme a la Ley Federal
de Responsabilidades de los Servidores Públicos.

12
Uno de los objetivos de la recepción es lograr que
las muestras del examen de Papanicolaou sean
representativas de las pacientes, adecuadamente
recolectadas, preservadas, etiquetadas, transpor-
tadas y que los formatos de solicitud y reporte de
resultados (FSRR) sean legibles y contengan toda
la información definida como necesaria.
Así mismo, mantener un flujo relativamente es-
table en tiempo para optimizar la capacidad insta-
lada del laboratorio, para no sobrecargar o subuti-
lizar el laboratorio.
Si queremos que la recepción de muestras tenga
éxito, se deberá realizar lo siguiente:
• El flujo de muestras - solicitud recibidas en cuan-
to a volumen y calendario, se deberá ajustar a la
programación establecida.
• Toda muestra - solicitud que llegue al laboratorio
debe cumplir con cada uno de los requisitos para
ser aceptada en el laboratorio.
• Todas las muestras - solicitud deberán ser iden-
tificadas con un número único correlativo, en el
laboratorio, manteniendo la correspondencia en-
tre ambas (muestra solicitud).
• La recepción e identificación de muestras–so-
licitud, deberá quedar debidamente documentada
en el sistema de información del laboratorio.
Un aspecto importante en cuanto a seguridad la-
boral es que:
La laminilla de la unidad muestra-solicitud contiene
material biológico proveniente del cuello uterino y el
personal del laboratorio deberá tomar las precauciones
del caso cuando retire el material de los maletines o
cajas, revise y de número a las muestras-solicitud.
Recepción de muestras

13
Descripción del procedimiento
Secuencia de etapas
‘
1.0 Recepción de laminillas
de citología cérvico uterina.
Imagen 1
Actividad
1.1 Elaborar y establecer una calendarización
para la recepción de los formatos de solicitud
y entrega de resultados de todas aquellas ju-
risdicciones o unidades médicas de la entidad
que sean responsabilidad del laboratorio.
1.2 Recibir procedente de las unidades médi-
cas y/o jurisdicciones la relación o nómina de
envío de los formatos de solicitud (FSYRR) y
reporte de resultados adjuntas a las laminillas
de las muestras de citología cérvico uterinas.
Se corroborará que las laminillas recibidas se
ajusten en volumen, fecha y hora establecida.
1.3 Proceder a abrir las cajas o maletines con-
tenedores de las muestras-solicitud, para veri-
ficar el número total de unidades recibidas
contra la nómina enviada por las unidades
médicas, en donde se señalan los nombres
de las pacientes cuyas muestras se envían y
el total de láminas enviadas.
1.4 Verificar que la laminilla adjunta al FSYRR
corresponda a la paciente y esté marcada
con las iniciales del nombre y apellidos de la
mujer, fecha de la toma y unidad aplicativa.
1.5 Verificar que los FSYRR contenga los
datos completos de identificación de la pa-
ciente, y que estén debidamente llenados y
legibles en los siguientes rubros: I. Identifi-
cación de la unidad; II. Identificación de la
solicitante y III Antecedentes.
1.6 Rechazar las muestras citológicas que
estén rotas, estrelladas o maltratadas que no
se puedan reparar, así mismo, cuando la
laminilla esté separada de la solicitud y sin
identificación o cuando el FSYRR no esté de-
bidamente llenado, no esté completo o no
sea legible la letra.
Responsable
Jefe o coordinador del
laboratorio
Personal administrativo,
técnico y auxiliares

14
Descripción del procedimiento (continúa)
Secuencia de etapas
‘
Fig. 1
Actividad
1.7 Elaborar una relación de aquellas lami-
nillas que hayan sido rechazadas y regresar-
las a la jurisdicción o a la unidad según esté
establecido en el ciclo logístico, y anotar el
código y causa del rechazo, con la finalidad
de que se vuelva a citar a la mujer y hacer
nuevamente la toma.
1.8. Cotejar la relación de envío de citologías
de las unidades con cada una de las lamini-
llas y los formatos de solicitud y reporte de
resultado, para posteriormente firmar de co-
mún acuerdo la recepción.
1.9 Registrar la entrada de cada estudio al
laboratorio, numerando con una foliadora los
FSYRR aceptados que ingresen a procesamien-
to diariamente. Este número es progresivo
anual y deberá anotase el número en la libreta
de control o a través del SICAM (Sistema de
Información de Cáncer en la Mujer).
1.10 Verificar que las jurisdicciones hayan
capturado la información correspondiente
en el formato de solicitud y reporte de re-
sultados de citología cervical así: I. Identifi-
cación de la unidad; II. Identificación de la
solicitante y III Antecedentes en el formato
de solicitud y reporte de resultados de cada
una de las laminillas a través del Sistema de
Información de Cáncer en la Mujer, SICAM-
PROCACU, y poder capturar la información
correspondiente en el laboratorio.
1.11 Pasar todos los formatos de solicitud y
reporte de resultados de citología cervical al
personal que realiza la captura para ingresar
la información al SICAM, antes de pasar las
laminillas al área de tinción.
Responsable
Capturista

15
Descripción del procedimiento (continúa)
Secuencia de etapas
‘
Fig. 1
Actividad
1.12 Entregar al técnico en tinción o citotec-
nólogo las laminillas, colocar en una canastilla
en orden correlativo con el número de regis-
tro citológico, acompañadas de su formato de
solicitud y reporte de resultados y dar inicio a
la tinción y el montaje. Cuidar de no ensuciar
los formatos de solicitud y resultado.
TERMINA PROCEDIMIENTO
Responsable

16
2. Procedimiento para la Tinción
y Montaje de Laminillas de las
Muestras de Citología Cérvico
Uterina

17
1.0 Propósito
Establecer cada una de las actividades que debe
realizar en los laboratorios de citología de la
Secretaría de Salud, para realizar un proceso de
calidad, el técnico en tinción o el citotecnólo-
go capacitado para la tinción y montaje de las
muestras citológicas.
2.0 Alcance
2.1. A nivel interno el procedimiento es aplica-
ble a los laboratorios de citología cérvico uterina
de cada una de las entidades federativas.
2.2. A nivel externo el procedimiento es aplica-
ble a los laboratorios de citología cérvico uterina,
que son responsabilidad de la Secretaría de Salud.
3.0 Políticas de operación, normas y lineamientos
3.1. La Norma Oﬁcial Mexicana NOM 014
SSA2-1994, para la prevención, detección, diag-
(modiﬁcada 2006), es un documento técnico de
observancia obligatoria para todas las unidades
de los sectores público, social y privado en el ám-
bito nacional, y las actividades y tareas en el labora-
torio de citología encuentran su sustento básica-
mente en ella.
3.2. La vigilancia para la aplicación de los linea-
mientos respecto a la tinción y montaje en los labo-
ratorios de citología cérvico uterina corresponde a
la Secretaría de Salud tanto del nivel federal, como
estatal, en sus respectivos ámbitos de competencia.
3.3. El director o coordinador del laboratorio
tinción y montaje de las muestras citológicas rea-
lice las actividades correspondientes.
3.4. El incumplimiento de estas políticas y nor-
mas se sancionará conforme a la Ley Federal de
Responsabilidades de los Servidores Públicos.

