Practicas de Biologia.pdf

PRÁCTICAS
DE
BIOLOGÍA Y GEOLOGÍA
Autores
Julián Torre Casares (coordinador)
Carmen Díaz Juesas
José Luis Martínez Calvo
Marta Rimada Costales
Dolores Suárez Díaz
Dibujos
Emilio Cueto Fernández
Colección: Materiales Didácticos de Aula.
Serie: Educación Secundaria.
Edita: Consejería de Educación y Ciencia. Centro del Profesorado y de Recursos de Nor-Occidente.
Copyrigth:Consejería de Educación y Ciencia.Centro del Profesorado y de Recursos de Nor-Occidente.
ISBN: 84-689-1752-4
Depósito Legal: AS-02189-2005
Diseño y maquetación: Gráficos Gijón
Impresión: Gráficas Eujoa

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PRESENTACIÓN
La presente obra recoge la experiencia en el laboratorio de Biología y Geología de los
profesores y profesoras del Departamento Didáctico de Biología y Geología del I.E.S. “Carmen
y Severo Ochoa” de Luarca, quienes allá por el año académico 98/99 nos constituimos como
Grupo de Trabajo en el CPR del Nor-Occidente y comenzamos a trabajar en las prácticas de
laboratorio, buscando ideas y elaborando materiales que respondieran a nuestras necesidades
docentes y a las concepciones pedagógicas que defendemos. Como consecuencia última de esa
extensa tarea nace el libro que ahora presentamos. La obra se concreta en cuatro capítulos,
que tienen finalidades diferentes dentro del problema global que supone integrar las prácticas
de laboratorio en la enseñanza de la Biología y la Geología:
1º – El marco teórico: es una reflexión y un posicionamiento teórico en el contexto de la
Didáctica de las Ciencias y, en particular en el tratamiento de las prácticas de laboratorio. No
pretendemos hacer aportación alguna a la Didáctica, tarea que les corresponde más a los
investigadores que a los docentes, pero sí situarnos en el marco de las actuales corrientes de
pensamiento, para que pueda comprenderse mejor desde qué óptica elaboramos este material
didáctico.
2º - Manual didáctico para el profesor: se trata de 36 protocolos para otras tantas
prácticas de laboratorio, dirigidos al profesor, en los que se dan orientaciones sobre los
objetivos que se pueden formular, los materiales necesarios, el fundamento científico de la
práctica, etc. Se trata, sobre todo, de un instrumento que ayuda a organizar rápidamente el
laboratorio y a solucionar aquellos problemas más comunes que se pueden plantear en cada
caso.
3º - Fichas de trabajo para los alumnos: cada práctica tiene un guión para fotocopiar y
entregar a los alumnos en el momento de realizar la práctica. Es un material de trabajo que
indica el procedimiento a seguir paso a paso, pero también deja campos "en blanco", que el
alumno tendrá que completar, y cuestiones sobre la práctica que tendrá que responder. No es
un material cerrado, sino que tiene un cierto grado de apertura y, en todo caso, cada profesor
puede modificarlo hasta donde estime oportuno.
4º – Elaboración de mezclas y reactivos: en este capítulo se recogen algunas fórmulas para
preparar soluciones, reactivos, colorantes y medios de cultivo de uso muy común en los
laboratorios. Pretendemos ayudar y orientar al profesor en la preparación de unos productos
químicos, que cuando no son los adecuados o no se encuentran en buen estado, son causa
frecuente del fracaso de la práctica.
Este material didáctico es el resultado de una extensa labor de revisión de ideas diversas, de
una intensa reflexión teórica y de la experimentación constante con nuestros alumnos de ESO
y Bachillerato a lo largo de estos años. Esperamos que resulte útil para muchos compañeros y
compañeras en otros Institutos.
Los autores

3
ÍNDICE
1 . – EL MARCO TEÓRICO. ................................................... 6
o Un planteamiento constructivista de la enseñanza de las Ciencias...........................................7
o Las prácticas de laboratorio en el marco de la enseñanza de las Ciencias..............................9
o Diversos tipos de prácticas de laboratorio....................................................................................10
o El grado de apertura de las prácticas de laboratorio..................................................................11
2 . – MANUAL DIDÁCTICO PARA EL PROFESOR. ......................... 14
o Reconocimiento de material de laboratorio....................................................................................15
o La lupa binocular....................................................................................................................................18
o El microscopio óptico........................................................................................................................... 20
o Observación de microorganismos de agua dulce.. ........................................................................ 22
o Observación de células animales y vegetales................................................................................ 29
o Observación de epidermis vegetal....................................................................................................31
o Ósmosis en células vegetales ............................................................................................................ 33
o Observación de mitosis en raíz de cebolla .................................................................................... 35
o Estudio de un moho.............................................................................................................................. 37
o Simbiosis ................................................................................................................................................ 40
o Extracción y separación de pigmentos fotosintéticos................................................................ 43
o Tinción de textiles con pigmentos vegetales ................................................................................ 46
o Factores que condicionan la fotosíntesis....................................................................................... 48
o Observación de anteras y germinación del grano de polen........................................................ 50
o El desarrollo del renacuajo................................................................................................................ 53
o Estudio y disección de un erizo de mar.......................................................................................... 57
o Fecundación y desarrollo embrionario en el erizo de mar ......................................................... 59
o Estudio y disección de un mejillón ................................................................................................... 62
o Disección de un corazón de cerdo.................................................................................................... 65
o Determinación del porcentaje de agua en la materia viva ......................................................... 68
o Reconocimiento de la presencia de una sal mineral: carbonato cálcico.. ................................ 70
o Reconocimiento de azúcares reductores ....................................................................................... 72
o Reconocimiento de la presencia de un polisacárido: almidón..................................................... 74
o Reconocimiento de lípidos.................................................................................................................. 75
o Reconocimiento de proteínas ............................................................................................................ 77
o Identificación de biomoléculas en soluciones problema............................................................. 78
o Actividad enzimática de la catalasa ................................................................................................ 80
o Acción digestiva de la amilasa de la saliva sobre el almidón ..................................................... 82

4
o Elaboración de jabones....................................................................................................................... 84
o Estudio de la cristalización de sales ............................................................................................... 86
o Las propiedades de los minerales..................................................................................................... 88
o Estudio de las rocas .............................................................................................................................91
o Rocas y procesos geológicos externos............................................................................................ 95
o Interpretación del mapa topográfico ............................................................................................. 98
o El perfil topográfico............................................................................................................................102
o El tiempo en Geología ..........................................................................................................................103
3 . – FICHAS DE TRABAJO PARA EL ALUMNO .......................... 106
o Reconocimiento de material de laboratorio...................................................................................107
o La lupa binocular...................................................................................................................................109
o El microscopio óptico...........................................................................................................................110
o Observación de microorganismos de agua dulce .......................................................................... 111
o Observación de células animales y vegetales................................................................................112
o Observación de epidermis vegetal...................................................................................................114
o Ósmosis en células vegetales ............................................................................................................116
o Observación de mitosis en raíz de cebolla ....................................................................................117
o Estudio de un moho..............................................................................................................................119
o Simbiosis ................................................................................................................................................120
o Extracción y separación de pigmentos fotosintéticos................................................................122
o Tinción de textiles con pigmentos vegetales ................................................................................124
o Factores que condicionan la fotosíntesis.......................................................................................125
o Observación de anteras y germinación del grano de polen........................................................127
o El desarrollo del renacuajo................................................................................................................129
o Estudio y disección de un erizo de mar..........................................................................................131
o Fecundación y desarrollo embrionario en el erizo de mar .........................................................133
o Estudio y disección de un mejillón ...................................................................................................135
o Disección de un corazón de cerdo....................................................................................................138
o Determinación del porcentaje de agua en la materia viva .........................................................141
o Reconocimiento de la presencia de una sal mineral: carbonato cálcico ..................................142
o Reconocimiento de azúcares reductores .......................................................................................143
o Reconocimiento de la presencia de un polisacárido: almidón.....................................................144
o Reconocimiento de lípidos..................................................................................................................145
o Reconocimiento de proteínas ............................................................................................................147
o Identificación de biomoléculas en soluciones problema.............................................................148
o Actividad enzimática de la catalasa ................................................................................................150
o Acción digestiva de la amilasa de la saliva sobre el almidón .....................................................151
o Elaboración de jabones.......................................................................................................................152
o Estudio de la cristalización de sales ...............................................................................................153

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o Las propiedades de los minerales.....................................................................................................155
o Estudio de las rocas ............................................................................................................................157
o Rocas y procesos geológicos externos............................................................................................159
o Interpretación del mapa topográfico .............................................................................................161
o El perfil topográfico............................................................................................................................164
o El tiempo en Geología ..........................................................................................................................166
4 .- PREPARACIÓN DE ALGUNAS MEZCLAS Y FÓRMULAS COMUNES
EN LAS PRÁCTICAS DE LABORATORIO ............................ 169
o Soluciones y reactivos.........................................................................................................................170
o Colorantes...............................................................................................................................................172
o Medios de cultivo..................................................................................................................................174
5 . – BIBLIOGRAFÍA......................................................... 176

Prácticas de Biología y Geología El marco teórico
7
Un planteamiento constructivista de la enseñanza de las Ciencias.
El modelo constructivista de la enseñanza/aprendizaje tiene su origen en las teorías cognitivas
de Piaget, Bruner y Vigotsky desde la primera mitad del S. XX, pero también otros han
apartado visiones diferentes que han contribuido a completarlo y concretarlo. Definir el
constructivismo no es una tarea fácil; tratando de buscar un consenso común, diremos que el
modelo se basa en los siguientes principios:
– Los conocimientos previos: lo que se adquiere a través del aprendizaje (cualquier situación
vital o experiencia personal puede producir aprendizaje) no constituye un cúmulo de datos
aislados e independientes, sino que se integran unos con otros formando una compleja red
de ideas y conceptos con múltiples relaciones entre sus partes. Este complejo esquema
cognitivo es lo que nos permite interpretar, comprender y dar sentido a nuestras
experiencias.
Todos los estudiantes tienen una idea previa, más o menos vaga, más o menos correcta,
sobre aquellos fenómenos objeto de estudio, es decir, se enfrentan a lo nuevo con un
esquema cognitivo previo, que les permite dar una interpretación personal del fenómeno. Lo
que se busca con la enseñanza es una mejora de la “calidad” de ese esquema cognitivo,
mejora que se consigue tanto por la incorporación de nuevas ideas como por la sustitución de
viejas concepciones por otras nuevas, o por un cambio en las relaciones entre ideas.
Los conocimientos previos de los estudiantes tienen mucho que ver con los errores
conceptuales que se mantienen incluso después de haber recibido enseñanza sobre el tema a
lo largo de varios cursos, así que el conocimiento del profesor sobre cuáles son estas ideas
previas es un punto de partida imprescindible para diseñar actividades y planificar un
proceso de enseñanza encaminado a poner en crisis estos preconceptos erróneos.
– El conflicto cognitivo: construir nuevos significados no es un proceso pasivo, por el
contrario, es necesario que lo que se va a aprender sea sometido a contraste con el esquema
cognitivo previo. El desequilibrio que se produce ante lo nuevo, ante lo que no se puede
explicar o comprender es un conflicto cognitivo. Si existe motivación suficiente y
expectativa razonable para resolver el conflicto cognitivo, se hará un esfuerzo para buscar
y asimilar nuevos conocimientos (aprendizajes). En caso contrario se abandonará, no se
producirá aprendizaje y no se resolverá el conflicto, que perdurará como algo carente de
sentido.
– El aprendizaje significativo: se aprende un nuevo contenido cuando este se asimila y
acomoda en el esquema cognitivo previo, es decir, cuando se relacionan con lo que ya se sabe,
siguiendo una lógica, con sentido, y no arbitrariamente. Si lo que se intenta aprender no
resulta irreconciliable con el esquema previo, puede ser incorporado y de ahí surgir un nuevo
significado en la mente de quien aprende. Para que se produzcan aprendizajes significativos
es preciso reunir las siguientes condiciones:
- Los nuevos contenidos deben presentarse y facilitarse bien estructurados y
organizados, de manera que no resulte difícil encontrar relaciones entre las nuevas
ideas y con los conocimientos previos. Lo que se pretenderá es la incorporación
coherente, no memorística, al esquema cognitivo del alumno.
- Los nuevos contenidos no pueden estar muy alejados de lo que el alumno ya conoce. Si
las nuevas ideas están muy alejadas de sus conocimientos resultarán completamente
ininteligibles y no podrán ser acomodadas en su esquema mental.
- Es necesaria una buena motivación del alumno, pues sin ella no estará dispuesto a
buscar la manera de resolver el conflicto cognitivo que se le plantea. El cambio
conceptual es un proceso activo que requiere el esfuerzo de quien aprende y para ello
debe tener interés y creer que puede hacerlo.

8
Pese a la amplia difusión y aceptación del constructivismo a lo largo de las últimas décadas,
algunas voces muy cualificadas (Solomon, Jenkins, Shuchting...) se han alzado críticas contra el
denominado “modelo constructivista”, presentándolo como una moda, como una peligrosa
tendencia intelectual a la que todos se adscriben acríticamente por impregnación social, pero
que no constituye, sobre la práctica, un auténtico modelo de enseñanza/aprendizaje. No se
puede negar que el término “constructivismo” tiene diferentes significados desde diferentes
ópticas, lo que obliga a precisar con mayor exactitud de qué constructivismo estamos
hablando. Admitiendo las aportaciones de la psicología, el “consenso constructivista” en la
didáctica de las ciencias tiene un origen especifico en las numerosas investigaciones
publicadas sobre múltiples aspectos de la educación científica: las preconcepciones científicas,
los materiales curriculares de ciencias, los trabajos prácticos... Unas investigaciones cuyos
resultados van constituyendo el corpus teórico de la nueva didáctica de las ciencias de la que,
sin duda alguna, emerge un consenso basado en planteamientos constructivistas de la
enseñanza/aprendizaje de las ciencias. Esa base común, emanada de la investigación didáctica,
la expresa D. Gil como el acuerdo en aquello que debería evitarse en la práctica docente, por
conducir a una visión simplista y en exceso distorsionada de lo que es la construcción de
conocimiento científico. Se trata de un conjunto de deformaciones estrechamente
relacionadas y asociadas, socialmente admitidas, que la educación científica debe ayudar a
transformar:
- Visión descontextualizada, socialmente neutra: se ignoran las complejas relaciones Ciencia
/ Tecnología / Sociedad, como si la ciencia fuera un producto elaborado al margen de
intereses socioeconómicos de todo tipo, como si el progreso científico no estuviera
condicionado y al servicio de las sociedades que lo producen.
- Visión individualista y elitista: presenta la ciencia como la obra de genios, sumamente
capaces y sabios, que trabajan dentro de un inaccesible laboratorio repleto de extraños
instrumentos. Esta visión ignora el trabajo colectivo de los equipos investigadores y olvida
que el conocimiento científico es una construcción compleja que nace de las aportaciones de
muchos, desde varios ámbitos y con múltiples puntos de vista.
- Visión empirista y ateórica: resalta el papel de la observación y la experimentación como la
manera de construir el conocimiento científico, olvidando el papel de las hipótesis como
intentos de respuesta a un problema y sometiendo estas al contraste empírico. Son las
hipótesis quienes focalizan el trabajo científico y no la observación y experimentación
independientes, neutras.
- Visión rígida y algorítmica: presenta la ciencia como el resultado de un supuesto “Método
Científico” aplicable sistemáticamente, etapa tras etapa, y cuyos resultados son infalibles.
Esta visión ignora todo lo que la ciencia tiene de creatividad, de imaginativo en el
planteamiento de hipótesis de trabajo, de azar...
- Visión aproblemática y acabada: se produce al transmitir resultados y modelos científicos
acabados, sin mostrar cual ha sido su evolución histórica, los problemas que se han
planteado, ni mucho menos, las limitaciones actuales del modelo o las perspectivas abiertas.
- Visión acumulativa y lineal: presenta la evolución de los conocimientos científicos como una
sucesión de teorías que han conducido al modelo actualmente aceptado, pero olvidando las
frecuentes confrontaciones entre teorías alternativas, ni los complejos procesos de cambio
que han constituido auténticas revoluciones científicas y tecnológicas.
Estas diferentes visiones de la ciencia, que no son independientes, sino que aparecen asociadas
entre si para transmitir una idea demasiado simplista de la ciencia, constituyen un serio
obstáculo en la renovación de la educación científica, por lo que se impone una reflexión para
superar “lo que siempre se ha hecho” y evolucionar, paso a paso, hacia una enseñanza de la
ciencia apoyada en actividades más abiertas, que exijan más implicación de los estudiantes