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El área de tinción debe estar físicamente separada
de otros espacios, con una excelente ventilación ha-
cia el exterior, ya que debido a los contaminantes
químicos, es una área de alto riesgo.
Deben estar señalizadas las medidas a tomar en caso
de siniestro, debido a que muchas de las sustancias
que aquí se manejan son inflamables, por lo que
es importante contar con regadera antiincendios y
extintores, y de igual manera, también debe contar
con campana de extracción de gases tanto para la
tinción, como para el montaje.
En cuanto a los insumos y material se recomienda
sean de buena calidad, como: las cajas de vidrio, los
cubreobjetos y porta objetos, etc.
Se podrá obtener una tinción de calidad si:
• Todas las laminillas aceptadas son procesadas en
el tiempo establecido y se mantiene su integridad e
identificación durante el proceso.
• Todas las laminillas se tiñen obteniendo una bue-
na definición del detalle nuclear y una transparencia
del citoplasma para poder observar la diferenciación
celular.
• Todas las laminillas están montadas adecuada-
mente, lo que significa que el frotis está protegido
de sequedad, del encogimiento y de desteñirse por la
oxidación. Además, proporciona una imagen trans-
parente en el microscopio.
• Las charolas para los citotecnólogos están prepara-
das correctamente, lo que significa que contienen el
número de laminillas que corresponde, están libres
entre sí (no pegadas) y colocadas en orden correla-
tivo con el número de registro citológico.
Respecto a los colorantes se recomienda se compren
listos para su uso:
• Colorante de Hematoxilina
• Colorante Orange G6
• Colorante EA 50
Se deberán tener los siguientes cuidados:
Verificar que las soluciones estén rotuladas indicando:
fecha de compra, nombre de la solución, titulación,
concentración, advertencias para su manejo y fecha
de vencimiento.
Mantener los colorantes en envases oscuros, bien
tapados porque son sensibles a la luz y se oxidan a
temperatura ambiente.
El tren de tinción debe cambiarse cada 2000 lamini-
llas teñidas o cada 6 u 8 semanas.
Se deberá realizar el mantenimiento general y especí-
fico de los colorantes, de la siguiente manera:
Mantenimiento general. Filtrar los colorantes cada
ocho días; rutinariamente y cuando se requiera se
hará diariamente, ésto deberá hacerse antes de usar-
los, para remover cualquier material celular que se
haya desprendido de las laminillas. Se podrá usar un
papel filtro de mediana velocidad (Whatman N° 1).
Limpiar las cajas de todo residuo de colorante.
Controlar diariamente el nivel de las soluciones del
tren de tinción para asegurar que las laminillas pro-
cesadas se cubran totalmente. Rellenar las cubetas
con el colorante correspondiente.
El mantenimiento específico se refiere al cuidado de
los tres colorantes de manera particular, y se detalla
posteriormente en cada uno de los pasos correspon-
dientes a su uso en el proceso de tinción.
Tinción
Es importante señalar que éste es un procedimiento
que tiene variaciones e incluso preferencias persona-
les en la coloración; para efectos de este manual se
incluye la tinción de Papanicolaou modificada e in-
cluye 24 pasos, y se refiere al método regresivo para
la tinción nuclear.
Procedimiento: tinción y montaje

19
La tinción de Papanicolaou es un método de tinción
policrómico que consta de una tinción nuclear y
un contraste citoplásmico. Tiene como ventaja una
buena definición del detalle nuclear, evidenciando el
patrón de cromatina; un aspecto transparente del ci-
toplasma, que permite apreciar los grados de diferen-
ciación celular y actividad metabólica.
La tinción de Papanicolaou utiliza tres colorantes: la
Hematoxilina que tiñe selectivamente los núcleos, el
Orange G y la Eosina Alcohol 50 que tiñe los citoplas-
mas. Los pasos de la tinción están entremezclados
con soluciones que hidratan, deshidratan y enjuagan
las células.
La hidratación antes de la inmerción en Hematoxilina
puede ser gradual, usando alcohol en concentracio-
nes decrecientes (80, 70, 50%) o abrupta, sumer-
giendo el material celular desde altas concentracio-
nes de alcohol y al agua directamente.
El enjuague se realizara con agua corriente y/o agua
destilada, pero siempre hay que verificar que el pH
del agua se encuentre entre 6.5 y 7.
La tinción de Papanicolaou tiene cuatro pasos
principales:
a. Fijación.
b. Tinción del núcleo con Hematoxilina.
c. Tinción de citoplasma con Orange G y EA.
d. Aclaramiento.
Tinción del núcleo
La Hematoxilina es un colorante natural que tiene
afinidad por la cromatina.
Existen dos métodos para teñir el núcleo, el progresi-
vo y el regresivo. En el método progresivo se tiñe el
núcleo con la intensidad del color deseada y en el
regresivo se sobretiñe con una Hematoxilina no acidi-
ficada, luego se remueve el exceso de tinción con áci-
do clorhídrico diluido. Después de algunos minutos
en Hematoxilina las células son deshidratadas gradual
o abruptamente antes de efectuar las tinciones de con-
traste.
Tinción del citoplasma
La tinción con Orange G es una tinción monocromáti-
ca que colorea la queratina de un naranja brillante y
penetra rápidamente al citoplasma. La queratina no
se encuentra en condiciones normales en el epitelio
cervical vaginal (se encuentra en carcinomas que-
ratinizados).
La Eosina A 50 es una tinción policroma compuesta
de Eosina, verde luz y café Bissmark. La Eosina tiñe
el citoplasma de las células escamosas maduras, nu-
cleolos y cilios. El verde luz tiñe las células que son
metabólicamente activas, como las células parabasa-
les, intermedias y columnares. Las células superficiales
se tiñen rosadas con la Eosina y por ello se describen
como eosinofílicas. Las células parabasales e interme-
dias se tiñen de verde azul, dependiendo del tiempo
de la tinción EA y se llaman cianofílicas.
Aclaramiento.
Es el paso final de la tinción y produce la trans-
parencia celular. Se suele usar Xilol como solución
aclaradora.
Montaje de las láminas.
El montaje es la unión del portaobjetos con el
cubreobjetos mediante resina sintética (en este
caso), con el fin de obtener una muestra cubierta
y protegida contra el secado y arrugamiento del
material celular y sellado para evitar la oxidación
de la muestra.
El medio o sustancia utilizada para el montaje debe
ser soluble en el agente aclarante y debe tener un
índice de refracción que coincida con la muestra y el
cubreobjeto, logrando una imagen lo más transpa-
rente posible. Debe tener un pH neutro.

20
Inicio del procedimiento
Secuencia de etapas
‘
2.0 Tinción de laminillas de
citología cérvico uterina.
Fig. 2
Actividad
2.1 Recibir las laminillas en el área de tinción,
reparar las laminillas que fueron aceptadas y
preparar el tren de tinción.
2.2 Teñir las laminillas con el método de Pa-
panicolaou, esta tinción se realiza a base de
alcoholes, agua corriente, ácido clorhídrico al
5%, Hematoxilina de Harris, Orange G6, Eosina
Ácida 50 y Xilol.
2.3 Teñir y montar al menos 700 laminillas du-
rante la jornada.
2.4 Incluir 24 pasos para el tren de tinción, con
sus respectivas cajas de tinción.
2.5 Ubicar el tren de tinción en un lugar libre
de la luz solar directa, debe haber ventilación
adecuada. Cada una de las cajas de tinción que
conforman el tren deben estar cerradas y de-
bajo de la campana de extracción de gases.
2.6 Retirar diariamente, antes de iniciar el pro-
ceso de tinción, con papel absorbente o ﬁltran-
do la capa de aspecto metálico que se forma
sobre la Hematoxilina.
2.7 Mejorar la calidad de la Hematoxilina o
“madurarla” agregando 5 ml de ácido acético
glacial por cada litro de colorante.
2.8 Filtrar cada ocho días los colorantes Orange y
EA50,yaquepierdensupodermásrápidamente
que la Hematoxilina. Reemplazar los colorantes
cada semana, se deberá completar el volumen
inicial con colorante nuevo. Si la coloración es
pálida, o las células parecen grises, nebulosas o
sin colores nítidos y contrastantes, cambiar todo
el colorante. Si los colorantes no son de buena
calidad se deberán ﬁltrar diariamente.
Responsable
Técnico en tinción
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado

21
Inicio del procedimiento (continúa)
Secuencia de etapas
‘
Actividad
2.9 Potenciar la calidad de los colorantes
Orange G y Eosina A50 al agregar 2 gr. de áci-
do fosfomolíbdico por cada litro de colorante.
2.10 Reemplazar o desechar cada semana (de-
pendiendo de su estado) los alcoholes usados
para rehidratar o deshidratar las células antes
de la tinción del citoplasma.
2.11 Rotar los alcoholes utilizados después de
la tinción del citoplasma, es decir, se descarta
el alcohol que sigue a la tinción y los dos se
mueven a la primera y segunda posición, y el
alcohol nuevo se coloca en la tercera posición.
2.12 Desechar los alcoholes de enjuague si es-
tán muy teñidos.
2.14. Eliminar los contaminantes y residuos
cambiando los alcoholes y los colorantes de
acuerdo con las necesidades de cada laborato-
rio, previo lavado de las cajas de tinción.
2.15 Reemplazar la solución de ácido clorhí-
drico al 0.5% diariamente o de acuerdo con las
necesidades del laboratorio.
2.16 Cambiar el Xilol si aparece teñido con
colorantes del citoplasma.
2.17 Iniciar la tinción colocando las laminillas
numeradas correlativamente en el tren de tin-
ción, ordenadas, y todas en la misma posición.
2.18 Teñir las muestras colocadas en el tren de
tinción bajo la campana de extracción de gases,
según el método de Papanicolaou modiﬁcado,
en cajas de tinción de cristal o de acero ino-
xidable con tapa hermética y con capacidad
para 60 laminillas.
Responsable
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado

22
Secuencia de Etapas
‘
Fig.3
Actividad
2.18 Verificar, al iniciar la tinción, que las lamini-
llas no tengan más de 15 días de fijadas.
2.19 Si las laminillas tienen más de 15 días de
haberse fijado, realizar un lavado con agua co-
rriente o sumergirlas en alcohol de 96° durante
una hora, seguido por un lavado de agua desti-
lada para retirar el fijador y obtener una buena
calidad en la tinción.
2.20 Evitar la dilución de los colorantes o la al-
teración de los alcoholes, para no contaminar.
Escurrir la canastilla en papel absorbente cada
vez que se pase de una caja de tinción a otra,
sin llegar al secado del frotis.
2.21 Cuidar que las laminillas estén cubiertas
perfectamente con los colorantes, para lo cual
hay que verificar que las laminillas no estén
pegadas entre sí al momento de pasarlas por
cada una de las 24 cajas de tinción.
2.22 Vigilar que cada inmersión de las lamini-
llas colocadas en la canastilla dure 1 o 2 se-
gundos, efectuándose suavemente sin llegar a
tocar la base de la caja de tinción, para que no
se desprendan las células.
2.23 Mantener las cajas de tinción tapadas el
mayor tiempo posible durante el proceso de
tinción.
2.24 Mantener las laminillas en una caja de tin-
ción con Xilol hasta el momento del montaje.
Inicio de la tinción.
2.25 1er Paso. Sumergir las laminillas en la caja
de tinción con alcohol etílico al 96°, haciendo
10 inmersiones.
Responsable
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado

23
Secuencia de Etapas
‘
Fig. 4
Fig. 5
Fig. 6 y 7
Figs. 7 a 10
Figs. 11 a 14
Fig. 15
Fig. 16 y 17
Actividad
2.26 2° Paso. Pasar la canastilla por agua co-
rriente, hasta que el agua se aclare, posterior-
mente dejar escurrir la canastilla.
2.27 3er Paso. Sumergir las laminillas en la
caja de tinción con agua destilada, haciendo
10 inmersiones.
2.28 4° Paso. Sumergir en la caja de tinción
con Hematoxilina de 2 a 5 minutos
2.29 5° Paso. Pasar las laminillas por agua
corriente, hasta que el agua se aclare, poste-
riormente dejar escurrir la canastilla.
2.30 6° Paso. Fraccionamiento: sumergir la canas-
tilla en la caja de tinción con ácido clorhídrico + al-
cohol etílico de 96°, haciendo de 3-5 inmersiones.
2.31 7° Paso. Sumergir las laminillas en la
caja de tinción con agua destilada, haciendo
10 inmersiones.
2.32 8° Paso. Sumergir la canastilla en la caja
de tinción con alcohol etílico de 96°, hacien-
do10 inmersiones.
2.33. 9° Paso. Sumergir la canastilla en la
caja de tinción con alcohol etílico de 96°, ha-
ciendo 10 inmersiones.
2.34 10° Paso. Sumergir la canastilla en la
ciendo 10 inmersiones
2.35. 11° Paso. Sumergir la canastilla en la caja
de tinción con colorante Orange G6, durante
1.5 a 6 minutos y dejar escurrir, según la cali-
dad del colorante.
Responsable
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado

24
Secuencia de Etapas
‘
Figs.18 y 19
Figs. 20 a 23
Fig. 24
Fig. 25
Actividad
caja de tinción con el colorante Eosina A 50,
durante 1.5 a 6 minutos y dejar escurrir. Para
el tiempo hay que considerar la calidad de
los colorantes.
caja de tinción con alcohol etílico absoluto,
haciendo 10 inmersiones.
caja de tinción con Xilol, durante 10 minutos.
2.45. 21° Paso. Sumergir la canastilla en la caja
de tinción con Xilol, durante 10 minutos.
Responsable
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado

25
Secuencia de Etapas
‘
Montaje de laminillas de
Fig. 26
Actividad
caja de tinción con Xilol, durante 10 minutos
y escurrir el excedente.
2.47 23° Paso. Sumergir la canastilla en la
caja de tinción con Xilol, durante 10 minutos.
2.48 24° Paso. Sumergir la canastilla en la caja
de tinción con Xilol, durante 10 minutos y escu-
rrir el excedente.
Montaje
2.49 Realizar todo el procedimiento de montaje
de laminillas, bajo la campana de extracción de
gases; el técnico debe colocar sólo las manos y
antebrazos bajo la campana.
2.50. Tomar, bajo la campana de extracción de
gases, la laminilla teñida por el extremo esme-
rilado y retirarla de la canastilla.
2.51. Revisar que esté seca la parte posterior
de la muestra, antes de iniciar el montaje.
2.51 Utilizar resina de secado rápido disuelta
en tolueno para hacer el montaje.
2.52 Aplicar una gota de resina sobre el por-
taobjetos 22 x 45 mm y colocar sobre éste el
cubreobjetos.
2.53 Tomar por el extremo esmerilado la lami-
nilla, apoyar el borde opuesto sobre papel ab-
sorbente para que escurra y luego adosarla al
cubreobjeto con resina.
2.54 Dar uno o dos golpecitos suaves en el borde de
la lámina recién montada sobre el papel absorbente
y colocarla sobre éste ordenadamente.
Responsable
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado

26
Secuencia de Etapas
‘
Montaje de laminillas de
Actividad
22.55 Cuidar que al realizar el montaje no
se formen burbujas, ni se agregue resina en
exceso.
2.56 Limpiar con gasa los bordes y la cara no
adherida de la laminilla montada y dejarla orde-
nadamente de acuerdo con su número, sobre
papel absorbente, separadas unas de otras, pa-
ra evitar que se peguen.
2.57 Rotular con pluma de tinta indeleble,
anotando el número consecutivo de entrada
al laboratorio.
2.58 Distribuir las laminillas teñidas y montadas
por orden numérico en charolas según capa-
cidad, cuidando que queden algo separadas
para que no se peguen con la resina.
2.59 Colocar en las charolas las solicitudes
de examen citológico de las laminillas respec-
tivas, ordenadas de acuerdo con su nume-
ración asignada.
2.60 Distribuir 56 laminillas por citotecnólogo
por día).
Vigilar que los laboratorios tengan jornada de
trabajo de lunes a viernes, en turnos continuos,
de 8 hrs. diarias; se recomienda no tener jor-
nada acumulada en sábados y domingos, con
la ﬁnalidad de tener un mejor control de cali-
dad tutelar.
Responsable
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado
o citotecnólogo
capacitado

27
3. Procedimiento para la Lectura
e Interpretación de la Citología
Exfoliativa Cérvico Uterina

28
1.0 Propósito
1.1 Establecer cada una de las actividades
que debe realizar el citotecnólogo, citólogo o ci-
topatólogo, para la lectura e interpretación de
muestras de citología exfoliativa cérvico uterina
en los laboratorios de citología de la Secretaría de
Salud.
2.0 Alcance
2.1 A nivel interno el procedimiento es aplica-
ble en los laboratorios de citología cérvico uterina
cable a los laboratorios de Citología Cérvico Uteri-
na, que son responsabilidad de la Secretaría de
Salud.
y lineamientos
SSA2-1994 para la prevención, detección, diag-
(modiﬁcada en 2006), es un documento técnico
de observancia obligatoria para todas las unidades
de los sectores público, social y privado en el ám-
bito nacional, por lo que las actividades y tareas en
el laboratorio de citología encuentran su sustento
en ella básicamente.
3.2 La vigilancia para la aplicación de los linea-
mientos respecto a la lectura e interpretación en
los laboratorios de Citología Cérvico Uterina cor-
responde a la Secretaría de Salud tanto del nivel
federal como estatal, en sus respectivos ámbitos
de competencia.
3.3 El director o el encargado del laboratorio
tiene la obligación de veriﬁcar que el personal
encargado de la lectura e interpretación de las
muestras citológicas realice las actividades corres-
pondientes.
3.4 El incumplimiento de estas políticas y nor-
mas se sancionará conforme ala Ley Federal de

29
Este paso consiste en proporcionar una inter-
pretación o resultado citológico preliminar, que
distinga entre los frotis inadecuados, insatisfac-
torios, negativos, y los anormales, mediante la
observación al microscopio de las muestras en
laminillas ya teñidas y montadas.
El resultado citológico incluye los siguientes aspectos:
a) Validación de la calidad de la muestra.
b) Detección de cambios premalignos.
c) Detección de malignidad.
Si deseamos que este paso finalice de manera exitosa
habrán de considerarse los siguientes aspectos:
• Proporcionar una interpretación de resultado ci-
tológico preliminar, exacto y oportuno, expresada de
acuerdo con la clasificación diagnóstica vigente, utili-
zando los antecedentes contenidos en el formato, así
como, en el archivo de sus laminillas y la información
capturada en el sistema de información en relación
con la solicitud de la misma paciente.
• Mantener la identidad de la muestra-solicitud al
momento de registrar el resultado citológico en la so-
licitud respectiva, y responsabilizarse del resultado o
interpretación preliminar del laboratorio.
• Retroalimentar sobre la calidad de la toma de la
muestra a las unidades médicas, para mejorar el pro-
cesamiento de la laminilla en el laboratorio.
Interpretación o resultado preliminar
La observación de muestras citológicas se realizará en
un área idealmente estructurada en forma modular,
aislada con paneles, con una superficie de trabajo de
60 m2 mínima, no reflejante, adecuada para poner y
operar el microscopio, colocar la charola de laminillas
y poder registrar en los formatos de solicitud y resul-
tado. Esta área debe contar con buena iluminación
natural y adecuada ventilación.
Es deseable que los citotecnólogos y citopatólogos
cuenten con un microscopio de co-observación
binocular con oculares 10X de campo amplio y
objetivos de 4x, 10x 40x y 100 x para apoyar la
educación continua.
El personal necesita lápices para registrar el ci-
todiagnóstico en la solicitud y lápices de tinta
indeleble para puntear las laminillas positivas o
sospechosas.
Es ideal contar con 5 a 8 citotecnólogos por un ci-
topatólogo o patólogo.
Área

30
Secuencia de etapas
‘
3.0 Lectura e interpretación
de laminillas de citología
cérvico uterina.
Imagen 2
Fig.27
Actividad
3.1 Al iniciar la jornada, se debe recibir la charo-
la de laminillas procesadas con su legajo de so-
licitudes y hojas de antecedentes respectivas.
3.2 Decidir en que casos se solicitará revisión
de estudios citológicos previos al archivo para
anexarlos a los casos con resultado positivo o
de atipia, para la observación conjunta con la
laminilla actual.
3.3 Preparar el microscopio para iniciar la ob-
servación de las laminillas. Retirar el forro pro-
tector, encender el microscopio, alejar los obje-
tivos del microscopio de la platina y colocar el
objetivo de 10X en posición para observar.
3.4 Colocar en la platina del microscopio la
laminilla con la superﬁcie del cubreobjetos ha-
cia arriba.
3.5 Revisar cada laminilla sistemáticamente,
con un barrido de forma lineal sobre toda la
laminilla, para evitar áreas sin leer, aumentando
a 40X las áreas detectadas como anormales.
3.6 Tomar la laminilla y cotejar el número de la
laminilla con el número de la solicitud y reporte
de resultado; esto mismo debe hacerse antes
de anotar el resultado en el formato.
3.7 Leer las laminillas de acuerdo con el orden
de sus números asignados, para disminuir la
probabilidad de errores de identiﬁcación.
3.8 Buscar sistemáticamente evidencia de pro-
cesos reactivos o reparativos, microorganismos
o células premalignas o malignas, aisladas o en
grupo, y otros.
3.9 Observar con el objetivo de 40X las células
alteradas.
Responsable
Citotecnólogos,
citólogos y patólogos
Citotecnólogos,
Citotecnólogos,
Citotecnólogos,
Citotecnólogos,
Citotecnólogos,
Citotecnólogos,
Citotecnólogos,
Citotecnólogos,