9
para emitir y comprobar conjeturas razonadas sobre hechos o fenómenos naturales objeto de
estudio, en la línea de lo que D. Gil (1992) ha denominado “tratamiento de situaciones
problemáticas abiertas que los estudiantes puedan considerar de interés”.
Las prácticas de laboratorio en el marco de la enseñanza de las ciencias.
Gran parte del trabajo de los científicos tiene lugar en los laboratorios, donde se diseñan y
ejecutan complejos experimentos a través de los cuales se logra progresar sobre las hipótesis
planteadas en la investigación. Si la enseñanza de las ciencias ha de promover la adquisición de
conocimientos, habilidades y actitudes “científicas”, es indudable que no cabe una enseñanza
de las ciencias que no incluya los trabajos prácticos en el laboratorio como actividad de
aprendizaje de capital importancia.
Siempre se les ha otorgado un gran valor a las prácticas de laboratorio en la
enseñanza/aprendizaje de las ciencias, pero no ha existido el mismo acuerdo en cuanto al papel
que estas deben jugar en el currículo y así, el enfoque que se les ha dado a las prácticas de
laboratorio ha evolucionado de forma paralela a como lo han hecho los diferentes modelos
didácticos.
Bajo el modelo de enseñanza por transmisión/recepción, las prácticas de laboratorio se han
utilizado preferentemente para ilustrar y comprobar leyes o modelos previamente explicados
por el profesor, y para adquirir ciertas habilidades en el manejo de aparatos y técnicas de
laboratorio. Bajo esta óptica es el profesor quien diseña la práctica y quien la dirige, mientras
que el papel del alumno queda relegado a ser el ejecutor de un conjunto de instrucciones
previamente establecidas, muchas veces reducidas al manejo más o menos correcto de ciertos
instrumentos, con un nivel de autonomía e indagación nulo.
Con el apogeo, a lo largo de la década de los setenta, del modelo de enseñanza por
descubrimiento, que ponía el énfasis en el trabajo del alumno más que en el del profesor, se
potenció un planteamiento de las prácticas de laboratorio como actividades de descubrimiento
de hechos, leyes y principios a los que el alumno llega mediante el empleo de los
procedimientos de la ciencia (observación sistemática, diseño experimental, contraste de
hipótesis, etc).
El surgimiento de una concepción constructivista de la enseñanza/aprendizaje de las ciencias
ha cambiado el énfasis por el descubrimiento por el énfasis en la construcción del
conocimiento, reforzando el papel de los conocimientos previos de los alumnos y el valor de las
prácticas de laboratorio como instrumentos para motivar, generar conflictos cognitivos y dar
origen a nuevas ideas. No se trataría tanto de descubrir como de construir nuevo conocimiento
a través de la confrontación de las ideas propias con las de los demás y con la experiencia,
sabiendo que la interpretación siempre se hace a través de nuestras propias concepciones.
Obviamente el enfoque que se les de a las prácticas de laboratorio depende en gran medida de
las concepciones epistemológicas y pedagógicas del docente, pero en todo caso es necesario
explicitar cuáles son los objetivos que se persiguen, y en esto se encuentra una enorme
diversidad. A. Caamaño (1992) propone un esquema integrador de los diferentes tipos de
objetivos que se pueden plantear desde diferentes ópticas:
- Objetivos de tipo conceptual: son objetivos encaminados a mostrar los fenómenos
naturales, hacer concretos los conceptos más abstractos y facilitar la comprensión de los
principios que constituyen el saber científico. Pueden ser:
o Relacionados con el conocimiento vivencial de los fenómenos en estudio.
o Relacionados con la comprensión de conceptos, leyes y teorías.
o Relacionados con la elaboración de modelos y teoría a través del contraste de
hipótesis.

10
o Relacionados con el desarrollo tecnológico.
- Objetivos de tipo procedimental: son objetivos que buscan enseñar el “modo de hacer” de
los científicos. Pueden ser:
o Relacionados con habilidades prácticas (destrezas, técnicas, etc) y estrategias de
investigación (control de variables, tratamiento de datos, etc).
o Relacionados con la adquisición del conocimiento en un contexto científico
(observación sistemática, inferencia, emisión y contraste de hipótesis, etc).
o Relacionados con la comunicación científica (buscar, analizar y presentar información
diversa, comunicar resultados, etc).
- Objetivos de tipo actitudinal: son objetivos que buscan la motivación del alumno y el
afianzamiento de actitudes positivas hacia la ciencia. Pueden ser:
o Relacionados con la motivación (interés por la ciencia, confianza en la capacidad propia
para resolver problemas, etc).
o Relacionados con los “valores” propios de la actividad científica (objetividad,
perseverancia, colaboración, etc).
Es necesario tener presente esta clasificación en el momento de planificar las prácticas de
laboratorio para un curso o una etapa, y buscar un equilibrio adecuado entre los tres tipos de
objetivos, teniendo en cuenta que cualquier fenómeno natural que podamos abordar en el
laboratorio se puede planificar adaptándolo al tipo de objetivo que se desee y al aprendizaje
que se pretenda.
Diversos tipos de prácticas de laboratorio.
No es posible que un solo tipo de práctica de laboratorio cubra todos los objetivos definidos
más arriba. Woolnoug y Allsop (1985) proponen una clasificación de las actividades prácticas
en función de los objetivos atribuibles a cada tipología:
o Experiencias: son actividades que pretenden familiarizar perceptivamente al alumno con
un fenómeno natural. Se trata de proporcionar una experiencia personal y un conocimiento
tácito del fenómeno. Son ejemplos: la observación de propiedades físicas de los minerales,
la observación de células animales y vegetales, la germinación de una semilla, la
observación de microorganismos de vida acuática, etc.
o Experimentos ilustrativos: son prácticas que pretenden ejemplificar principios,
comprobar leyes o facilitar la comprensión de determinados conceptos. Son más complejas
y menos directas que las anteriores, y es frecuente que requieran control de variables,
realización de medidas, tratamiento de datos y otras habilidades básicas. Como ejemplos
podemos citar: la influencia de la luz en la producción de almidón por fotosíntesis en las
hojas de una planta, la comprobación de los cambios de turgencia celular al cambiar la
concentración salina del medio, la influencia del factor tiempo en la formación de cristales
de sal por precipitación química, etc.
o Ejercicios prácticos: son actividades dirigidas a desarrollar habilidades prácticas
(medida, manipulación de instrumentos, técnicas de laboratorio, tratamiento de datos, etc)
o habilidades intelectuales (observación, clasificación, diseño experimental, formulación y
contraste de hipótesis, comunicación de resultados, etc). Son ejercicios prácticos
frecuentes: las técnicas de microscopía, los métodos para reconocimiento de moléculas
orgánicas, los ejercicios de cartografía geológica, la separación de sustancias por
cromatografía, la construcción de gráficas, la redacción de informes, etc.
o Investigaciones: son actividades complejas que dan a los alumnos la oportunidad de
trabajar como científicos en la resolución de un problema que se plantea completamente

11
abierto y que debe resolverse mediante la planificación y desarrollo de un método
experimental. En estas prácticas no se busca ilustrar o demostrar un principio o ley, sino
involucrar a los estudiantes en una investigación conducida en gran medida por su propia
iniciativa, procurando la máxima implicación personal en la búsqueda de la solución. Algunos
ejemplos de problemas abiertos para plantear una investigación son: ¿Qué moléculas
orgánicas contiene la leche? ¿Cómo influye la hormona tiroxina en la metamorfosis del
renacuajo? ¿Cuánto agua hay en la materia viva?
Al plantearse el estudio práctico de un fenómeno natural podemos diseñar la actividad como
una experiencia, un experimento, un ejercicio o una investigación según lo que se pretenda.
Así, por ejemplo, la cristalización de la sal común puede plantearse como:
o Una experiencia, si sólo pretendemos que los estudiantes observen cómo a partir de una
disolución concentrada puede precipitar un sólido cristalino.
o Un experimento ilustrativo, si pretendemos demostrar que los cristales son más grandes si
crecen lentamente.
o Un ejercicio práctico, si lo que nos interesa es aprender una técnica de separación de
soluto y disolvente.
o Una investigación, si pretendemos conocer la cantidad de sal que hay el agua de mar.
¿Qué tipo de prácticas de laboratorio debemos programar? De todos los tipos, según la
situación en que nos encontremos y las pretensiones que tengamos, siendo conscientes de las
características que presenta cada una: asi, las experiencias, breves y directas, pueden
proporcionar al alumno la primera vivencia de un fenómeno que difícilmente tendría significado
para él si no lo observa nunca de un modo práctico. Muchas de ellas apenas requieren
instrumental y pueden realizarse en poco tiempo, en el mismo aula y en el contexto de una
explicación teórica, con la ventaja de la inmediatez que eso supone. Los experimentos
ilustrativos son las prácticas más frecuentes en los centros docentes, se emplean para
mejorar la comprensión de leyes y principios abstractos y, por lo tanto, contribuyen
enormemente al desarrollo de lo conceptual. Los ejercicios prácticos son actividades más
centradas en el laboratorio y el trabajo experimental, favorecen un manejo instrumental
preciso y desarrollan capacidad para elaborar conjeturas razonadas, para manejar datos y
presentar resultados. Las investigaciones son propuestas de trabajo muy abiertas, planteadas
para trabajar emulando un equipo de investigadores científicos, con autonomía para diseñar el
método experimental, sacar conclusiones y presentar resultados. El desarrollo de una
investigación requiere utilizar los conceptos teóricos, las habilidades prácticas, las
estrategias de investigación y las habilidades de comunicación, por eso tienen un gran valor
formativo, pero también hay enormes dificultades para realizarlas de modo regular. En todo
caso, una investigación exige del profesor un seguimiento muy cercano del trabajo de los
alumnos, orientándolos y ayudándolos en todo momento, pero al tiempo, evitando un excesivo
dirigismo de la actividad que la convertiría en otra cosa, y también asegurando que los
estudiantes llegan a un resultado coherente.
El grado de apertura de las prácticas de laboratorio.
La enseñanza de las ciencias en la E. Secundaria debe proporcionar a los alumnos una visión del
papel de la ciencia y del desarrollo tecnológico de las sociedades, lo que se consigue a través
de la enseñanza de los hechos científicos, de las teorías y modelos que constituyen el
conocimiento científico del mundo. Pero la formación en ciencias también debe favorecer las
actitudes científicas, debe transmitir el valor del pensamiento científico y de sus

12
procedimientos como forma de exploración de la naturaleza, y esto se consigue colocando a los
estudiantes en situación de explorar e investigar para resolver problemas de un modo similar a
como lo hacen los propios científicos. En esta línea, se trata de utilizar las prácticas de
laboratorio para plantear cuestiones abiertas a las que hay que dar respuesta a través de una
pequeña investigación.
Diversos autores (Herron, 1971; Tamir, 1989) han propuesto un marco de análisis para
determinar el nivel de apertura de una práctica de laboratorio en función de quién acote el
problema, quién diseñe el método experimental y quién proporcione la respuesta.
Nivel de
apertura
¿Quién acota el
problema?
¿Quién diseña el
método experimental?
¿Quién proporciona la
respuesta?
0
1
2
3
Profesor /libro de texto
Alumno
Alumno
Alumno
Alumno
Alumno
Alumno
Las actividades de nivel 0 no suponen ninguna investigación, se trata de observaciones o
demostraciones en las que es nulo el grado de indagación del alumno. Se encuadran dentro de
este nivel casi todas las actividades de tipo experiencias, y tienen valor cuando los alumnos
tienen poca autonomía en el laboratorio, para motivar, proporcionar vivencias, adquirir técnicas
o demostrar principios teóricos.
Las actividades del nivel 1 permiten cierto nivel de indagación, puesto que otorgan autonomía al
alumno para interpretar unos resultados y encontrar una respuesta después de haber seguido
las instrucciones proporcionadas por el profesor o el libro de texto. Se engloban en este nivel
las experiencias más abiertas, los experimentos ilustrativos y aquellos ejercicios prácticos que
se centran en habilidades prácticas (medida, manipulación de instrumentos, técnicas de
laboratorio, tratamiento de datos, etc). Potencian la capacidad de resolver preguntas
aplicando un método o técnica previamente establecido.
Las prácticas de nivel 2 representan un salto cualitativo en el grado de apertura e indagación
al dejar en manos del alumno el diseño del método experimental, lo que supone emitir hipótesis
y establecer experimentos para poder contrastarla, sacar conclusiones y comunicar el
resultado de forma precisa. Se englobarían en este nivel aquellos ejercicios prácticos más
centrados en habilidades intelectuales (diseño experimental, contraste de hipótesis,
comunicación, etc) y las investigaciones propuestas por el profesor o el libro de texto.
Las prácticas de nivel 3 permiten el máximo grado de indagación, al ser los propios alumnos
quienes tienen que acotar el problema y plantearlo en términos que permitan abordarlo como
un verdadero trabajo de investigación para, a partir de ahí, decidir todo el diseño
experimental, ejecutarlo y encontrar soluciones o nuevos problemas que investigar. Entran en
esta categoría las actividades prácticas definidas como investigaciones, en la línea de lo que D.
Gil (1992) ha denominado “Tratamiento de situaciones problemáticas abiertas que los alumnos
puedan considerar de interés”.
Es evidente que las investigaciones son las prácticas de laboratorio que mayor grado de
apertura presentan y parecen tener un mayor potencial para aumentar la motivación y el
interés de los estudiantes al estar directamente involucrados en el planteamiento y resolución
de la actividad, y en este sentido serían el tipo de actividades hacia las que deberíamos dirigir

13
los esfuerzos, como muchas publicaciones han aconsejado en los últimos años, pero ¿pueden
investigar nuestros alumnos? Los expertos sostienen que son muchas las dificultades que
hacen posible una investigación en el contexto de la E. Secundaria. La mayoría de los autores
apuntan a las siguientes:
A - Dificultades relacionadas con el grado de autonomía en el diseño experimental: acotar el
problema en términos que permita abordarlo en el laboratorio requiere identificar
variables que influyen, diseñar algún tipo de prueba y decidir qué instrumentos utilizar y
qué medidas hacer. Todo esto es una tarea compleja que muchas veces los estudiantes no
resuelven por sí solos, asi que esto llevará al profesor a orientar, dar instrucciones,
corregir, etc, asi que poco a poco, si nuestros estudiantes no son autónomos, la
investigación se transformará en una actividad más o menos guiada, es decir, más cerrada.
B - Dificultades relacionadas con los conceptos: no podemos olvidar que la capacidad del
alumno para afrontar una investigación depende del grado de dominio de los conceptos
implicados en ella. Las hipótesis que formulen los estudiantes siempre estarán en función
del conocimiento que tengan sobre el fenómeno estudiado. Si el conocimiento teórico que
tienen los estudiantes es pequeño, la investigación debe proponerse sobre problemas con
muy poca carga conceptual y muy familiares, de forma que esta carencia no suponga un
obstáculo infranqueable. Como consecuencia podemos vernos investigando sobre
cuestiones de muy poco interés más allá de la manipulación de aparatos y la realización de
medidas.
C - Dificultades relacionadas con la complejidad procedimental: derivan del tipo y número de
variables involucradas en la investigación. Si hay más de una variable y además son de tipo
continuo (por ejemplo: temperatura y tasa de actividad biológica), será necesario
construir un dispositivo experimental que puede ser demasiado complejo para nuestros
estudiantes, así que nos veremos obligados a trabajar con una variable, que deberá ser la
mayoría de las veces, de tipo discreto (por ejemplo: presencia / ausencia). Esto limitará
mucho el tipo de investigaciones que podamos plantear.
D – Dificultades derivadas de la exigencia programática: desarrollar una investigación sobre
un problema concreto es un trabajo lento que se extiende mucho en el tiempo, así que
cuando los programas de las áreas y materias son amplios y pocas las sesiones semanales
asignadas a las clases de ciencias, la realización de investigaciones supondría un recorte
importante de los contenidos recogidos en el programa. El recorte de contenidos puede
ser algo asumible en favor de un mejor aprendizaje, hasta un cierto punto pero, como
profesionales docentes, también debemos garantizar unos mínimos que permitan el
progreso adecuado de los estudiantes a lo largo de los cursos y las etapas educativas.
Antes de lanzarnos a transformar todas nuestras prácticas de laboratorio en investigaciones
debemos reflexionar sobre las dificultades y limitaciones que implican y sobre el papel que
también deben jugar en el currículo las actividades más dirigidas y expositivas, tan
desprestigiadas en los últimos años, pero que están siendo rehabilitadas en muchas
publicaciones recientes. Tal vez convenga reconvertir algunos experimentos ilustrativos en
investigaciones, o plantearlos de modo menos cerrado, pero tampoco olvidemos que otras
actividades, menos abiertas, también tienen un indudable valor educativo. En cualquier caso, la
condición fundamental para que una práctica de laboratorio no se reduzca a un simple
entretenimiento es que sea relevante para los estudiantes, que se impliquen en ella y que
puedan realizar sus aportaciones en el desarrollo de la misma, evitando actitudes pasivas.