31
(continúa)
Secuencia de etapas
‘
cérvico uterina.
Actividad
3.10 Con un marcador con tinta indeleble mar-
car con un punto (“puntear”) o rodear con un
circulo el lugar de la laminilla donde se obser-
van células alteradas.
3.11 Cabe mencionar que cada laminilla se debe
leer en un tiempo de entre 5 a 8 minutos.
3.12 Leer al menos nueve laminillas por hora, lo
que equivale a leer ocho mil citologías por año; si
el laboratorio no contara con técnico en tinción, el
citotecnólogo podrá leer al menos 40 lamillas. Es
conveniente aclarar que por cada tres citotecnólo-
gos debe existir un técnico en tinción.
3.13 Cumplir por parte del citotecnólogo o
citólogo con una lectura de al menos 56 lami-
nillas /día.
3.14 Mantener su material de trabajo en buen
estado, así como el microscopio asignado.
3.15 Realizar la lectura citológica mediante
un microscopio de luz binocular, con objetivos
10x, 20X, 40X y 100X.
3.16. Evaluar al inicio de la lectura las carac-
terísticas generales del frotis, como: coloración,
transparencia y cantidad de material celular a
través del objetivo panorámico.
3.17 Veriﬁcar en la primera interpretación la
adecuación del especimen en cuanto a canti-
dad, tipo de células y visualización de las mismas.
3.18 Valorar si la muestra es adecuada o ina-
decuada. Si la muestra es inadecuada, espe-
ciﬁcar en el formato de resultado por qué es
inadecuada.
Responsable
Citotecnólogos,
Citotecnólogos,
Citotecnólogos,
Citotecnólogos,
Citotecnólogos,
Citotecnólogos,
Citotecnólogos,
Citotecnólogos,
Citotecnólogos,

32
(continúa)
Secuencia de etapas
‘
cérvico uterina.
Fig. 28
Actividad
3.19 Evaluar si la muestra es adecuada, la que
se calificará de esta manera, es aquella laminilla
que contiene alrededor de 8000 a 12000 célu-
las epiteliales escamosas.
3.20 Informar si está presente el componente
de la zona de transformación, es decir, si se ob-
servan al menos 10 células endocervicales bien
conservadas o células escamosas metaplásicas
bien identificables.
3.21 Calificar como muestra inadecuada si
se observa en la muestra: necrosis, artificios,
sangre, inflamación o mala fijación en más de
75% de la muestra.
3.22 Revisar durante este procedimiento los
rasgos nucleares con el objetivo 10X.
3.23 Calificar como adecuada cualquier mues-
tra con células anormales, es decir, las laminillas
con escaso contenido celular, exceso de sangre
o abundante material inflamatorio, pero que
contienen células alteradas no debe ser infor-
mada como inadecuada o insatisfactoria, sino
como atípicas o positivas según sea el caso y
ser referidas para revisión por el citopatólogo.
- 3.24 Identificar, durante la lectura, los cam-
bios morfológicos celulares, considerando:
- Células del epitelio endocervical y exocervical.
- Células con alteraciones de tipo inflamatorio y
cambios secundarios.
- Agentes patógenos.
- Cambios sugerentes de infección por virus del
papiloma humano.
- Células con alteraciones correspondientes a
lesión de alto o bajo grado (displasias o NIC).
- Células con alteraciones correspondientes a
malignidad.
Responsable
Citotecnólogos,
Citotecnólogos,
Citotecnólogos,
Citotecnólogos,
Citotecnólogos,
Citotecnólogos,

33
(continúa)
Secuencia de etapas
‘
cérvico uterina.
Actividad
3.25 Emitir el resultado utilizando la nomencla-
tura establecida en la NOM 014-SSAA2-1994
(modificada, 2006). Durante este procedimien-
to un paso fundamental será revisar la muestra
con el objetivo 10x y la morfología nuclear con
el objetivo 40x.
3.26 Registrar el resultado del estudio citológi-
co en el formato de solicitud y reporte de resul-
tados de citología cérvico uterina, verificando
que corresponda el número de la laminilla con
el número del formato.
3.27 Cuidar de no diferir, para otro día, la lec-
tura de las laminillas asignadas para la jornada
del día.
3.28 Registrar en cada uno de los rubros co-
rrespondientes del Formato de Solicitud y re-
porte de resultados, los datos que correspon-
den al laboratorio: Apartado IV RESULTADO
DE CITOLOGÍA CERVICAL, que comprende lo
siguiente:
- Número citológico.
- Características de la muestra.
- Diagnóstico citológico.
- Hallazgos adicionales.
- Repetir estudio.
- Motivo.
- Nombre del citotecnólogo y RFC.
- La muestra fue revisada por el citopatólogo o
patólogo.
- Observaciones Nombre del patólogo o ci-
topatólogo, firma y RFC .
3.29 Concluida la lectura, regresar las laminillas
al área de archivo, junto con sus formatos co-
rrespondientes
Responsable
Citotecnólogos,
Citotecnólogos,
Citotecnólogos,
Personal administra-
tivo secretarial
Citotecnólogos

34
(continúa)
Secuencia de etapas
‘
cérvico uterina.
Actividad
3.30 Todas aquellas laminillas identiﬁcadas
como “casos problema” deberán registrarse
en una libreta de control, para ser revisadas
y analizadas en las reuniones de retroalimen-
tación y archivarlas por separado.
3.31 Al ﬁnal de este procedimiento se deberán
archivar las laminillas; si las laminillas correspon-
den a mujeres subsecuentes, se deberán archi-
var juntas.
Responsable
Citotecnólogos,
Citotecnólogos,

35
4. Procedimiento para Realizar
el Control de Calidad Interno

36
1.0 Propósito
1.1.Establecer cada una de las actividades que
debe realizar el citólogo o patólogo, para el con-
trol de calidad interno de las muestras de Citología
Exfoliativa Cérvico Uterina en los laboratorios de
citología de la Secretaría de Salud.
2.0 Alcance
2.1 A nivel interno el procedimiento es aplica-
ble en los laboratorios de citología cérvico uterina
cable a los laboratorios de citología cérvico uteri-
na, que son responsabilidad de la Secretaría de
Salud.
y lineamientos
SSA2-1994 (modiﬁcada, 2006) para la prevención,
detección, diagnóstico, tratamiento y vigilancia
epidemiológica, es un documento técnico de ob-
servancia obligatoria para todas las unidades de
los sectores público, social y privado en el ámbito
nacional, por lo que las actividades y tareas en el
laboratorio de citología encuentran su sustento
en ella básicamente.
3.2 La vigilancia para la aplicación de la nor-
matividad respecto a la lectura e interpretación
en los laboratorios de citología cérvico uterina co-
rresponde a la Secretaría de Salud tanto del nivel
federal como estatal, en sus respectivos ámbitos
de competencia.
3.3 El director o coordinador del laboratorio
lectura e interpretación de las muestras citológi-
cas, realice las actividades correspondientes.
3.4 El incumplimiento de estas políticas y nor-
mas se sancionará conforme a la Ley Federal de

37
Para dar una interpretación o resultado definitivo será
necesario observar una o más veces un conjunto de
laminillas que ya tienen un resultado prelimar y dar
un resultado definitivo. El objetivo de este paso es
reducir el error de la interpretación o resultado.
Para lo cual es importante hacer las consideraciones
siguientes:
• ¿Cuántas laminillas actuales del total se vuel-
ven a observar?
• ¿Cuáles de estas laminillas se observan de nuevo?
• ¿Cuáles de estos casos se someten a reobservación
de sus laminillas antiguas?
• ¿Cuántas veces se reobserva una laminilla?
• ¿Con qué metodología se reobserva?
Actualmente no es posible conocer el efecto de las
distintas combinaciones que realiza el evaluador; en
este caso, el patólogo o citópatólogo, sin embargo,
las guías citológicas elaboradas por expertos coinci-
den en señalar que:
Todas las laminillas con interpretación o resultado
preliminar positivo (premalignas o malignas) deben
ser reobservadas por el patólogo o citopatólogo que
es el responsable del resultado definitivo.
Un grupo de laminillas correspondientes a pacientes
con factores de riesgo para cáncer cervical de acuer-
do con los antecedentes especificados en la solicitud
del examen y/o la historia citológica previa, es conve-
niente que sean observadas nuevamente.
Este paso del proceso será exitoso si:
• Se mantiene la identidad de la muestra–solicitud, al
registrar la interpretación o resultado definitivo en la
solicitud respectiva y se identifica el responsable del
resultado en la solicitud.
• Se produce un citoresultado definitivo correcto,
oportuno, usando los antecedentes y la historia ci-
tológica previa de la paciente
• Se comunica a los citotecnólogos las discre-
pancias encontradas entre la interpretación o
resultado preliminar y el definitivo, y se realiza
una revisión conjunta o retroalimentación para
mejorar las habilidades diagnósticas de los cito-
tecnólogos.
Control de calidad interno

38
Secuencia de etapas
‘
4. Control de calidad inter-
no para la interpretación
cérvico uterina.
Fig. 29
Actividad
4.1 Iniciar este paso cuando esté lista la cha-
rola de laminillas seleccionadas con base en los
criterios del laboratorio y que tengan un diag-
nóstico preliminar.
4.2 Recibir la charola de laminillas selecciona-
das con su legajo de solicitudes ya con diag-
nóstico preliminar, así como laminillas antiguas
de casos positivos o aquellas que procedan de
acuerdo con lo establecido.
4.3 Preparar el microscopio para iniciar la ob-
servación de las laminillas. Retirar el forro pro-
tector, encender el microscopio, alejar los obje-
tivos del microscopio de la platina y colocar el
objetivo de 10X en posición para observar.
4.4 Tomar las laminillas y cotejar el número con
el de la solicitud y reporte de resultado, esto
mismo debe hacerse antes de anotar el resul-
tado en el formato.
4.5 Leer las laminillas de acuerdo con el orden
de sus números asignados para disminuir la
probabilidad de errores de identiﬁcación.
4.6 Colocar en la platina del microscopio la
laminilla con la superﬁcie del cubreobjetos ha-
cia arriba.
4.7 Observar, con el objetivo de 10X, la lamini-
lla con movimientos ordenados en zigzag hori-
zontales o verticales.
4.8 Buscar sistemáticamente células premalig-
nas o malignas, aisladas o en grupo, evidencias
de procesos reactivos o reparativos, microor-
ganismos y otros.
Responsable
Citólogos o patólogos

39
(continúa)
Secuencia de etapas
‘
cérvico uterina.
Actividad
4.9 Observar las áreas ya marcadas de la lami-
nilla y si corresponde marcar nuevas áreas o
partes específicas de las ya señaladas, teniendo
cuidado de no obscurecer con la marca el ma-
terial celular significativo.
4.10. Emitir el resultado utilizando la nomencla-
tura establecida en la NOM 014-SSAA2-1994
para la prevención, detección, diagnóstico, tra-
tamiento, control y vigilancia epidemiológica del
cáncer cérvico uterino (modificada en 2006).
4.11 Registrar el resultado del estudio citológi-
co en el formato de solicitud y reporte de resul-
tados de citología cérvico uterina, verificando
que corresponda el número de la laminilla con
el número del formato.
4.12 Marcar la laminilla con una línea con
lápiz rojo permanente en la zona esmerilada
debajo el número del registro citológico si el
diagnóstico es positivo a lesiones premalig-
nas o malignas.
4.13 Registrar en el formato de solicitud el
diagnóstico citológico, fecha del diagnóstico
y el RFC del patólogo responsable del diag-
nóstico definitivo.
4.14 Continuar con la laminilla siguiente de la
charola y así sucesivamente hasta finalizar.
4.15. Realizar el control de calidad interno a
través de los siguientes mecanismos:
- Supervisión directa.
- Evaluación de la consistencia del resultado.
- Monitoreo estadístico del resultado.
- Revisión aleatoria de las muestras negativas.
- Revisión absoluta de las muestras positivas.
- Correlación cito-histológica.
- Revisión rápida.
Responsable
Citotecnólogos
calificados y citólogos
o patólogos entrenados.

40
(continúa)
Secuencia de etapas
‘
cérvico uterina.
Actividad
4.16 Se realizará por parte de los citotecnólo-
gos la supervisión directa, efectuando la re-
visión de todos aquellos casos de citologías
dudosas y positivas que existan; esto deberá
hacerse el mismo día cuando se efectúa la
lectura rutinaria de las laminillas.
4.17. Evaluar la consistencia del resultado, ésta
se realizará por el personal que efectúa el con-
trol de calidad, cuando en el total de laminillas
se tenga una proporción grande de resultados
anormales. Esta evaluación se efectúa mediante
la comparación de los resultados dados a la o a
las laminillas por dos o más individuos o por el
mismo citotecnólogo, en ocasiones diferentes.
4.18. Realizar el Monitoreo estadístico del diag-
nóstico. Éste es un procedimiento sencillo y poco
costoso, y se hace confrontando el porcentaje
de casos sospechosos y positivos diagnosticados
por un citotecnólogo, con el porcentaje prome-
dio del mismo tipo de diagnóstico en el volumen
general del laboratorio.
4.19 Revisar el 20% de las laminillas negativas,
seleccionadas aleatoriamente.
4.19 Revisar el 100% de las laminillas positi-
vas. Este procedimiento se realiza estudian-
do, (como su nombre lo dice), el total de las
muestras positivas.
4.20. Realizar la correlación cito-histológica.
Este procedimiento se deberá realizar en coor-
dinación entre el patólogo y el citotecnólogo,
para lo cual el patólogo deberá validar o invali-
dar el resultado emitido por el citotecnólogo.
Posterior a esta evaluación, deben realizarse
reuniones sobre correlación cito-histológica,
que sirva de retroalimentación al equipo.
Responsable
Citotecnólogos
Citotecnólogos
Citotecnólogos
Citotecnólogos
Citotecnólogos
Citotecnólogos

41
(continúa)
Secuencia de etapas
‘
cérvico uterina.
Actividad
4.21. Realizar la segunda re-revisión rápida
de todos los casos negativos, o de los que se
pensó que estaban libres de enfermedad en la
evaluación inicial. El procedimiento se efectúa
recorriendo toda la superficie de la laminilla;
este recorrido deberá estar previamente esta-
blecido, en un tiempo de 30 a 50 segundos y
utilizando el objetivo de 10X.
4.22 Separar los casos que se hayan identifi-
cado con alguna alteración, sin detenerse a
precisar un diagnóstico final, ya que posterior-
mente serán revisados minuciosa y definitiva-
mente por un supervisor que tiene el entre-
namiento para realizar esta actividad.
4.23 Dejar la charola de referencia en el lugar
asignado cuando termine su jornada diaria; para
que sean retiradas junto con sus respectivas so-
licitudes.
4.24 Al finalizar la jornada apagar el microsco-
pio, dejarlo con su cubierta protectora.
4.25 Revisar semanal y mensualmente su pro-
ducción de lectura, tanto en cantidad como en
calidad y compararlo con sus pares.
4.26 Informar y revisar con los citotecnólogos
en forma semanal y/o mensual las discordancias
diagnósticas, entre el diagnostico preliminar y el
diagnóstico definitivo.
Responsable
Citotecnólogos