14
2– Manual didáctico para el profesor

Prácticas de Biología y Geología Manual didáctico
15
RECONOCIMIENTO DE MATERIAL DE LABORATORIO
Objetivo
- Identificar y conocer algunos de los materiales más frecuentes en el laboratorio.
Agrupamiento y Material
Nivel : E.S.O. Agrupamiento: 2 Alumnos por equipo
Material común:
- Microscopio
- Lupa binocular
- Mortero
- Matraz
- Vaso de precipitados
- Pinzas
- Lanceta
- Probeta
- Porta y cubre
- Mechero de alcohol
- Trípode
- Pinza madera
- Bisturí
- Gradilla y tubo de ensayo
- Placa de Petri
- Bandeja de disección
- Pipetas
Fundamento
Se trata de familiarizarse con instrumentos comunes de laboratorio. La práctica permitirá un
primer acercamiento de los alumnos al laboratorio de Ciencias Naturales. No se trata de
realizar ningún manejo ni diseño experimental, tan solo de observar los aparatos más comunes
y deducir de una manera sencilla su utilidad.
Método
- El material se dispone numerado en varias mesas de laboratorio y los alumnos y alumnas
tratan de identificar cada instrumento con la ayuda de láminas de apoyo. Después
resolverán las actividades propuestas en el guión del alumno.
- La sopa de letras la completa cada uno y la resuelve su compañero de equipo.
Resultados
- Qué instrumentos utilizarías para:
1 – Medir 1 ml de un líquido: pipeta.
2 – Medir el volumen de una piedra pequeña: probeta.
3 – Observar microorganismos de una charca: microscopio, porta y cubre.
4 – Observar una flor: lupa binocular, pinza y lanceta.
5 – Hacer la disección de una rana: bandeja de disección, pinza y bisturí
6 – Cultivar bacterias y hongos: placa de Petri.
Observaciones
- Conviene que el grupo sea lo más reducido posible.
- La cantidad de instrumentos no debe ser ni muy grande ni muy pequeña, el número ideal
está entre 15 y 20.

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Material de uso común en el laboratorio
Nombre: microscopio
Uso: observación de objetos
transparentes hasta 400
aumentos
Nombre: nuez
Uso: para sujetar pinzas y
aros en una varilla soporte
Nombre: lupa binocular
Uso: observación de muestras
y objetos opacos con 20
aumentos
Nombre: pinza y aro de nuez.
Uso: se colocan con nuez sobre
una varilla soporte
Nombre: mechero de alcohol
Uso: calentar objetos. Utiliza
alcohol de quemar como
combustible
Nombre: tubos de ensayo
Uso: para realizar pruebas
Nombre: mechero Bunsen
Uso: calentar objetos. Usa gas
como combustible
Nombre: gradilla
Uso: colocar tubos de ensayo
Nombre: trípode
Uso: para colocar objetos
sobre el mechero
Nombre: probeta
Uso: medida de volúmenes con
exactitud
Nombre: rejilla difusora
Uso: colocada sobre el trípode
impide la llama directa sobre el
recipiente
Nombre: pipeta
Uso: medida de pequeños
volúmenes con precisión
Nombre: varilla soporte
Uso: para colocar pinzas y
aros de nuez
Nombre: matraz Erlenmeyer
Uso: contener líquidos y
medir volúmenes de líquidos

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Material de uso común en el laboratorio
Nombre: vaso de precipitados
Uso: contener líquidos y otros
usos
Nombre: porta y cubre
Uso: para preparaciones
microscópicas
Nombre: cristalizador
Uso: cristalización de sales.
Frecuentemente se le asignan
otros usos
Nombre: pinzas
Uso: para disección y otros
usos
Nombre: frasco cuentagotas
Uso: contener reactivos y
colorantes
Nombre: tijeras
Uso: para disección
Nombre: embudo
Uso: filtración y trasvase de
líquidos
Nombre: bisturí
Nombre: placa de Petri
Uso: para cultivos bacterianos
y otros usos
Nombre: aguja y lanceta
Nombre: mortero
Uso: para triturar sólidos
Nombre: bandeja de disección
Uso: para disección. Con
frecuencia se le asignan otros
usos
Nombre: balanza granatario
Uso: medida de la masa
Nombre: escobilla
Uso: limpieza de tubos y
matraces

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LA LUPA BINOCULAR
Objetivo
- Conocer las características, el uso y la conservación de la lupa binocular.
Nivel: E.S.O. Agrupamiento: 1 ó 2 Alumnos
Material común:
- Colección de insectos, fósiles,
flores, etc.
Material por equipo:
- Lupa binocular
- Aguja, lanceta (si es necesario)
Descripción
Es un instrumento para la observación tridimensional de
pequeños cuerpos. La lupa no requiere que la luz atraviese
la muestra, por lo que se pueden observar objetos opacos,
a diferencia de lo que ocurre con el microscopio. En una
lupa binocular se distinguen dos partes diferentes: óptica
y mecánica.
A) Parte óptica: compuesta por dos sistemas ópticos que
deben converger sobre la muestra, para que cada ojo
reciba una imagen y se logre la visión estereoscópica del
objeto. Cada grupo óptico está constituidos por un ocular,
un objetivo y un cuerpo inversor.
- Oculares (1). Son dos grupos de lentes que
proporcionan aumentos, están montadas sobre sendos tubos que pueden desplazarse
para ajustar su posición a la distancia interpupilar del observador y conseguir una buena
visión estereoscópica.
- Objetivos (2). Sistemas de lentes que proporcionan aumentos.
- Cuerpos inversores (3). Son dos grupos de lentes que no proporcionan aumentos, pero
invierten la imagen para que el observador pueda percibirla en su posición correcta (en
caso contrario sería una imagen invertida).
El número de aumentos que proporciona el sistema objetivo-ocular de la lupa suele ser
de 20x, aunque existen otros.
B) Parte mecánica: sirve de soporte a la parte óptica y permite la manipulación del
instrumento.
- Estativo o columna (4). Cilindro metálico que permite el desplazamiento en altura del
cuerpo de la lupa y el giro completo sobre el eje de la columna.
- Brazo o soporte (5). Pieza encajada en la columna, que desliza sobre la misma y soporta
los grupos ópticos.
- Mando de bloqueo (6). Tornillo que permite desplazar o bloquear el brazo a derecha e
izquierda, incluso para observaciones fuera de la platina.
- Anillo de sujeción (7). Permite colocar la lupa a la altura óptima sobre la columna.

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- Mando de enfoque (8). Permite el enfoque sobre diferentes zonas de la muestra al
mover los grupos ópticos mediante un sistema de arrastre por cremallera y cola de
milano.
- Platina (9). Placa de vidrio esmerilado sobre la que se coloca la muestra. Puede
sustituirse por otras de diferentes colores para mejorar la observación por contraste.
Sobre ella se disponen dos pinzas (10) para la sujeción de las muestras.
- Base (11). Pieza robusta y pesada sobre la que se inserta la columna y que da soporte al
instrumento.
Manejo de la lupa binocular
La lupa binocular es un instrumento de precisión que no debe ser sometido a golpes ni fuertes
vibraciones y que se manejará sin forzar ningún mecanismo. Para lograr una buena observación
debes seguir estas instrucciones en el mismo orden que figuran:
- Coloca una mano bajo el cuerpo de la lupa (grupos ópticos) para sujetarlo y, con la otra
mano, suelta el mando de bloqueo para que el soporte pueda deslizar sobre la columna.
- Mueve el cuerpo de la lupa sobre la columna hasta que esté situado 5 o 6 cm encima de la
platina y aprieta de nuevo el mando de bloqueo.
- Suelta el anillo de fijación y bloquéalo justo debajo del brazo. A partir de este momento
puedes aflojar el mando de bloqueo para “barrer” a derecha e izquierda de la muestra.
- Coloca la muestra sobre la platina y, si fuera necesario, sujétala con las pinzas.
- Mirando por los oculares, mueve el mando de enfoque hasta obtener buena imagen. Es
aconsejable realizar el enfoque sólo con el ojo derecho y después corregir la diferencia
de visión con el anillo corrector, que se encuentra rodeando el ocular izquierdo.
- La iluminación de la muestra puede ser natural, mediante la luz de una ventana, o
artificial, recurriendo a una lámpara auxiliar situada lateralmente. Algunos modelos
incorporan dos pequeñas bombillas que permiten una iluminación desde arriba o desde
debajo de la platina.
Método
- Siguiendo las explicaciones del profesor, completa la tabla con el nombre de las partes y la
función de cada una de ellas.
- Realiza la observación de las muestras siguiendo las indicaciones del profesor.

20
EL MICROSCOPIO ÓPTICO
Objetivo
- Conocer las características, el uso y la conservación del microscopio óptico.
Nivel: E.S.O. Agrupamiento: 1 ó 2 Alumnos
Material común:
- Colección de preparaciones para
microscopio óptico
- Agua de charca (opcional)
- Microscopio
- Un juego de porta y cubre (opcional)
Descripción
Es un instrumento para la observación de cuerpos
transparentes, aumentándolos hasta 400 veces, con un
poder de resolución de 0,2 ηm (frente a 100.000 ηm del
ojo humano). Permite la observación de organismos
unicelulares o pluricelulares muy pequeños, o bien de
secciones delgadas de tejidos. Consta de dos partes
fundamentales: óptica y mecánica.
A) Parte óptica: compuesta por un conjunto de lentes y
el sistema de iluminación.
- Ocular (1). Es una lente que va suelta dentro del
tubo, con el consiguiente RIESGO DE CAÍDA si se
invierte el microscopio. Los aumentos que
proporciona viene indicado sobre él (5x, 10x, 20x).
- Objetivo (2). Es un tubo que contiene varias
lentes combinadas que actúan como una sola, proporcionando un número de aumentos que
está indicado sobre el propio objetivo (4, 10, 40,...), así como la distancia focal (a menor
nº de aumentos mayor distancia focal y viceversa). El microscopio tiene varios objetivos
intercambiables al girar el revólver (3), lo que permite hacer observaciones a diferentes
aumentos. El número total de aumentos en cada momento se obtiene multiplicando los del
ocular por los del objetivo.
- Foco luminoso (4). Lámpara eléctrica que suele estar acompañada de un interruptor (5)
y un potenciómetro para regular la intensidad de luz.
- Diafragma (6). Permite regular la cantidad de luz que llega a la preparación y mejorar el
contraste de la imagen. Es un dispositivo de laminillas de tipo iris, cuyo orificio central
se gradúa con una palanca lateral.
- Condensador (7). Es una pieza compuesta por varias lentes, cuya función es concentrar
los rayos de luz sobre el objeto a examinar. Su acción es graduable por medio de otra
palanca giratoria, que provoca su acercamiento o alejamiento de la platina.

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B) Parte mecánica: sirve de soporte a la parte óptica y facilita el manejo del microscopio.
Comprende las siguientes partes:
- Tubo (8). Es un cilindro que sostiene en el extremo superior el ocular y en el inferior el
objetivo.
- Brazo (9). Pieza por donde se coge el microscopio para su traslado y que sostiene el tubo,
la platina y los tornillos de enfoque.
- Platina (10). Placa sobre la que se coloca la preparación. Va provista de dos pinzas (11)
para sujetarla .
- Tornillos de enfoque. Son dos mandos dobles, denominados macrométrico (12) o “macro”
y micrométrico (13) o “micro”. Ambos permiten subir y bajar la platina para efectuar el
enfoque; el macro imprime un movimiento rápido y es el primero en ser utilizado, mientras
que el micro imprime un movimiento muy lento, se usa en segundo lugar y "afina" el
enfoque.
- Pie o base (14). Pieza pesada por donde se apoya el microscopio sobre la mesa de trabajo.
Manejo del microscopio
El microscopio es un instrumento de precisión que no debe ser sometido a golpes ni fuertes
vibraciones, y debe ser manejado sin forzar ningún mecanismo. Se coloca en el centro de la
mesa, con el brazo hacia el observador. Para lograr una buena observación debes seguir la
siguientes instrucciones en ese mismo orden:
- Enchufa el microscopio y enciende la lámpara.
- Coloca la preparación sobre la platina de forma que la muestra quede iluminada.
- Gira el revolver hasta colocar en posición el objetivo de menos aumentos.
- Acciona el macrométrico para elevar la platina hasta su tope superior.
- Enfoca: mirando a través del ocular, mueve el macro hasta conseguir imagen.
- Mejora el enfoque utilizando el micro y regula la luz por medio del diafragma.
- Explora la preparación: muévela suavemente con los dedos mientras observas, hasta que
encuentres alguna zona de interés.
- Observa a mayor número de aumentos: coloca la zona de interés en el centro del campo y
enfoca con la mayor precisión posible, gira el revólver para colocar el objetivo
inmediatamente superior, corrigiendo el enfoque con el micro y la iluminación con el
diafragma.
- Con el objetivo de 40 aumentos se corre el riesgo de tocar la preparación y romperla al
accionar el macro, por lo que este objetivo debemos colocarlo sólo cuando tengamos
perfectamente enfocado con el objetivo inmediatamente inferior, y una vez colocado, sólo
debemos utilizar el micro para el enfoque, nunca el macro.
Método
- Siguiendo las explicaciones del profesor, completa la tabla con el nombre de las partes y la
función de cada una.
- Observa alguna preparación siguiendo el procedimiento que te indique el profesor.

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OBSERVACIÓN DE MICROORGANISMOS
DE AGUA DULCE
Objetivos
- Estudiar la diversidad de microorganismos que habitan en una charca de agua dulce.
- Practicar el manejo del microscopio óptico.
Nivel: E.S.O. Agrupamiento: 2 Alumnos por equipo
Material común:
- Agua de charca dulce con abundancia de
vida microscópica
- Varios cuentagotas para la toma de
muestras
- Microscopio
- Cubre y porta
Fundamento
Las charcas de agua dulce constituyen ecosistemas de enorme diversidad biológica,
especialmente por la gran variedad de formas de vida microscópica. La observación al
microscopio de pequeñas muestras de agua de estas charcas constituye un excelente ejercicio
para descubrir esa gran variedad de vida normalmente oculta a nuestros ojos.
Es esta gran biodiversidad la que dificulta el confeccionar una relación exhaustiva de los
organismos microscópicos del agua, por lo que nos limitaremos a indicar cuáles son los más
frecuentes y, por lo tanto, los más probables de encontrar en una muestra:
a) - Algas microscópicas: engloban una gran variedad de clases, familias y géneros. En
general están muy pigmentadas por clorofila, lo que permite su observación sin necesidad
de tinción. Pueden observarse los siguientes grupos:
- Diatomeas: son algas unicelulares de cuerpo protoplasmático con núcleo y
cromatóforos envueltos en un caparazón silíceo formado por dos valvas, como una
caja, denominado frústulo. En las aguas dulces forman un sedimento parduzco
característico denominado "tierra de diatomeas".
- Desmidiáceas: son algas unicelulares con cloroplastos desarrollados que le dan un
color verde brillante. Las células, por lo general, están divididas en dos mitades por
un surco más o menos profundo, cada una de las cuales es la imagen especular de la
otra.
- Clorofíceas: son algas que contienen clorofila como principal pigmento, por lo tanto
tienen una pigmentación verde. Pueden ser unicelulares o bien filamentosas, pudiendo
ser estos filamentos ramificados o no.
- Cianofíceas: se caracterizan por el color verde azulado propio de la cianina y distinto
del verde claro de la clorofila. Son muy abundantes sobre las rocas húmedas, donde
suelen formar masas viscosas.

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b) - Protozoos: son pequeños organismos unicelulares de formas muy diversas, por lo general
muy móviles debido a la presencia de cilios o flagelos. En algunas ocasiones aparecen
reunidos semejando una colonia, pero siempre son unicelulares, nunca pluricelulares.
Entre los protozoos más frecuentes en el agua dulce se encuentran los siguientes:
- Ciliados: unicelulares que presentan numerosos cilios sobre su superficie.
- Flagelados: son muy móviles gracias a la presencia de uno o dos flagelos. Con
frecuencia tienen una coloración verdosa (fitoflagelados).
- Rizópodos: protozoos que emiten pseudópodos para la locomoción o la alimentación.
Algunas familias tienen exoesqueleto (heliozoos y radiolarios).
c) - Pequeños metazoos de vida acuática: en el agua dulce aparecen multitud de pequeños
organismos metazoos, muchos netamente acuáticos y otros habitantes ocasionales del
agua. Los más frecuentes son:
- Rotíferos: pequeños animales acelomados que presentan un continuo movimiento de su
estómago masticador o mastax, bien observable al microscopio. Son muy abundantes.
- Gusanos: muy variados y de gran tamaño. Los más frecuentes son nemátodos, planarias
y algunos anélidos.
- Crustáceos: suelen estar presentes algunos pequeño bivalvos como los ostrácodos,
pero lo más abundante son los copépodos y los dáphnidos. Los primeros muestran un
cuerpo segmentado, con cabeza, tórax y abdomen y los segundos, poco segmentados,
permiten observar a través de su caparazón, el funcionamiento del corazón y el
movimiento del tubo digestivo.
- Insectos: están representadas multitud de formas larvarias y, en menor medida,
adultos que viven en un entorno acuático.
Método
- Toma una pequeña gota de agua y colócala en el porta.
- Coloca el cubre y observa al microscopio.
- Identifica los microorganismos con ayuda de los dibujos o las guías que se te faciliten.
Resultados
Los resultados serán los dibujos y descripciones que se hagan. Como ayuda se deben
proporcionar dibujos o claves sencillas para que los alumnos puedan identificar y clasificar los
microorganismos que encuentren en sus muestras.
Observaciones
- Se observa mayor biodiversidad y más abundancia en primavera, cuando las condiciones
ambientales de las charcas son más favorables para la vida microscópica.

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A - Algas microscópicas más comunes en el agua dulce
1 . Clorofíceas (algas verdes)
Chaetophora Myxonema Cladophora
Hormidium Spirogyra Ulothrix
Zygnema Ankistrodesmus Scenodesmus

25
2 . Cianofíceas (algas azules)
Nostoc Ocillatoria Hormidium
Coelastrum Coelosphaerium Anabaena
3 . Diatomeas 4 . Desmidiáceas
Tabellaria Asterionella Cosmarium
Fragilaria Navícula Closterium

26
B – Protozoos comunes en el agua dulce
1 . Protozoos ciliados
Colpidium
Spirostomum Stentor
Halteria
Vorticella Lacrymaria Euplotes
Stylonychia Paramecium

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2 . Protozoos flagelados
Chlamydomonas Euglena Gonium Pandorina
C – Metazoos de vida acuática
Gastrotrico (Chaetonotus) Rotífero (Philodina)
Platelminto (Planaria) Tardígrado (Echiniscus)
Copépodo (larva) Ostrácodo

28
Nemátodo Copépodo
Stylaria Daphnia
Larva de insecto Larva de insecto

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OBSERVACIÓN DE CÉLULAS
ANIMALES Y VEGETALES
Objetivos
- Estudiar la capacidad del microscopio óptico para mostrar estructuras celulares.
- Observar células animales y vegetales al microscopio óptico y compararlas.
Nivel: E.S.O. Agrupamiento: 2 Alumnos por equipo
Material común:
- Azul de metileno (un frasco
cuentagotas para dos equipos)
- Bulbo de cebolla troceado
- Microscopio
- 2 portas y 2 cubres
- Placa de Petri de diámetro inferior a la
longitud del porta.
- Pinza y lanceta
- Raspador o palillo plano
- Trozo de papel de filtro
Fundamento
Muchos epitelios, tanto animales como vegetales, constituyen un excelente material para
observar células al microscopio óptico. Las células epiteliales se mantienen unidas unas a otras
formando capas continuas, lo que facilita la extracción de películas de células
monoestratificadas, fácilmente extensibles sobre un porta y que pueden teñirse directamente
con azul de metileno.
La epidermis interna de las brácteas del bulbo de cebolla es un tejido fácilmente extraíble y
que permite una buena observación de células vegetales, mientras que el epitelio plano bucal lo
es para la observación de células animales. Realizando preparaciones de los dos tejidos es
posible comparar ambos tipos celulares y experimentar con la capacidad del microscopio óptico
para mostrarnos estructuras celulares como el núcleo, el nucleolo y la pared celular.
Método
A) Epidermis de cebolla
- Toma un trozo de un bulbo de cebolla y, con una lanceta y una pinza, separa una pequeña
muestra de epidermis de la cara interna (basta con un trozo muy pequeño).
- Extiende la muestra sobre el porta lo mejor que puedas.
- Coloca el porta haciendo “puente” sobre la placa de Petri y añade una gota de azul de
metileno a la muestra, con cuidado para que no se derrame.
- Espera dos minutos mientras penetra el colorante en las células y coloca el cubre.
- Si hay exceso de colorante, absórbelo con un trozo de papel por encima de la preparación.
- Observa la preparación al microscopio óptico.
B) Epitelio bucal

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- Usando una espátula rasca cuidadosamente un poco del revestimiento interior del carrillo.
- Extiende la muestra extraída sobre el porta.
metileno, procurando que no se derrame.
- Espera dos minutos mientras actúa el colorante y coloca el cubre.
- Si es necesario, absorbe el exceso de azul de metileno con un trozo de papel.
- Observa al microscopio.
Resultados
- Dibuja lo observado en cada caso.
Epidermis de cebolla Epitelio bucal
- ¿Qué diferencias observas entre los dos tipos de células en relación a su forma y tamaño?
Las células vegetales son grandes, de forma poliédrica alargada y tienen el núcleo
desplazado de su posición central por la existencia de una gran vacuola, que no se observa,
pero que ocupa casi todo el citoplasma. En algunas de sus núcleos, observados a 400
aumentos, se pone de manifiesto la existencia de un nucleolo.
Las células animales son más pequeñas, de forma irregular, pero más o menos esféricas y
tienen un núcleo en posición central (no hay vacuola). No se observa el nucleolo, aunque lo
hay.
- ¿Observas la pared celular y la membrana citoplasmática? Razona la respuesta.
La pared celular se observa como una líneo de trazo definido que rodea cada célula
vegetal. En las células animales no hay pared celular.
La membrana citoplasmática existe en ambos tipos celulares, pero no se observa porque su
espesor está muy por debajo del poder de resolución del microscopio óptico, sólo puede
observarse con el microscopio electrónico.
Observaciones
- La mejor tinción se consigue utilizando la disolución comercial de azul de metileno fenicado
para microscopía (según Khume). Si no se dispone de ella, puede prepararse una disolución
de azul de metileno del siguiente modo:
1 g de azul de metileno.
25 ml de etanol al 90 %
100 ml de agua destilada.
Disolver los cristales de azul de metileno en el etanol y añadir el agua destilada.

31
OBSERVACIÓN DE EPIDERMIS VEGETAL
Objetivo
- Observar células epidérmicas de diferentes especies, tratando de descubrir sus
principales estructuras y estableciendo comparaciones entre ellas.
Nivel : E.S.O./Bachillerato Agrupamiento: 2 Alumnos por equipo
Material común:
- Cebolla (Alium cepa)
- Hojas verdes de lirio (Iris sp.) o
cala (Arum sp.)
- Pinza
- Lanceta
- Bisturí
- 2 portas y 3 cubres
- Cuentagotas con agua
- Microscopio
Fundamento
En las partes jóvenes de los vegetales (ápices de raíz y tallo), así como en hojas y frutos,
existe un tejido de revestimiento, protector, llamado epidermis; está formado por una sola
capa de células, lo que lo hace idóneo para ser observado con facilidad al microscopio óptico.
Sus células no presentan cloroplastos, por lo que no son verdes. En este tejido pueden
aparecer estomas, estructuras que permiten el intercambio de gases con el exterior,
constituidos por dos células estomáticas de forma arriñonada, que enfrentan su parte cóncava
dejando entre ambas un orificio llamado ostiolo.
Método
A) Epidermis de cebolla (Allium cepa)
- Toma un trozo de un bulbo de cebolla y con una lanceta y una pinza, separa una porción de
su “piel” – epidermis- de la cara interna (procura que dicha porción sea pequeña).
- Colócala en un porta junto con una gota de agua y extiéndela con la lanceta lo mejor que
puedas.
- Coloca encima cuidadosamente el cubre, procurando que no se doble la epidermis y que no
queden burbujas.
- Observa e interpreta los resultados.
A) Epidermis de cala (Arum sp.) y de lirio (Iris sp.)
- Toma de una hoja de cala y rásgala con los dedos separando una porción de su epidermis,
procurando arrastrar la menor cantidad posible del tejido subyacente de color verde.
- Colócala en un porta junto con una gota de agua y, con ayuda del bisturí, elimina las partes
verdes. ¡Una pequeña porción de epidermis basta! Extiéndela con la lanceta lo mejor que
puedas.

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- Coloca encima cuidadosamente un cubre, procurando que no se doble la epidermis y que no
queden burbujas.
- Repite el proceso con la hoja de lirio, montándola sobre el mismo porta.
Resultados
- Dibuja la estructura de la epidermis de las tres especies.
- Dibuja la estructura de un estoma al microscopio óptico.
- ¿Qué es un estoma? ¿Qué función tiene?
Los estomas son aberturas de la epidermis que permiten el intercambio de O2 y CO 2 entre
las células del mesófilo de la hoja y la atmósfera. Son estructuras absolutamente
imprescindibles para el intercambio de gases ya que las células epidérmicas no dejan
espacio entre ellas y constituyen una película continua que sólo se interrumpe a nivel del
ostiolo de los estomas.
- ¿Existen cloroplastos en los estomas?
Si. En las células oclusivas de los estomas se muestra un tenue punteado de tonalidad
verde que corresponde a la presencia de cloroplastos.

33
ÓSMOSIS EN CÉLULAS VEGETALES
Objetivo
- Observar fenómenos de ósmosis en células vegetales.
Nivel : Bachillerato Agrupamiento: 2 Alumnos por equipo
Material común:
- Pétalos de flor (Camelia japonica)
- Microscopio
- Aguja o lanceta y bisturí
- 2 juegos de porta y cubre
- 3 frascos cuentagotas conteniendo agua
corriente, agua destilada y disolución
concentrada de NaCl
Fundamento
La membrana citoplasmática es una barrera permeable al agua, por lo tanto, las células se ven
sometidas a cambios osmóticos cuando varía la concentración salina del medio. Tanto el
incremento de volumen citoplasmático o turgencia, como la pérdida de líquido celular o
plasmólisis, suelen ser procesos fisiológicos normales en las células vegetales, pero que si se
presentan en grado extremo, pueden llegar a causar la muerte celular.
Estos fenómenos osmóticos pueden observarse con facilidad en las células de la epidermis de
muchos pétalos de flor, en los que su color se debe a la acumulación de pigmentos en las
vacuolas citoplasmáticas. Los cambios osmóticos se revelan con claridad en las vacuolas, pues
su color varía en intensidad y extensión al cambiar la concentración del pigmento.

34
Método
- Rasga lentamente un pétalo de Camelia japonica de manera que puedas obtener un pequeño
fragmento de su epidermis, procurando que no arrastre mucho tejido subepidérmico
(dificultaría la observación).
- Extiende la muestra sobre un porta y elimina el exceso con el bisturí si es necesario.
Añade una gota de agua corriente y coloca el cubre.
- Observa al microscopio, interpreta y dibuja lo que observas.
- Toma otra muestra de epidermis y construye otra preparación similar a la anterior, pero
colocando una gota de disolución salina en lugar de agua corriente.
- En esta última preparación, levanta un poco el cubre y deja escurrir una o dos gotas de
agua destilada hacia la muestra. Después coloca de nuevo el cubre y observa al microscopio
unos minutos.
- Interpreta y dibuja lo que observas.
Resultados
- Interpreta y dibuja lo que observas
Medio isotónico Medio hipotónico Medio hipertónico
Para que las células vegetales de la epidermis no pierdan ni ganen agua deben vivir en un
ambiente de la misma concentración salina que su interior (medio isotónico). Cuando la
concentración extracelular se hace mayor que la del citoplasma (medio hipertónico), la célula
se deshidrata y encoge su citoplasma sufriendo una plamólisis que puede suponer la muerte
celular. Si la concentración salina extracelular se hace menor que la del citoplasma (medio
hipotónico) la célula se hincha aumentando su turgencia, pudiendo estallar si no existe una
pared suficientemente resistente.
Observaciones
- Se pueden utilizar flores de cualquier especie que tenga pétalos de color vivo, fina cutícula
y células epidérmicas con poca pared celular, pero se obtienen excelentes resultados
cuando se emplean pétalos de Camelia japonica.