42
Accesibilidad
Componente de la calidad de la atención a los pa-
cientes que consiste en una medida de la facilidad
con que el paciente puede obtener la atención o
servicio en el lugar apropiado y en el momento
apropiado, de acuerdo con sus necesidades.
Cáncer
Tumor maligno originado por la pérdida de control
del crecimiento de las células, que puede invadir es-
tructuras adyacentes o propagarse a sitios alejados y
tener como resultado la muerte.
Cáncer invasor
Cualquiera de las etapas de carcinoma invasivo,
desde aquellos diagnosticados sólo por microscopio,
hasta las lesiones de gran magnitud con invasión al
estroma, extensión a todo el órgano, órganos adya-
centes y propagación a órganos distantes.
Cáncer in situ
De acuerdo con la definición de la Organización Mun-
dial de la Salud (OMS), es una lesión en la que todo el
epitelio o la mayor parte muestra el aspecto celular de
carcinoma. No hay invasión del estroma subyacente.
Captura de híbridos
Prueba biomolecular, basada en la amplificación de la
señal de híbridos en solución, in vitro, para detectar
blancos de DNA o RNA.
Citopatología
Es una disciplina de la práctica de la medicina que
se especializa en la interpretación de cambios mor-
fológicos en las células, causados por procesos de
enfermedad.
Citopatólogo
Médico que ejerce la especialidad de la citopatología.
Citotecnólogo
Tecnólogo médico que ejerce la especialidad de la
citología.
Confiabilidad de un examen diagnóstico
Grado en que el examen da los mismos resultados
en aplicaciones repetidas. Consistencia en medicio-
nes repetidas de un mismo fenómeno. Siempre la
medición de un fenómeno contiene una cierta can-
tidad de error aleatorio, por lo tanto al repetir una
medición no se espera una cifra exactamente igual a
la anterior, pero si una consistencia con la medición
anterior.
Continuidad
Componente de la calidad de atención a los pa-
cientes que consiste en la medida en que la atención
o servicio provisto es interrumpido, coordinado, a
través de programas, profesionales, organizaciones
y niveles de atención o servicio, en el tiempo.
Correlación citohistológica
Consiste en comparar el o los informes citológicos
positivos de los exámenes del Papanicolaou de una
paciente, con el informe histopatológico final de
la(s) biopsia(s) practicada(s) como consecuencia de
la citología positiva. Para poder realizar la correlación
cito-histológica el laboratorio de citología necesita
acceder a los informes de resultados de biopsias y
cortes histológicos correspondientes a los casos con
citología positiva.
Discordancia o incongruencia diagnóstica
Una diferencia en la interpretación o resultado pre-
liminar y el citodiagnóstico definitivo de la misma
muestra de frotis cervical.
Efectividad
Componente de la calidad de la atención que con-
sidera la medida en que la atención o servicio, inter-
vención o acción logra los resultados deseados.
Eficiencia
sidera la medida en que la atención o servicio, inter-
vención o acción logra los resultados deseados, en
términos de costo-beneficio.
Glosario de Terminos

43
Examen de Papanicolaou o Pap
Una técnica de detección del cáncer cérvico uterino
en la cual se examinan al microscopio las células to-
madas sistemáticamente del cuello del útero y se
evalúan cambios morfológicos debidos a procesos de
enfermedad, en busca de alteraciones precancerosas
o cancerosas. Es el examen convencional usado en
los programas de control de cáncer cérvico uterino.
Frotis de muestra inadecuada
Un frotis que por razones técnicas no puede ser inter-
pretado en el laboratorio.
Interpretación o resultado preliminar
Es el diagnóstico habitualmente ejecutado por el ci-
totecnólogo, producido en la primera revisión al mi-
croscopio del frotis cervical procesado. Involucra de-
terminar la adecuación del frotis y detectar y marcar
anormalidades o hechos significativos en el frotis y
realizar una interpretación diagnóstica.
Interpretación o resultado definitivo
Es el diagnóstico final que se reporta en el informe
de resultados del examen de Papanicolaou, genera-
do como producto de una segunda revisión, o más
revisiones, del frotis cervical procesado. Habitual-
mente es efectuado por citotecnólogo supervisor y/o
patólogo/ citopatólogo, después del citodiagnóstico
preliminar.
Interpretación o resultado reportado
en el formato
Es la interpretación o resultado que se reporta
en el formato de solicitud y reporte de resultados
del examen del Papanicolaou. Si ha existido un
proceso de interpretación definitivo, el informe re-
portado corresponde al resultado definitivo. Si no
ha existido una segunda o superior revisión, el in-
forme reportado corresponde a la interpretación
o resultado preliminar.
Lesión intraepitelial de bajo grado
Incluye los cambios celulares asociados al efecto
citopático de la infección por el virus del papiloma
humano (conocida como atípica koilocítica), res-
tringida generalmente a la capa basal. Correspon-
de a estas lesiones la displasia leve/ NIC I.
Lesión intraepitelial de alto grado
Cambios celulares asociados a mitosis atípica, de
moderada a intensa, que abarca todo el espesor del
epitelio, incluyendo la capa basal. Corresponde a este
tipo de lesiones las identificadas como displasia mo-
derada, grave y cáncer in situ/ NIC II-III.
Muestra-Solicitud
Conjunto formado por una muestra y la solicitud de
examen respectiva que se mantienen contiguos física-
mente. En el caso del examen del Papanicolaou, está
formado por el frotis cervical extendido en el portaob-
jetosysurespectivasolicituddeexamen,generalmente
unida mediante un clip al portaobjetos.
Normas
Instrumento o herramienta descriptiva o especifica-
ción estandarizada para la atención de la paciente
promedio en una situación corriente.
Número de registro citológico
Es el número único y correlativo anual que se da a
una determinada unidad muestra-solicitud cuan-
do es recibida y aceptada en el laboratorio de ci-
tología.
Oportunidad
siste en la medida en la cual se presta atención o ser-
vicio en el momento cuando el paciente lo necesita.
Algunos autores lo incluyen dentro del componente
de accesibilidad.
Tamizaje de cáncer cérvico uterino
Prueba de detección masiva realizada de manera
intencionada, con el objeto de identificar oportu-
namente individuos con una enfermedad o trastor-
no de salud específico.

44
Proceso
Es la agrupación en serie de todas las acciones usa-
das por un sistema para convertir las materias primas
o la energía del ambiente en un resultado particular o
producto que es usable, ya sea por el sistema mismo
o por el medio
Procesamiento de muestra de frotis cervical
Etapa o paso del proceso de la interpretación, consti-
tuida básicamente por la tinción y montaje del frotis
cervical.
RPC: (Reacción de la Polimerasa en Cadena)
Prueba biomolecular en la que el DNA blanco se
amplifica selectivamente por medios enzimáticos,
a través de ciclos repetidos de desnaturalización,
hibridación del fragmento precursor y extensión
de éste.
Retroalimentación
Información aportada donde se compara y analiza el
resultado del proceso entre citotecnólogo-citopatólo-
go o patólogo
Revisión rápida del frotis cervical
Es una segunda revisión del frotis cervical, des-
pués del citodiagnóstico preliminar, realizada de
acuerdo con un patrón de movimientos definidos
y que consume menos de un minuto por lámina.
Se aplica a frotis cervicales que tienen un resul-
tado preliminar negativo, como estrategia para
detectar falsos negativos y, por lo tanto, aumen-
tar la exactitud diagnóstica.
Seguridad
Componente de la calidad de la atención a los pa-
cientes proveedores que consiste en la medida en la
cual los riesgos potenciales de una intervención o del
ambiente son evitados o minimizados.
Solicitud y reporte de resultados de examen de
citología cérvico vaginal o Papanicolaou
Formulario en papel (o electrónico) que acompaña
a una muestra de frotis cervical. Contiene datos de
identificación del centro de salud, del profesional que
recolecta la muestra y del paciente, y es utilizado para
solicitar al laboratorio un examen de Papanicolaou.
Tinción de Papanicolaou
Es un método de tinción policrómico que consta de
una tinción nuclear y un contraste citoplasmático.
Tiene una buena definición del detalle nuclear, evi-
denciando el patrón cromatínico de las células, un
aspecto transparente de los citoplasmas y una diferen-
ciación celular que permite apreciar grados de madu-
ración celular y actividad metabólica. La tinción del
Papanicolaou consta de cuatro pasos principales: a)
fijación (realizada en el momento de tomar la mues-
tra); b) tinción del núcleo con Hematoxilina; c) tinción
del citoplasma con orange G y EA, y d) aclaración.
Virus del Papiloma Humano
Microorganismos virales que infectan la piel y las
mucosas generalmente a través de contacto sexual,
pudiendo producir alteraciones celulares epiteliales
benignas o malignas. Varían en su tropismo tisular,
en su asociación con distintas lesiones y en su po-
tencial oncogénico.
Zona de transformación
Es el área comprendida entre el epitelio escamoso
original y el epitelio columnar del cérvix uterino, den-
tro de la cual pueden identificarse diversos grados de
maduración del epitelio metaplásico.