35
OBSERVACIÓN DE MITOSIS EN RAÍZ DE CEBOLLA
Objetivo
- Observar y reconocer las diferentes fases de la mitosis.
Nivel: ESO/Bachillerato Agrupamiento: 3 Alumnos por equipo
Material común:
- Cebollas con ápices radiculares
- Orceína A y orceína B
- Mechero
- Microscopio
- Porta y cubre
- Vidrio de reloj
- Pinzas de madera
- Tijeras
- Pinzas de disección
Fundamento
La mitosis es el mecanismo de división celular en eucariotas que subyace a cualquier fenómeno
de proliferación celular. La observación microscópica de los cromosomas durante la mitosis es
sencilla cuando se preparan extensiones de tejidos meristemáticos, particularmente si se
trata de meristemos radiculares de Allium cepa (cebolla), por la alta tasa de mitosis de este
tejido, el tamaño de sus células y la facilidad para preparar extensiones celulares sobre un
porta.
La tinción del material nuclear con orceína acética permite observar los cromosomas en
diferentes momentos del ciclo mitótico. La ordenación cronológica de estas figuras permite
reconstruir los acontecimientos que tienen lugar en el núcleo celular durante el proceso, como
si de una secuencia fotográfica se tratara, e identificar cada una de las fases que
tradicionalmente se establecen en la mitosis (profase, metafase, anafase y telofase).
Método
- Corta con las tijeras el ápice de una raíz de cebolla (unos tres milímetros) y colócalo en un
vidrio de reloj.
- Añade unas gotas de orceína A de forma que el ápice quede bien cubierto y calienta
suavemente a la llama hasta que se desprendan vapores. Evita la ebullición de la orceína
y procura que el ápice de raíz no se quede seco.
- Retira de la llama y mantén el ápice sumergido en el colorante (orceína A) durante 10
minutos.
- Coloca la raicilla sobre un portaobjetos, añade una gota de orceína B y espera dos o tres
minutos.
- Coloca un cubreobjetos y realiza un “splash” presionando suavemente con el dedo.
- Observa al microscopio, colocando 400 aumentos como mínimo.

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Resultados
- ¿Por qué es necesario hacer un splash para observar al microscopio?
La técnica del splash o aplastamiento permite extender sobre un porta una masa de células
que, de otro modo, formarían un cuerpo con células en diferentes capas, lo que dificultaría
enormemente la observación microscópica célula a célula.
- Haz dibujos de las diferentes fases de la mitosis que hayas observado.
Observaciones
- La mayoría de las cebollas que se adquieren en los centros comerciales han recibido algún
tratamiento para impedir su germinación durante la comercialización, así que resulta muy
difícil inducir la formación de raicillas en el laboratorio, ni tan siquiera utilizando productos
enraizadores. Para evitar este problema lo mejor es emplear cebollas procedentes de
cultivos biológicos o de agricultores que no empleen estos productos.
- Los tiempos de tinción indicados en el método no deben ser acortados, porque se corre el
riesgo de teñir los núcleos, pero no los cromosomas, con lo que no se observarían figuras de
mitosis. Las disoluciones de orceína se preparan según la fórmula que figura en el capítulo
dedicado a la preparación de reactivos y colorantes de uso común en el laboratorio.
2 - Metafase
1 - Profase
3 - Anafase 4 - Telofase
Meristemo radicular
de cebolla

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ESTUDIO DE UN MOHO
Objetivos
- Reconocer el aparato vegetativo y reproductor de los mohos.
- Observar distintas especies de mohos y compararlas.
Nivel: E.S.O. / Bachillerato Agrupamiento: 2 alumnos por equipo
Material común:
- Pimiento
-Tomate
- Cuchillo
- Placa de Petri
- Pinza
- Lanceta
- Portas y cubres (1, 2 ó 3 según el número
de especies que se hayan desarrollado)
- Lupa binocular
- Microscopio óptico
Fundamento
Los hongos pluricelulares más sencillos son los mohos. El cuerpo vegetativo de los mohos está
representado por el micelio que es un conjunto de filamentos ramificados (hifas).
Se reproducen tanto de forma sexual como asexual. La reproducción asexual se realiza
mediante esporas. En algunas especies (Rhizopus nigricans), las esporas se originan en el
interior de un esporangio, que es una hifa con el extremo ensanchado; cuando está llena de
esporas se rompe, las esporas quedan libres y pueden germinar. Otras veces (Aspergillus,
Penicillium), las esporas se forman en el extremo de una hifa, donde se disponen como si
fuesen las cuentas de un rosario y pueden desprenderse con facilidad.
La mayoría de los mohos son saprófitos y viven en lugares húmedos con abundante materia
orgánica; por ello, crecen con mucha facilidad sobre tomate, pimiento, pan humedecido... donde
se dan las condiciones adecuadas para su desarrollo.
Método
- Corta un trozo de pimiento o de tomate, deposítalo en una placa de Petri y déjalo fuera de
la nevera durante una semana para que se desarrollen en su superficie distintas especies
de mohos.
- Transcurrido ese tiempo, observa la mohos crecidos colocando la placa a la lupa binocular.
- Con ayuda de las pinzas y de la lanceta, extrae una pequeña cantidad de cada especie y
sitúala en un porta junto con una gota de agua.

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Resultados
- Los mohos más frecuentes pertenecen a los géneros Penicillium, Aspergillus y Rhizopus.
¿Puedes identificar la especie a la que pertenece cada uno de los mohos?
Rhizopus tiene aspecto de pelusa blanquecina, las esporas se forman en el interior de un
esporangio esférico.
Aspergillus y Penicillium tienen color verde-azulado; las esporas no están encerradas en un
esporangio sino que se originan directamente en el extremo de las hifas reproductoras. En
Aspergillus, el extremo de estas hifas está hinchado en forma de globo y presenta en su
superficie cadenas de células que irradian en todas las direcciones. En Penicillium, las
esporas, también arrosariadas, se forman en el extremo de hifas reproductoras ramificadas.
- Haz un dibujo de los mohos y señala en ellos sus diferentes partes.
- ¿Cómo se reproducen los mohos?
El mecanismo más frecuente es la reproducción asexual mediante esporas.
Aspergillus Penicillium
hifas vegetativas
(micelio)
hifas
reproductoras
esporas
hifas vegetativas
(micelio)
Rhizopus
esporangio
hifas
reproductoras

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Observaciones
- Para que se desarrollen los mohos tiene que existir suficiente humedad y temperatura
adecuada. Si se utiliza tomate o pimiento, la humedad se la proporciona el propio fruto, si
se emplean pan u otros alimentos más secos, deben humedecerse previamente. Las placas
de Petri deben colocarse en sitio cálido.
- Una vez que se haya iniciado el crecimiento de micelio en alguna de las placas, pasar por su
superficie una lanceta, un pincel... y sembrar en las restantes; de esta manera
aseguraremos el crecimiento de moho en las placas de cada grupo de alumnos.

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SIMBIOSIS
Objetivo
- Reconocer dos relaciones de simbiosis: nódulos de leguminosa (plantas-bacterias) y
líquenes (algas-hongos).
Nivel : E.S.O./Bachillerato Agrupamiento: 2 Alumnos por equipo
Material común:
- Plantas de leguminosas con raíz,
por ejemplo Trifolium sp
- 1 lupa binocular
- 1 aguja y lanceta
- 1 bisturí
- Líquenes foliáceos. Por ejemplo
Cladonia sp
- Microscopio
- 1 pinza
- 2 portaobjetos
- 1 cubreobjetos
- 1 cuentagotas con agua (puede ser uno
para cada dos equipos)
Fundamento
A) Observación de nódulos de leguminosa
Todas las plantas necesitan una fuente de nitrógeno inorgánico para mantener su metabolismo
autótrofo. Normalmente captan el nitrógeno del suelo en forma de nitrato (NO3
-
) o amonio
(NH4
+
), sales iónicas que son escasas y suelen constituir un factor limitante en el crecimiento
de las plantas. Aunque el nitrógeno es uno de los elementos químicos más abundantes en el
planeta, se encuentra en forma de N2 atmosférico, una forma química que las plantas no
pueden utilizar directamente.
La familia de las leguminosas, a lo largo de su evolución, ha encontrado en la simbiosis con las
bacterias del género Rhizobium una manera de utilizar el N2 atmosférico. Rhizobium es una
bacteria nitrificante que infecta las raíces de las leguminosas induciendo unas tumoraciones
características denominadas nódulos radiculares en los cuales los Rhizobium proliferan como
bacteroides en un ambiente protegido y favorable.
Los bacteroides de Rhizobium cuentan con el enzima nitrogenasa, responsable de la fijación
del N2 atmosférico en un proceso que se puede resumir en la siguiente reacción:
N2 + 6e-
+ 6H+
+ n AT 2NH3 + n ADP + n Pi
Esta simbiosis leguminosas – Rhizobium es la principal causa de la fijación de N2 atmosférico
en el ciclo global del nitrógeno, muy superior a la fijación realizada por algas verde-azules,
levaduras y bacterias nitrificantes de vida libre. Se estima que la fijación simbiótica de
nitrógeno es del orden de 80 x 106
T/año.

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B) Observación de líquenes
En los líquenes, hongos ascomicetos y algas entran en simbiosis tan íntimamente que
constituyen un único ser binario con entidad ecológica propia.
A diferencia de las algas, los hongos no realizan la fotosíntesis, por lo que viven a expensas de
los glúcidos elaborados por las algas. Las algas, por su parte, se benefician del ambiente
protegido y húmedo que las hifas del hongo le proporcionan.
A pesar de esta íntima coexistencia es posible identificar individualmente, bajo el
microscopio, a cada uno de los individuos que constituyen el liquen, al menos en la mayoría de
los líquenes foliáceos. El hongo muestra su talo formado por multitud de hifas de hongo
entrelazadas, mientras que las células de alga, que es siempre una especie unicelular,
aparecen entremezcladas con las hifas formando capas más o menos definidas.
Método
- Toma una planta de trébol y colócala bajo una lupa para observar sus raíces.
- Abre uno de los nódulos con ayuda del bisturí y observa su coloración.
- Con ayuda de las pinzas, corta un trozo pequeño de liquen.
- Colócalo entre dos portas con una gota de agua y fricciona uno contra otro para triturarlo.
- Retira el porta superior, añade una gota de agua y coloca el cubre.
- Examina la preparación al microscopio, tratando de identificar las algas y las hifas del
hongo.
Resultados
- Dibuja el aspecto general de la planta.
- Dibuja el aspecto general de los nódulos bajo la lupa.
- ¿Qué coloración presentan los nódulos? ¿A qué se debe?
La observación bajo la lupa permite apreciar los nódulos con mayor detalle y aquellos que
son activos muestran una coloración rojo pálido debido a la presencia del pigmento
leghemoglobina. Este pigmento es una hemoproteína de gran afinidad por el O2 y cuya
función básica consiste en evitar la inactivación de la nitrogenasa (el O2 inactiva el
enzima).

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- ¿Qué beneficio obtiene cada uno de estos organismos en su relación mutua?
La fijación del nitrógeno atmosférico realizada por las bacterias proporciona a la planta
los nitratos que necesita. La planta suministra glúcidos a la bacteria y la leghemoglobina
necesaria para la fijación de nitrógeno.
- Observa y dibuja el aspecto general del liquen.
Los hongos, como no realizan la fotosíntesis, viven a expensas de los glúcidos elaborados
por las algas. Las algas, por su parte, se benefician del ambiente protegido y húmedo que
las hifas del hongo le proporcionan.
- Dibuja lo observado al microscopio identificando los componentes de la simbiosis.
Observaciones
- Conviene realizar en la misma sesión la observación de nódulos de leguminosas y de
líquenes.
- Para la observación de un liquen se obtienen buenos resultados con Cladonia coccifera,
tomando pequeños fragmentos del borde del talo donde éste es más blando.
Células de alga
Hifas de hongo

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EXTRACCIÓN Y SEPARACIÓN DE
PIGMENTOS FOTOSINTÉTICOS
Objetivo
- Extraer los pigmentos fotosintéticos de diferentes vegetales y separarlos mediante la
técnica de cromatografía sobre papel.
Nivel : E.S.O. / Bachillerato Agrupamiento: 2 Alumnos por equipo
Material común:
- 2 bandejas de hierba cortada
- 2 bandejas de arena fina
- 2 espátulas
- Alcohol
- Mortero
- Embudo
- Tubo de ensayo de diámetro grande
- Gradilla
- Probeta
- Tijeras
- Papel de filtro circular (diámetro 10 cm)
- Tira de cromatografía (2 x 15 cm)
Fundamento
Los pigmentos fotosintéticos presentan diferente solubilidad, lo que permite su extracción y
posterior separación cuando una disolución de los mismos asciende por una tira de papel
poroso: los más solubles se desplazarán más pues acompañarán al disolvente a medida que éste
ascienda por el papel, quedando retrasados los menos solubles.
Los pigmentos que encontraremos en las plantas superiores y que fácilmente podremos
identificar son:
- Clorofila a: tiene un color verde.
- Clorofila b: de color verde o verde-limón.
- β-carotenos: de coloración naranja.
- Xantofilas: de coloración amarillo claro.
Método
A) Extracción de pigmentos
- Coloca en el mortero 30 ml de alcohol y una pizca de arena. Tritura los fragmentos
vegetales hasta lograr un líquido de color verde intenso.
- Coloca el papel de filtro sobre el embudo y éste sobre el tubo de ensayo. Filtra el
contenido del mortero.
- Desecha el papel de filtro con su contenido y recoge el filtrado que contendrá los
pigmentos fotosintéticos.

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B) Separación de pigmentos
- Introduce la tira de papel en el tubo de forma que el extremo quede empapado en la
solución de pigmentos.
- Coloca en oscuridad y deja reposar unas horas hasta lograr una buena separación de los
pigmentos.
- Retira la tira de cromatografía y procede a su estudio.
Resultados
- Dibuja en la silueta adjunta las diferentes bandas de color que has obtenido en la tira de
cromatografía e identifica cada pigmento.
Pigmentos
Frente del alcohol
Xantofilas (amarillo claro)
Clorofila b (verde)
Clorofila a (verde azulado)
β-caroteno (naranja)
- ¿Por qué has empleado alcohol para extraer los pigmentos? ¿Cuáles te parece que se
disuelven mejor?
Usamos alcohol porque los pigmentos fotosintéticos son moléculas más solubles en
disolventes orgánicos (por ejemplo, el alcohol) que en agua.
- ¿Por qué crees que esta técnica recibe el nombre de cromatografía?
Cromatografía (término introducido por Mikhail Tswett en 1906) es una palabra derivada
de las griegas “chroma” , color, y “graphein” , dibujar o escribir. La cromatografía es una
técnica de separación de mezclas de sustancias que se hacen visibles por el desarrollo de
bandas de distinto color que van apareciendo sobre la tira del papel que se utiliza como
soporte.
- ¿Cuál te parece que es el fundamento de la cromatografía?
El fundamento es la diferente solubilidad de los pigmentos en el alcohol.
El extremo de la tira de papel está sumergido en la disolución que contiene la mezcla de
pigmentos. A medida que el disolvente y los pigmentos ascienden por capilaridad por el
papel mantenido en posición vertical, se produce la distribución de los mismos en función de
su diferente solubilidad en alcohol. Los pigmentos más solubles acompañarán al disolvente

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que sube y se moverán con el frente hacia el extremo del papel. Los pigmentos menos
solubles permanecerán cerca de la base del papel. Es decir, los pigmentos se separan al
recorrer distintas distancias desde el origen.
Observaciones
- La hierba es un material adecuado, dando mejor resultado si se corta previamente en
pequeños trozos para facilitar la extracción de los pigmentos.
- Si la arena está lavada previamente y es de alto contenido en cuarzo, se consigue mejor
extracción.
- Los pigmentos son fotosensibles por lo que se obtienen mejores resultados si el ascenso
por la tira de papel y el secado posterior se produce en oscuridad (por ejemplo, dentro
del armario).
- Al finalizar la práctica, es conveniente que el profesorado vigile el proceso cada cierto
tiempo y extraiga las tiras de aquellos tubos de ensayo en los que ya se haya producido la
separación; se corre el riesgo en caso contrario de que todos los pigmentos sean
arrastrados por el frente del disolvente y se “amontonen” en el extremo de la tira,
perdiéndose la separación previamente conseguida.

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TINCIÓN DE TEXTILES CON PIGMENTOS
VEGETALES
Objetivo
- Teñir textiles utilizando tintes de origen vegetal.
Nivel : E.S.O. (Botánica Aplicada) Agrupamiento: 2 Alumnos por equipo
Material común:
- 1 baño María
- 3 cristalizadores
- 3 infiernillos (mechero, trípode y
rejilla)
- Alcohol
- Arena de playa
- Hierba
- Cebolla
- Azafrán
- Cáscara de nuez verde
- 4 trozos de tela de algodón
- Macarrones
- Mortero
- Probeta
- Embudo
- Papel de filtro
- Vaso de precipitados
- Pinzas
- Tijeras
Fundamento
Los colorantes o tintes naturales han sido de uso corriente desde los tiempos más primitivos.
Más de 2.000 pigmentos distintos son de origen vegetal, de modo que se pueden obtener casi
todos los colores a partir de ellos.
La tinción con cebolla proporciona un color cobrizo o beige, según el tipo de cebolla utilizada;
el azafrán tiñe de amarillo, ciertas especies de líquenes tiñen de rojo, la clorofila de verde...
La clorofila es absolutamente inofensiva por lo que se utiliza tanto para teñir tejidos como
para dar color a alimentos (pasta, chicle...).
La tinción puede realizarse con mordiente (sustancia que ayuda a que se fije mejor el tinte); el
más utilizado es el bicromato potásico, pero éste es muy venenoso por lo que nosotros
realizaremos la tinción sin mordiente.
Método
A) Tinción con cebolla, azafrán y cáscara de nuez verde
- Prepara tres cristalizadores con agua hasta una altura aproximada de 2 cm.
- En uno de ellos coloca unos trozos de cebolla cortados con su cáscara, en otro el contenido
de un sobre de azafrán y en el tercero unos trozos de cáscara de nuez verde.
- Añade un trozo del tejido textil para teñir en cada cristalizador.
- Hazlos hervir unos 30 minutos.
- Extrae el tejido con ayuda de las pinzas, aclara en agua y déjalo secar.

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B) Tinción con clorofila
- Toma un pequeño puñado de hierba y pícala en el mortero con las tijeras.
- Añade al mortero 15 ml de alcohol y una cucharadita de arena.
- Tritura la hierba hasta obtener un líquido verde oscuro.
- Filtra el machacado sobre un vaso de precipitados.
- Introduce en el filtrado de clorofila el tejido a teñir y un macarrón.
- Calienta el vaso al baño María durante 30 minutos.
- Extrae el tejido y el macarrón con ayuda de las pinzas, aclara en agua y déjalos secar.
Resultados
Colorante Producto teñido Color
Cebolla tela de algodón marrón claro
Azafrán tela de algodón amarillo fuerte
Cáscara de nuez Tela de algodón Marrón oscuro
Clorofila tela de algodón y macarrones verde

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FACTORES QUE CONDICIONAN LA FOTOSÍNTESIS
Objetivo
- Identificación y valoración de dos factores que afectan al proceso de fotosíntesis vegetal.
Nivel: E.S.O. / Bachillerato Agrupamiento: 2 Alumnos por equipo
Material común:
- Baño María por banco (para dos
equipos)
- Alcohol metílico (20 ml por equipo)
- Lugol
- Hoja de geranio (Geranium sp. )
- Hoja variegada (Vinca sp. )
- Vaso de precipitados mediano (100 ml)
- Pinza metálica
- Placa de Petri
Fundamento
El lugol es un colorante que tiñe específicamente el almidón, así que puede utilizarse para
revelar la actividad fotosintética. Las áreas fotosintéticas habrán almacenado almidón y se
teñirán de color azul con el lugol, mientras que las áreas sin actividad fotosintética no se
teñirán. Para realizar la “prueba del lugol” en hojas son necesarios dos tratamientos previos:
reblandecimiento con agua hirviendo (para facilitar la penetración del colorante) y
decoloración con alcohol (para visualizar las zonas teñidas).
Los dos factores a identificar son la presencia de pigmentos fotosintéticos (clorofila) y la
incidencia de la luz solar, ambos imprescindibles para que se produzca la función clorofílica.
La influencia de los pigmentos fotosintéticos se puede comprobar realizando la “prueba de
lugol” en hojas variegadas; las zonas no pigmentadas no realizan la fotosíntesis y no
evidenciarán almidón, mientras que las áreas pigmentadas sí lo harán, por ser fotosintéticas.
La influencia de la luz se demuestra utilizando geranios cuyas hojas se hayan mantenido
parcialmente tapadas con papel de aluminio durante los dos o tres días previos a la prueba.
Método
- Con un trozo de papel de aluminio y un clip, tapa parcialmente una hoja de una planta viva
de geranio, de forma que no incida la luz en esa zona durante dos o tres días.
- Dibuja la silueta de la hoja de geranio con el papel de aluminio en el recuadro A1. Dibuja la
silueta de la hoja variegada en el recuadro B1 y sombrea la zona blanca de la hoja.
- Retira el aluminio y sumerge las dos hojas en el agua hirviendo durante unos 5 minutos.
- Coloca aproximadamente 20 ml de alcohol en el vaso de precipitados.
- Con ayuda de las pinzas, saca las hojas del agua, pásalas al alcohol y coloca el vaso al baño
María hasta que se decoloren (entre 10 y 15 minutos).
- Retira las hojas del alcohol, pásalas por agua fría y sumérgelas en el lugol de la placa de
Petri durante unos minutos.
- Dibuja en el recuadro A2 la silueta del geranio y en el B2 la silueta de la hoja variegada.
Sombrea en ambos casos las zonas teñidas por el lugol.

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Resultados
A1 B1
A2 B2
Responde a las cuestiones:
- ¿Por qué la tinción con lugol permite revelar las zonas donde se ha producido fotosíntesis?
Porque el producto final de la fotosíntesis es el polisacárido almidón, que se acumula en las
células fotosintéticas y el lugol lo tiñe específicamente de color azul intenso.
- Observa lo ocurrido con la hoja de geranio y explica el resultado ¿Qué factor es el que ha
condicionado la fotosíntesis y cómo lo ha hecho?
El lugol ha teñido el área que no ha sido privada de luz solar, por lo que podemos asegurar
que sólo aquí hay almidón producido por fotosíntesis, en el resto de la hoja no ha habido
función fotosintética. El factor condicionante ha sido la luz solar.
- Observa lo ocurrido con la hoja variegada y explica el resultado ¿Qué factor es el que ha
condicionado la fotosíntesis en este caso y cómo lo ha hecho?
En esta hoja sólo se detecta fotosíntesis en el área pigmentada de la hoja, lo que significa
que la presencia de pigmentos es otro factor imprescindible.
Observaciones
- En otoño e invierno se obtienen peores resultados que en primavera.
- Los resultados mejoran si las hojas de geranio se retiran de la planta al atardecer, cuando
la tasa fotosintética es máxima.
- La especie variegada que se utilice ha de tener hojas poco coriáceas, para que el
tratamiento con agua hirviendo sea más eficaz y se logre mejor penetración del lugol.
Especies como la hiedra y el acebo requieren más de 30 minutos de tratamiento en agua
hirviendo. Los resultados son mejores con Vinca sp.

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OBSERVACIÓN DE ANTERAS Y
GERMINACIÓN DEL GRANO DE POLEN
Objetivo
- Estudiar el androceo mediante la observación de anteras y la germinación del grano de
polen.
Nivel: E.S.O. / Bachillerato. Agrupamiento: 3 Alumnos por equipo
Material común:
- Vaso de precipitados con las anteras
en alcohol
- Matraces con las disoluciones de
sacarosa ( 5%, 10% y 15%)
- Cuentagotas
- Portas y cubres
- Microscopio
- Pincel
- Flor de camelia
- Gradilla con 3 tubos numerados
- 3 pipetas
Fundamento
Las gramíneas son unas plantas adecuadas para la observación de anteras por su tamaño y
porque se ven fácilmente los granos de polen en su interior.
En el estigma de los carpelos se produce una sustancia pegajosa muy rica en azúcares que
facilita la adherencia de los granos de polen y que favorece su germinación. Los granos de
polen, tras posarse sobre el estigma, absorben los líquidos azucarados que segregan las papilas
del estigma, se hinchan, rompen su cubierta externa e inician la formación del tubo polínico.
Formando parte de esta sustancia azucarada se encuentra también la sacarosa, un azúcar
óptimo, por lo tanto, para la germinación in vitro de los granos de polen. Comprobaremos que la
germinación y el crecimiento de los tubos polínicos son mucho más rápidos cuanto mayor es la
concentración de sacarosa.
Método
A) Observación de anteras
- Toma, con el cuentagotas, algunas anteras del vaso de precipitados.
- Sitúalas en un porta.
- Coloca un cubre y obsérvalas al microscopio.
B) Germinación de granos de polen
- Coloca con la pipeta 2 ml de disolución de sacarosa al 5 % en el tubo nº 1, 2 ml de
disolución de sacarosa al 10 % en el tubo nº 2 y 2 ml de disolución de sacarosa al 15 % en
el tubo nº 3.
- Toma con el pincel una pequeña cantidad de polen de una flor de camelia e introdúcelo en
los tubos que contienen las diferentes disoluciones de sacarosa.
- Al final de la clase toma con el cuentagotas una pequeña cantidad de cada tubo y colócala
en un porta con un cubre.
- Obsérvala al microscopio. Puedes repetir la observación a las 24 horas.

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Resultados
- ¿Qué forma tienen las anteras? ¿Qué aspecto tienen las células que están en su interior?
Haz un dibujo de las anteras vistas al microscopio e identifica las estructuras.
Las anteras de las gramíneas presentan dos tecas (grupos de sacos polínicos) alargadas
que cuando maduran se separan ligeramente en sus extremos con lo que adquieren una
figura en “equis” característica.
En el interior de los sacos polínicos de las anteras maduras, entre filas de células con
paredes más o menos engrosadas, se pueden observar unas células redonditas que son los
granos de polen. Si las paredes de las anteras se han desgarrado en el momento de la
preparación se pueden ver numerosos granos de polen rodeando a la antera abierta que
los ha desprendido.
- Haz un dibujo de los granos de polen y de la germinación de los mismos identificando las
estructuras observadas.
Los granos de polen se observan como células esféricas con un tono amarillo más o menos
pálido. Cuando se va a producir la germinación, los granos de polen pierden su forma
esférica y adoptan otra casi triangular, siendo, en este momento, perfectamente visibles
3 aperturas o puntos germinativos, uno de ellos se aboveda y comienza a desarrollar el
tubo polínico (germinación).

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- ¿Por qué germina el polen en presencia de sacarosa? ¿Tiene esto algo que ver con lo que
ocurre en la naturaleza?
Cuando los granos de polen absorben la disolución de sacarosa, se hinchan, rompen su
cubierta externa e inician la formación del tubo polínico.
La sacarosa forma parte de los líquidos azucarados y pegajosos que segregan las papilas
del estigma para facilitar la adherencia de los granos de polen y favorecer su
germinación.
- ¿Qué diferencias observas en la germinación de los granos de polen de las distintas
disoluciones de sacarosa?
La germinación y el crecimiento de los tubos polínicos son mucho más rápidos cuanto
mayor es la concentración de sacarosa.
Observaciones
- Para conseguir las anteras basta con sacudir la gramínea (Dactylis glomerata) sobre un
vaso de precipitados que contenga alcohol.
- Además de camelia, también se pueden usar flores de tulipán o de jacinto. En cualquier
caso es conveniente que no estén muy maduras.
- Es probable que aunque se espere al final para observar la germinación, ésta no haya
empezado ni siquiera en el tubo de disolución de sacarosa al 15 %. Si no es posible repetir
la observación en las horas siguientes o al día siguiente, se recomienda que los profesores
hagan antes (en las horas anteriores o el día anterior) la suspensión de los granos de polen
en las diferentes disoluciones de sacarosa. De esta manera, los alumnos podrán ver
igualmente la germinación.

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EL DESARROLLO DEL RENACUAJO
Objetivos
- Observar las principales modificaciones que se producen durante la metamorfosis.
- Estudiar el efecto de la hormona tiroidea sobre el desarrollo.
Nivel: E.S.O. / Bachillerato Agrupamiento: 2 Alumnos por equipo
Material:
- 3 cristalizadores numerados
- Agua de charca y renacuajos
- 3 vasos de precipitados numerados
- Placas de Petri
- Pastillas de tiroxina
- Comida para los renacuajos (pollo, pienso
para perros, pan,etc.)
Fundamento
Las ranas presentan un desarrollo con metamorfosis que comprende la transformación de las
larvas en renacuajos y, posteriormente, en adultos, mediante un proceso que comporta los
siguientes cambios:
1 . Se pierden las mandíbulas córneas que tiene en su etapa juvenil.
2 . Las branquias externas se cierran y se reabsorben, al tiempo que se desarrollan los
pulmones.
3 . Se forman primero las patas traseras y después las delanteras.
4 . La cola se acorta y desaparece, mientras se pasa de la vida acuática a la vida anfibia.
Si mantenemos en un medio artificial unas condiciones similares a las que se dan en la
naturaleza, podemos hacer un seguimiento de este desarrollo y observar los cambios que se
producen durante la metamorfosis. Simultáneamente, si suministramos a los renacuajos
diferentes dosis de hormona tiroxina, podremos comprobar su influencia en el desarrollo.
Método
- Prepara 3 cristalizadores con agua de charca y unos renacuajos (puedes añadir algunas
plantas y unas piedrecitas).
- El cristalizador número 1 se usará como testigo para poder realizar el control de la
experiencia.
- Añade al cristalizador número 2 media pastilla de tiroxina y al cristalizador número 3 una
pastilla entera.
- Echa en los tres cristalizadores algo de comida para los renacuajos (trocitos de pan, de
pollo crudo, pienso para perros).
- Coloca los cristalizadores a temperatura ambiente.
Para garantizar la continuidad y el seguimiento de la experiencia debes renovar el medio cada
semana y aprovechar ese momento para realizar tus observaciones. Procede de la siguiente
manera:

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- Con la ayuda del vaso de precipitados correspondiente, captura los renacuajos de cada
cristalizador.
- Renueva el agua de los 3 cristalizadores con agua de charca fresca. Añade al cristalizador
número 2 la media pastilla de tiroxina y al número 3 la pastilla entera.
- Antes de devolver a los renacuajos de cada grupo del vaso de precipitados al cristalizador
que le corresponde, colócalos (uno de cada vez) en una placa de Petri con un poco de agua;
así podrás medirlos y realizar las observaciones cómodamente.
Resultados
- Apunta en la siguiente tabla el seguimiento de la experiencia anotando las observaciones
que realices, los momentos más importantes, los acontecimientos más relevantes…
acompañando con dibujos.
Se indican a continuación algunas de las observaciones que se pueden realizar en la tabla:
cambios de longitud, desaparición de las branquias externas, aparición de las patas
traseras, aparición de la pata delantera izquierda, aparición de la pata delantera derecha,
reabsorción de la cola, comienzo de la respiración aérea, cambios en la forma y en el
aspecto de la cabeza y del cuerpo, …
- A la vista de los resultados obtenidos, ¿cuáles son las conclusiones que se pueden extraer?
La metamorfosis en los cristalizadores nº 2 y nº 3 se va a producir con mayor rapidez que
en el nº1 que es el control, y dará ranas en miniatura (el crecimiento es más rápido a
mayor cantidad de tiroxina suministrada). Se demuestra de esta manera que la hormona
tiroxina estimula el metabolismo celular; al incrementar la síntesis proteica acelera el
crecimiento y el desarrollo de los renacuajos.
Observaciones
- El estudio completo puede durar unos tres meses dependiendo de la especie utilizada, por
lo que la valoración del efecto de la hormona debe hacerse en relación al control que se
ponga.
- Se puede realizar la experiencia para toda la clase o bien formar equipos que hagan el
seguimiento de cada cristalizador.
- Los renacuajos podrán encontrarse desde finales de invierno o principios de primavera en
fuentes, abrevaderos, lavaderos, bordes de estanques o de charcas, etc. Es conveniente
recoger del mismo lugar plantas acuáticas y piedrecitas. Es suficiente con 4, 5 o 6
renacuajos por cristalizador.
- Las pastillas de tiroxina se venden en farmacia (Dexnon).
- Hay que tener en cuenta que un exceso de tiroxina mata a los renacuajos. Tampoco es
conveniente poner comida en exceso.
- Se recomienda que los profesores responsables de la experiencia vigilen el estado del agua
antes de que se cumpla la semana indicada en el método y si se considera necesario
renovarla. También conviene retirar los trocitos de comida antes de que se descompongan
y corrompan el agua.
- Hay que tener previsto en cada cristalizador algún mecanismo (unas piedras grandes, por
ejemplo) que garantice que cuando los renacuajos comiencen la respiración aérea puedan
salir a respirar.
- Si se logran y llegan al término del desarrollo, las ranas se dejarán en libertad en el lugar
de origen.