45
Takahashi. Atlas, Color Citología del Cáncer, Takahashi. 2ª. Edición 1982/1985. Buenos Aires, Argentina:
Ed. Panamericana.
Organización Panamericana de la Salud. Manual de procedimientos del laboratorio de citología, Washington
DC: OPS; 2002.
Bibliografía

47
Anexo
Procesos del Laboratorio de
Citología Cérvico Uterina

48
Elaborar una relación de laminillas que hayan sido
rechazadas, cotejar la relación del envió de ci-
tologías, cotejar la entrada de cada estudio.
Recepcion de Laminillas de Citología
Cérvico Uterina
Imagen 1
Fig. 1

49
Tren de Tinción
Fig. 2
96° Alcohol etílico Agua corriente Agua destilada Hematoxilina Agua corriente
0.5° de ácido
clohídrico
+
96° Alcohol etílico
Agua destilada 96° Alcohol etílico OG-6 96° Alcohol etílico
96° Alcohol etílico EA-50 96° Alcohol etílico 100° Alcohol etílico
100° Alcohol absoluto Xileno

50
Procedimiento
Las muestras se sumergen en alcohol etílico de
96°, 10 inmersiones.
Posteriormente se enjuaga con agua corriente y lue-
go agua destilada, hasta que el agua se aclare.
Tinción de Papanicolaou Modiﬁcada
Fig. 3
Fig. 4

51
Tinción con Hematoxilina
Hematoxilina de Harris (se sumerge de 2 a 5 minu-
tos, dependiendo del colorante). En este paso
la cromatina del núcleo se tiñe de oscuro con el
colorante. La cromatina está constituida por finas
cadenas de ácido desoxirribonucleico unidas a una
proteína base. Por la fijación hay cambios en la
histona del mismo, produciéndose la disolución
del radical fosfórico del ADN el cual tiene carga
negativa. Se logra la tinción por la unión del ADN
con el radical fosfórico (-) y con Hematoxilina (+).
El pH de la Hematoxilina y la tinción nos dan los
radicales funcionales aniónicos, fraccionándose la
cromatina nuclear.
La tinción recibe influencia del pH del agua, de la
densidad del cloro y de la temperatura del líquido
colorante.
A continuación se utiliza agua corriente (se lava
con agua para eliminar del frotis el liquido de He-
matoxilina sobrante).
Fig. 5
Fig. 6 Fig. 7

52
Fraccionamiento
El paso de fraccionamiento se realiza con alcohol
de ácido clorhídrico de 0.5° para eliminar la He-
matoxilina sobrante que ha teñido conjuntamente
tanto el núcleo, como el citoplasma.
Después de fraccionar en alcohol de ácido clohí-
drico, si se deja tal como está, las partes teñidas
cambian a color pardo-rojo y, además, tienden a
decolorarse.
Fig. 7
Fig. 8 Fig. 9
Fig. 10

53
A continuación
Se utiliza agua destilada (Disolución acuosa pH 4-5:
amarillo, pH 6-7: rojo – morado). Por elevación del
pH con lavado de agua o neutralización, el núcleo
cambia a color azul.
Fig. 11
�
�
�
��
��
��
��
El (pH) de la Hematoxilina y la tinción
Los radicales funcionales aniónicos.
1. El radical ácido sulfúrico (-SO 4) mucosidad,
cartílago, etcétera.
2. El radical fosfórico (=PO4) Núcleo, etcétera.
3. El radical carboxilo (-COO) citoplasma, etcétera. Fig. 12

54
Después de fraccionar en alcohol de ácido clohí-
drico si se deja tal como están, las partes teñidas
cambian a color pardo-rojo y, además, tienden a
decolorarse.
Para obtener el color óptimo se deberá hacer el
paso de la coloración, revisando en el microscopio,
para evitar una posible equivocación en el resul-
tado, debido a la diferencia de la tinción. (Tomar
como pauta a los leucocitos, polimorfonucleares).
Fig. 13
Fig. 14
Las laminillas se sumergen en cada caja, diez ve-
ces, despacio y se deben escurrir lo más posible.
Fig. 15
Alcohol etílico de 96° Alcohol etílico de 96° Alcohol etílico de 96°

55
Naranja 0G 6 (teñir de 1.5 hasta 6 minutos)
En este paso el OG-6 contiene el radical sulfito que
tiende a disociarse. Si baja el pH, aumenta la inten-
sidad de la tinción.
Cerca de la neutralización se debilita la intensidad
de la tinción. Con esto puede pensarse que el radi-
cal sulfito es bastante fácil de disociarse y dificulta
la unión de la proteína con el colorante.
Las moléculas de OG 6 son pequeñas, de color
amarillo a naranja tiñen a los citoplasmas quera-
tinizados.
Fig. 16
Fig. 17
Fig. 18
96° Alcohol etílico 96° Alcohol etílico 96° Alcohol etílico

56
Eosina-A 50 ( teñir 1.5 hasta 6 min).
La Eosina y el verde claro SF amarillo, están con-
tenidos en EA-50; son colorantes ácidos y tienen
carga negativa. Por eso se unen con las proteínas
que tienen características de carga positiva.
Es el principio de la tinción del citoplasma. La Eo-
sina-Y contiene el radical carboxilo (COOH), el cual
tiene tendencia a no disociarse; con pH 5~6 se tiñe
más fuerte y cada vez que baja el pH tiende a bajar
la intensidad de la tinción.
Fig. 19
Fig. 20
Fig. 21 Fig. 22

57
Fig. 23
Alcohol 96°
Alcohol etílico absoluto Alcohol etílico absoluto Alcohol etílico absoluto
Fig. 24

58
Xileno Xileno Xileno
Xileno Xileno
Fig. 25

59
Secar la parte posterior a la muestra para proce-
der con el montaje.
Fig. 26
Imagen 2
Revisar cada laminilla sistemáticamente con un
barrido de forma lineal sobre toda la laminilla, para
evitar dejar áreas sin leer, aumentando a 40x las
áreas detectadas como anormales.
Fig. 27
Montaje de Laminillas
Lectura e Interpretación de Laminillas

60
Fig. 28
Cambios morfológicos celulares
Observar con el objetivo de 10x la laminilla con
movimientos ordenados en zigzag horizontales o
verticales
Fig. 29
Control de Calidad Interno

Tincion

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