55
Metamorfosis del renacuajo
Días de
desarrollo
Aspecto externo Características
2 días
Se nutre del vitelo que le
resta, presenta poca
movilidad y tiene branquias
externas.
4 días
Ha consumido toda el vitelo,
presenta mucha movilidad y
tiene branquias externas.
1 semana
El intestino se hace visible
bajo la piel. Se desarrolla un
opérculo sobre las branquias
que progresivamente se van
tornando internas.
3 semanas
Branquias internas. Se
muestra muy activo y se
alimenta continuamente.
Periodo de mucho
crecimiento.
6 semanas
Se puede observar el brote
de las patas traseras en la
comisura de la cola, en
posición ventrolateral.

56
Días de
desarrollo
Aspecto externo Características
8 semanas
Crecimiento de las patas
traseras. Las patas
delanteras originan un
abultamiento bajo el
opérculo.
10 semanas
Rudimento de una o dos
patas delanteras. Toma
“bocados” de aire en
superficie; comienza el
desarrollo pulmonar.
11 semanas
La boca se ensancha y
desaparecen las piezas
córneas. Los ojos se hacen
prominentes y la cola se
reduce. Empieza a mostrar
aspecto de rana.
12 semanas
Reabsorción de la cola.
Respiración pulmonar y
cutánea. Pasa mucho tiempo
fuera del agua. Adulto.

57
ESTUDIO Y DISECCIÓN DE UN ERIZO DE MAR
Objetivos
- Conocer la anatomía de un equinodermo.
- Introducir a las técnicas de disección.
Nivel: Bachillerato Agrupamiento: 3 Alumnos por equipo
- Cubeta de disección
- Erizos de mar
- Tijeras y lanceta
- Lupa binocular
Método
A) Organización externa del erizo de mar
- Orienta el erizo de forma que la parte más plana quede hacia abajo: este es el polo oral
donde se encuentra la boca. El opuesto en la parte superior, es el polo aboral donde está
el ano.
- A continuación quítale las púas al erizo y lávalo con agua para examinar el esqueleto. Fíjate
en la forma, disposición y características que presentan las placas.
- Observa de nuevo la cara aboral, alrededor del ano se encuentran cinco placas; una de ellas
es mayor que las demás y está perforada como una criba: es la placa madrepórica. Trata
de identificarla con ayuda de una lupa.
- Coloca ahora el erizo apoyado sobre el ano. Observa el polo oral fijándote en los dientes
con los que se inicia el aparato mandibular (están unidos a otras piezas esqueléticas
internas, formando en su conjunto la Linterna de Aristóteles).
Resultados
Contesta a las cuestiones siguientes:
- ¿En qué zona se insertan las púas?
La base de las espinas se inserta en protuberancias (mamelones) de las placas
ambulacrales e interambulacrales.
- ¿En qué zonas y cómo se encuentran distribuidos los pies ambulacrales?
En los pequeños orificios situados en los bordes de las placas que forman los sectores
ambulacrales.
- ¿Cuántos dientes aparecen en la boca?
Cinco dientes o mandíbulas.

58
B) Estudio de la anatomía interna
- Con ayuda de una tijera y con mucho cuidado para evitar roturas, abre el erizo por la zona
ecuatorial y separa las dos mitades. En la mitad que corresponde a la cara del ano verás un
tubito fino, oscuro, que parte de la placa madrepórica: es el canal hidróforo. Observarás
también cinco masas de aspecto esponjoso, anaranjadas: son las gónadas. El tubo más
grueso que termina en el ano es el canal intestinal. Si no se ha roto el canal intestinal,
sigue su curso en la mitad que corresponde a la boca y observa como se inserta en la
Linterna de Aristóteles.
Resultados
- Haz un dibujo y pon nombres a todas las partes observadas.
- Fíjate ahora en la pared interna del caparazón de las dos caras. En cinco zonas aparecen
unas membranas de color marrón y aspecto húmedo. ¿Sabes cómo se llaman y qué misión
tienen?
Se llaman canales radiales, recorren los sectores ambulacrales y emiten, a derecha e
izquierda, unos tubos finos llamados pies ambulacrales.
- Procede ahora a vaciar el erizo para observar desde el interior las placas esqueléticas.
¿Qué forma tienen las placas?
Las placas tienen forma pentagonal.
- ¿En qué se diferencian las placas de las zonas ambulacrales de aquellas de las zonas
interambulacrales?
Las placas que forman los sectores ambulacrales presentan en su parte externa unos
pequeños orificios por donde salen los pies amubulacrales, las placas de los sectores
interambulacrales no los poseen.

59
FECUNDACIÓN Y DESARROLLO EMBRIONARIO EN
ERIZO DE MAR
Objetivos
- Estudiar el aparato reproductor de los erizos de mar y la morfología de los gametos.
- Provocar y analizar la fecundación in vitro del erizo de mar.
- Observar su desarrollo embrionario.
Material común:
- Cristalizador con suspensión de
embriones en agua de mar
- Erizos de mar
- Tijeras y lanceta
- Cuentagotas
- 2 pocillos con agua de mar (especificando
sexo)
- 2 portas excavados y cubres
- Microscopio
Fundamento
En los organismos acuáticos, como el erizo de mar, la fecundación externa es la más frecuente.
Para que se produzca, machos y hembras liberan al agua simultáneamente grandes cantidades
de óvulos y espermatozoides que son producidos en gónadas de gran tamaño. Estas
particularidades permiten poder observar fácilmente la fecundación de estos seres vivos en el
laboratorio.
Para observar las diferentes fases del desarrollo embrionario, un día antes de realizar la
práctica, se colocan juntos gametos de ambos sexos en un cristalizador con agua de mar, al
objeto de que éste se inicie con tiempo suficiente.
Método
A) Observación de gónadas y gametos.
- Corta los erizos por la zona ecuatorial, separa las dos mitades y observa las gónadas: si
son de color naranja fuerte, son hembras; si son de color amarillo, son machos. Fíjate en la
colocación de las gónadas en el interior del erizo.
- Extrae un trozo de ovario y tritúralo dentro del pocillo marcado con el símbolo femenino,
para liberar los óvulos.
- Deposita a continuación una gota de la suspensión de óvulos en un porta excavado. Coloca el
cubre y observa los gametos al microscopio.
- Repite el proceso con la gónada masculina y observa los gametos al microscopio.
- IMPORTANTE: no utilices los mismos utensilios (pocillos, cuentagotas, lanceta...)
para manipular las suspensiones de óvulos y espermatozoides.

60
B) Fecundación y observación de las primeras fases del desarrollo embrionario.
- Levanta con cuidado el cubre de la preparación de óvulos. Añade una gota de la suspensión
de espermatozoides y coloca de nuevo el cubre. Observa al microscopio.
- Con el cuentagotas toma una muestra de la suspensión de embriones y deposítala en un
porta excavado, coloca el cubre y observa al microscopio. Intenta localizar diferentes
fases del desarrollo embrionario.
Resultados
- ¿Cuántas gónadas observas y de qué sexo son? Indica su disposición y dibújalas.
Cinco gónadas situadas radialmente en la mitad superior de la “caja” del erizo. Si son de
color naranja intenso, hembras; si son amarillas, machos.
- ¿Qué diferencias aprecias entre los gametos en cuanto al tamaño, la forma, la movilidad y
el color?
Las ovocélulas son de gran tamaño (macrogametos), inmóviles y presentan una coloración
naranja pálido, mientras que los espermatozoides son muy pequeños (microgametos) y
extraordinariamente móviles gracias a su flagelo.
- ¿Cómo se disponen los gametos masculinos y
femeninos al producirse la fecundación?
¿Observas algún cambio después de algunos
minutos? Dibújalos.
Los espermatozoides rodean completamente a
la ovocélula y después de algunos instantes
puede observarse la formación de una
membrana de fecundación alrededor de la
ovocélula.

61
- Dibuja las fases del desarrollo embrionario que hayas localizado.
Observaciones
- Es necesario que los alumnos ya conozcan el manejo del microscopio.
- Lo ideal es usar erizos frescos. Es mejor para la supervivencia de los gametos mantenerlos
hasta el momento de la práctica en nevera o al fresco.
- Hay que preparar la suspensión de embriones el día anterior de la siguiente manera: en un
cristalizador con agua de mar se coloca un trocito de gónada femenina y otro de gónada
masculina y se remueve bien. Retirar los restos de gónada masculina ya que un exceso de
espermatozoides puede corromper el agua.
- Tener especial cuidado en no mezclar el material de laboratorio (lancetas, cuentagotas,
pocillos, etc.) al trabajar con los dos tipos de gametos.
- Triturar bien las gónadas en los pocillos para obtener buenas suspensiones de gametos.

62
ESTUDIO Y DISECCIÓN DE UN MEJILLÓN
Objetivos
- Estudiar la morfología y anatomía de un molusco.
- Mejillones
- Tijeras, pinzas y lanceta
- Alfileres
- Portas y cubres
- Microscopio
A) Estudio de la concha
- Mira la concha con atención. El extremo puntiagudo (umbo) es la parte anterior donde se
sitúa la boca del animal. A partir de aquí y hasta el borde posterior, se observan las
estrías de crecimiento.
- Observa si existe algún animal adherido. En caso afirmativo, trata de identificarlos.
- Introduce con cuidado, las tijeras por la abertura anterior de las conchas.
- Corta el músculo aductor posterior y abre las valvas. Separa el manto de la concha con
mucho cuidado y coloca el ejemplar sobre la cubeta para estudiar la concha y el animal por
separado.
Cuestiones
- Haz un dibujo de la concha por su cara externa indicando las partes que reconozcas. Si
existen invertebrados adheridos dibújalos igualmente.
Cara
Umbo
Estrías de crecimiento
Charnela
Serpula
(anélido tubícola)
Balanus
(crustáceo cirrípedo)

63
- Haz otro dibujo de la cara interior de las valvas. En esta cara han quedado unas huellas. ¿A
qué corresponden esas marcas o impresiones?
B) Estudio anatómico del cuerpo
- Abre los dos lóbulos del manto y sujétalos con alfileres. Observa su coloración.
- A ambos lados de la masa visceral, se observan cuatro láminas (dos a cada lado) de color
pardo oscuro: son las branquias. Extiéndelas con cuidado.
- En el extremo anterior de la masa visceral se encuentra la boca con cuatro palpos labiales.
- Debajo de ella está situado el estómago, cruzado por los músculos del pie y, a continuación,
encontrarás el pie y los hilillos del biso.
- Siguiendo hacia la parte posterior verás una zona hinchada de la masa visceral (joroba de
polichinela), rodeada de las gónadas que tienen un color más oscuro que la joroba.
- Los riñones, de forma estriada, están situados a los lados de la masa visceral.
Cuestiones
- En el siguiente dibujo, pon nombre a las partes observadas.
Cara interna
Charnela
Impresión del
músculo aductor
posterior
Impresiones de los
músculos retractores
del pie
Impresión del
manto
Boca
Palpos labiales
Pie
Joroba de
polichinela
Filamentos
del biso
Músculo aductor
posterior
Bránquias
Riñón
derecho
Manto
Músculos retractores
del pie

64
C) Observación del epitelio vibrátil
- Corta un trozo de branquia y sitúala en un porta junto con una gota de agua. Coloca un
cubre y observa al microscopio.
Cuestiones
- ¿Cómo es el epitelio que tapiza los filamentos branquiales?
Está completamente cubierto de cilios que mueven el agua de forma continua para
conseguir una buena captación de oxígeno en las branquias.
D) Observación de los gametos
- Haz un corte en la zona de las gónadas y frota contra un porta. Coloca el cubre y observa
los gametos al microscopio.
Cuestiones
- Los mejillones son unisexuales, el que has diseccionado ¿Es macho o hembra? ¿Por qué lo
sabes?
Se pueden reconocer por la diferente coloración del manto: las hembras, de color rojizo y
los machos blanquecinos.
- ¿Has observado gametos? ¿Qué características tienen?
Los óvulos tiene aspecto piriforme, los espermatozoides son mucho menores y se mueven
continuamente.
Observaciones
- La práctica puede resultar un poco extensa para realizar en una sesión. Una posibilidad es
dividirla en dos: la primera para el estudio de la concha y de los órganos del cuerpo, y la
segunda para la observación del epitelio vibrátil y los gametos.

65
DISECCIÓN DE UN CORAZÓN DE CERDO
Objetivo
- Estudiar la anatomía externa e interna de un corazón.
- Bandeja de disección
- Tijeras y pinzas
- Bisturí
- Guantes de goma
- Corazón de cerdo
- Sonda acanalada
A - Estudio de la morfología externa
- Identifica la cara anterior y posterior del corazón. La posterior es la más plana y su parte
inferior más puntiaguda.
- Identifica las aurículas y los ventrículos. Las aurículas están en la parte superior, cada
aurícula está separada de su correspondiente ventrículo por un surco aurículo-ventricular.
En la cara anterior del corazón hay un surco oblicuo que coincide con el tabique interno que
separa los dos ventrículos.
- Observa que todos los vasos sanguíneos están en la parte superior, pero parten de
diferentes puntos. Introduce la sonda por cada uno de ellos y fíjate con qué cavidades
comunican.
Cuestiones
- Pon el nombre de las partes señaladas en el dibujo e identifica cada una de ellas sobre el
corazón que tienes en la bandeja.
Vena Cava
Arteria
Aorta
Venas
Pulmonares
Aurícula
Izquierda
Ventrículo
Izquierdo
Arterias y venas
coronarias
Ventrículo
Derecho
Aurícula
Derecha
Arteria
pulmonar

66
- ¿Observas diferencia de tamaño y consistencia entre aurículas y ventrículos? Las aurículas
son muy pequeñas, de paredes finas y elásticas. Los ventrículos son muy grandes, ocupan
casi todo el corazón y son de paredes musculosas.
-¿Observas diferencias de grosor y consistencia entre arterias y venas?
Las arterias son más gruesas y elásticas para resistir la presión de la sangre bombeada
por el corazón. Las venas son vasos sanguíneos de paredes finas y poco elásticas.
-¿A qué cavidades cardiacas llegas si introduces la sonda por la arteria pulmonar, arteria
aorta, venas cavas y venas pulmonares? Si se introduce la sonda por la arteria pulmonar se
llega al ventrículo derecho, por la arteria aorta al izquierdo. Las venas cavas comunican con
la aurícula derecha y las pulmonares con la izquierda.
B – Estudio de la anatomía interna de los ventrículos
- Introduce las tijeras por la arteria pulmonar y
realiza el corte 1 de la figura (sigue la línea
discontinua dibujada por encima del surco
anterior).
- Realiza el corte 2 indicado en la figura, iniciándolo
por la arteria aorta y siguiendo la línea por debajo
del surco anterior.
- Examina el interior de los ventrículos. Localiza,
con ayuda de la sonda, el orificio que comunica
cada una de las aurículas con su correspondiente
ventrículo.
Cuestiones
- En la base de la arteria pulmonar y de la aorta se observan unos repliegues membranosos
con forma de nido o bolsillo. ¿Cómo se llaman y qué función tienen?
Son las válvulas semilunares que permiten el avance de la sangre e impiden el retroceso al
ventrículo.
- Entre las aurículas y los ventrículos hay unos repliegues membranosos con forma de vela
que se fijan mediante fibras tendinosas a unos pilares carnosos o resaltes musculares del
interior de la pared. ¿Cómo se denominan estos repliegues? ¿Qué función tienen?
Son la válvula mitral, entre aurícula izquierda y ventrículo izquierdo, y la válvula tricúspide
entre aurícula y ventrículo derechos. Ambas permiten el paso de la sangre desde las
aurículas a los ventrículos, pero no a la inversa.
- Compara el grosor de la pared de los dos ventrículos. ¿Tiene alguna relación con la función
que desempeñan?
Es más gruesa la pared del ventrículo izquierdo porque envía la sangre a todo el cuerpo, el
ventrículo derecho sólo envía sangre a los pulmones.
Corte 1
Corte 2

67
- Pon los nombres de las estructuras señaladas.
C – Estudio de la anatomía interna de las aurículas
- Introduciendo las tijeras por las venas cavas, abre para observar el interior de la aurícula
derecha. Repite el proceso con la aurícula izquierda cortando por las venas pulmonares.
Cuestiones
- Compara el grosor de la pared de las aurículas y de los ventrículos. ¿A qué se debe esta
diferencia?
Los ventrículos tienen una pared muy gruesa porque tienen que enviar la sangre a todo el
cuerpo, mientras que las aurículas sólo la envían a los ventrículos.
Aurícula
derecha
Válvulas
sigmoideas Arteria
pulmonar
Aurícula
izquierda
Válvula
tricúspide
Orificios
coronarios
Arteria
aorta
Válvulas
sigmoideas
Aurícula
derecha
Válvula
Mitral

68
DETERMINACIÓN DEL PORCENTAJE DE AGUA EN
LA MATERIA VIVA
Objetivo
- Comprobar que el agua forma parte de la materia viva.
Material común:
- Balanza eléctrica
- Estufa de desecación
- 4 trozos de papel de aluminio
- Placa de Petri
- Rotulador
- Trozos de: tomate, hígado, carne, hueso,
zanahoria, semillas...
Fundamento
El agua entra a formar parte de la materia viva en una proporción importante. Aunque varía
bastante, puede estimarse que, por término medio, representa el 75 % de dicha materia. Al
desecar órganos animales y vegetales eliminamos el agua que forma parte de los mismos,
quedando la materia “ seca”. Por diferencia de peso antes y después de la desecación, podemos
calcular la cantidad de agua contenida en la muestra de materia viva utilizada.
Método
- Toma un trozo de papel de aluminio. Pésalo y anota el resultado en la tabla.
- Coloca sobre este papel un órgano (varias semillas, trozo de carne...). Pésalo y anota el
resultado en la casilla correspondiente.
- Repite las operaciones con los restantes órganos.
- Sitúa todos los órganos sobre la placa de Petri, convenientemente rotulada con el nombre
del grupo e introdúcela en la estufa de desecación.
- Después de varios días, saca la placa, pesa de nuevo cada órgano y anota los resultados.
- Determina el contenido en agua de la siguiente manera:
Peso del material fresco : X
Peso del material seco: Y
Cantidad de agua perdida en la desecación: X – Y = Z
% de agua de la muestra: Z x 100
X

69
Resultados
Órgano Peso papel Peso papel
cargado
Peso material
fresco (X)
Peso material
seco (Y)
% de agua en
la muestra
Observaciones
- Al desecar en la estufa los diferentes órganos deben colocarse en papel de aluminio para
evitar que se peguen a la placa de Petri.
- Deben pesarse varias semillas, particularmente si son ligeras como es el caso de las
lentejas, para que la diferencia de peso sea apreciable.

70
RECONOCIMIENTO DE LA PRESENCIA DE UNA SAL
MINERAL: CARBONATO CÁLCICO
Objetivo
- Poner de manifiesto la presencia de sales minerales (CaCO3) en la materia viva.
Nivel :E.S.O. / Bachillerato Agrupamiento: 2 Alumnos por equipo
- Bandeja
- Órgano duro calcáreo
- Órgano duro no calcáreo
- Roca caliza
- Roca no calcárea
- Cuentagotas con HCl
Fundamento
Son muchas las sales minerales que entran a formar parte de la materia viva. Se pueden
encontrar disueltas, en forma de iones, o precipitadas formando estructuras esqueléticas o de
sostén. Este es el caso del carbonato cálcico que forma las conchas y esqueletos de muchos
organismos. Su presencia se puede poner de manifiesto por la efervescencia que producen al
añadir unas gotas de HCl, dicha efervescencia se debe al desprendimiento intenso de dióxido
de carbono.
Método
- Añade unas gotas de ácido clorhídrico a cada una de las muestras situadas en la bandeja.
- Anota los resultados obtenidos.
Resultados
Material Resultado Conclusión
Órgano calcáreo Efervescente con HCl Contiene carbonatos
Órgano no calcáreo No efervescencia No contiene carbonatos
Roca caliza Efervescente con HCl Contiene carbonatos
Roca no calcárea No efervescencia No contiene carbonatos
¿Podrías explicar por qué se produce un burbujeo al añadir HCl a algunos órganos?
El HCl reacciona con el CaCO3 según la reacción:
2HCl + CaCO3 CaCl2 + CO2 + H2O
El CO2 es un gas que al desprenderse produce la efervescencia.

71
Observaciones
- Como órganos duros no calcáreos pueden utilizarse los siguientes: insecto coleóptero,
envoltura de huevo de raya, cuerno, etc.
- Como órganos duros calcáreos pueden utilizarse los siguientes: concha de molusco, trozo
de esqueleto de erizo, corales, etc.

72
RECONOCIMIENTO DE AZÚCARES REDUCTORES
Objetivo
- Identificar la presencia de azúcares reductores mediante la reacción de Fehling.
Material común:
- Reactivos de Fehling A y B
- Disolución de glucosa
- Zumo de uva
- Disolución de sacarosa
- Baño María
- Pipetas
- Gradilla con tres tubos de ensayo
numerados
Fundamento
Los monosacáridos y la mayoría de los disacáridos (excepto la sacarosa) son azúcares
reductores debido a la presencia de un grupo carbonilo libre capaz de oxidarse y pasar a
ácido. En medio alcalino, reducen con facilidad a agentes oxidantes suaves como los iones
metálicos Cu2+
, Fe3+
, Ag+
. Estas reacciones redox constituyen la base de las pruebas de
Fehling y Benedict, que permiten identificar, e incluso cuantificar, la presencia de azúcares
reductores en un material biológico y han sido frecuentemente utilizadas en la determinación
del contenido de glucosa en sangre y orina para el diagnóstico de la diabetes mellitus.
Si el azúcar es reductor se oxida al reaccionar con el licor de Fehling, el carbono carbonílico
se oxida a ácido carboxílico, mientras que el ión cúprico (Cu+2
), antes de color azul intenso, se
reduce a ión cuproso (Cu+2
) que precipita de la disolución en forma de óxido cuproso (Cu2O) de
color rojo ladrillo.
La glucosa es un monosacárido y por tanto reductor. La reacción positiva se manifiesta con la
formación de un precipitado de color rojo de óxido cuproso.
Con el zumo de uva la reacción es positiva, contiene azúcares reductores (la glucosa y la
fructosa abundan en estado libre en las frutas).
La sacarosa no tiene grupo carbonilo libre por lo que no da reacción positiva con el Fehling.
Método
- Coloca, con la pipeta, 3 ml de disolución de glucosa, 3 ml de zumo de uva y 3 ml de
disolución de sacarosa a los tubos 1, 2 y 3 respectivamente.
- Añade a cada tubo 1 ml de Fehling A y 1 ml de Fehling B (coge las soluciones con pipetas
distintas).
- Calienta los tubos de ensayo al baño María durante unos minutos hasta que observes
coloración rojiza en alguno de ellos. Retira los tubos y anota los resultados en la tabla.

73
Resultados
Tubo nº Contenido Resultado Conclusiones
1 Glucosa
(+)
Se forma precipitado
rojo
Azúcar reductor
2 Zumo de uva
(+)
Se forma precipitado
rojo
Contiene azúcares
reductores
3 Sacarosa
(-)
No hay cambio de
coloración
Azúcar no reductor

74
RECONOCIMIENTO DE LA PRESENCIA DE UN
POLISACÁRIDO: ALMIDÓN
Objetivo
- Reconocer la presencia de almidón mediante solución yodo-yodurada de Lugol.
Material común:
- Lugol
- Solución de almidón
- Agua
- Gradilla con dos tubos de ensayo
numerados
- 2 pipetas
- Placa de Petri con trozos de:
patata
salchicha sin almidón
salchicha con almidón
Fundamento
El Lugol es una solución de IK y yodo metálico. El yodo colorea de azul las soluciones de
almidón. Se acepta que esta reacción se debe a un compuesto de adsorción formado por la
quelación de iones de yodo en el interior de la molécula de almidón que espacialmente tiene una
estructura en espiral.
Método
- Echa, con la pipeta, 2 ml de agua en tubo nº 1 y 2 ml de solución de almidón en el tubo nº 2.
- Añade a cada uno de ellos una o dos gotas de Lugol.
- Añade asimismo una o dos gotas de Lugol a cada uno de los órganos colocados en la placa
de Petri.
- Anota los resultados y extrae conclusiones.
Resultados
Tubo nº/ órgano Resultado Conclusión
1 Negativo
2 Positivo
Patata Positivo La patata contiene almidón
Salchicha 1 Positivo La salchicha contiene almidón
Salchicha 2 Negativo La salchicha no contiene almidón

75
RECONOCIMIENTO DE LÍPIDOS
Objetivos
- Comprobar la solubilidad de los lípidos en diferentes solventes.
- Reconocer la presencia de lípidos mediante coloración con Sudan III.
Material común:
- Aceite
- 2 pipetas
- Disolventes orgánicos: éter y
cloroformo
- Gradilla con 3 tubos de ensayo
numerados
- Embudo
- Placa Petri con trozos de tocino, queso
graso y patata
- Frasco cuentagotas con Sudán III
Fundamento
Los lípidos son sustancias orgánicas que poseen en su molécula largas cadenas
hidrocarbonadas, lo que las hace insolubles en sustancias polares por la imposibilidad de
formar puentes de hidrógeno con las moléculas del disolvente. En cambio, sí se disuelven con
facilidad en disolventes orgánicos como el cloroformo y el éter.
Cuando se trata de disolver lípidos en un disolvente polar, ambas fases se separan en función
de su densidad y son fácilmente identificables en un tubo de ensayo. Si el disolvente es apolar,
no se separan.
La presencia de lípidos se puede poner de manifiesto porque se tiñen específicamente con el
colorante Sudán III, adquiriendo una coloración rojiza característica que no desaparece tras
el lavado con agua.
Método
A) Solubilidad de los lípidos
- Coloca 1 ml de aceite en cada uno de los tubos.
- Añade 1 ml de éter, 1 ml de cloroformo y 1 ml de agua a los tubos 1, 2 y 3 respectivamente.
- Agita vigorosamente los tubos.
- Observa y anota los resultados.
B) Reconocimiento de los lípidos
- Coloca en la placa Petri un trozo de tocino, otro de queso y otro de patata.
- Baña cada uno de los trozos anteriores con unas gotas de Sudán III.
- Añade unas gotas de Sudán III al tubo nº 3.

76
Resultados
Tubo nº Contenido Resultados
1 Éter + aceite Disolución homogénea
2 Cloroformo + aceite Disolución homogénea
3 Agua + aceite No miscibles. Agua más densa
que aceite
- ¿Por qué razón el aceite se disuelve en unos solventes y en otros no?
El cloroformo y el éter son disolventes orgánicos apolares, que pueden alojar entre sus
moléculas a los triglicéridos del aceite, en un entorno fuertemente hidrofóbico. El
resultado es la perfecta disolución en estos disolventes.
El agua es una molécula polar, cuyos enlaces de hidrógeno intermoleculares impiden la
disolución de las moléculas apolares del aceite. El resultado es la separación del agua y el
aceite. Puesto que el aceite es menos denso que el agua, se sitúa encima de él.
B) Reconocimiento de los lípidos (tinción con Sudán III)
Aceite Tinción + Presencia de lípidos
Tocino Tinción + Presencia de lípidos
Queso Tinción + Presencia de lípidos
Patata Tinción - Ausencia de lípidos
Observaciones
- El laboratorio debe estar bien ventilado para evitar los efectos perjudiciales del éter y el
cloroformo.
- Preparación del Sudán III:
Acetona ............................. 50 cc
Alcohol de 70% ............... 50 cc
Sudán III a saturación
A continuación filtrar el preparado.

77
RECONOCIMIENTO DE PROTEÍNAS
Objetivo
- Reconocer la presencia de proteínas mediante la reacción de Biuret.
Material común:
- Matraz con clara de huevo diluida
- Matraz con jugo de carne
- Matraz con disolución de aminoácido
- Cuatro pipetas
- Reactivo de Biuret
- Cuentagotas
- Gradilla con tres tubos de ensayo
numerados
Fundamento
Una de las reacciones más utilizadas para la identificación de proteínas es la de Biuret, propia
de proteínas, pero no de aminoácidos, pues se debe a la presencia del enlace peptídico.
Cuando una proteína se pone en contacto con un álcali concentrado se forma una sustancia
compleja denominada Biuret que en contacto con una disolución de sulfato cúprico diluida da
una coloración violeta característica que identifica la presencia de proteínas.
Método
- Añade, con la pipeta, 2 ml de clara de huevo diluida, 2 ml de jugo de carne y 2 ml de
disolución de aminoácido a los tubos 1, 2 y 3 respectivamente.
- Añade en cada uno de los tubos 2 ml de hidróxido sódico (NaOH) y a continuación unas
gotas de sulfato cúprico (CuSO4), agitando para que se mezcle bien.
Resultados
Tubo nº Contenido Resultado
1 Clara de huevo diluida Positivo
2 Jugo de carne Positivo
3 Disolución de aminoácido Negativo
- ¿Cómo explicas los resultados obtenidos en el tubo nº 3?
El biuret se forma por reacción del enlace peptídico con el sulfato cúprico. En la disolución
de aminoácido no existen tales enlaces, por eso el resultado es negativo.

78
IDENTIFICACIÓN DE BIOMOLÉCULAS
EN SOLUCIONES PROBLEMA
Objetivo
- Reconocer la presencia de almidón, azúcares reductores, proteínas y lípidos mediante
técnicas de análisis bioquímico en dos soluciones problema.
Material común:
- Lugol
- Fehling A y B
- Baño María
- Hidróxido sódico
- Sulfato cúprico
- 5 pipetas
- Matraz con la solución “X”
- Matraz con la solución “Y”
- Gradilla con 8 tubos de ensayo
numerados
- 2 pipetas
Fundamento
La presencia de determinadas biomoléculas en un líquido problema puede ponerse de
manifiesto mediante ensayos basados en las diferentes propiedades de las biomoléculas.
- Identificación de polisacáridos: el Lugol es un reactivo de color amarillo translúcido que
colorea de azul el almidón. En consecuencia, la reacción positiva con el Lugol indica
presencia de almidón, mientras que la reacción negativa indica su ausencia.
- Identificación de azúcares reductores: el licor de Fehling consta de dos disoluciones, el
Fehling A y el Fehling B, que deben añadirse separadamente y en cantidades iguales. El
licor de Fehling reacciona con azúcares reductores formando un precipitado de color rojo
ladrillo. En consecuencia, la reacción positiva con el licor de Fehling indica presencia de
azúcares reductores.
- Identificación de proteínas: cuando una proteína se pone en contacto con un álcali
concentrado se forma una sustancia compleja denominada Biuret que en contacto con una
disolución de sulfato cúprico diluida da una coloración violeta característica que identifica
la presencia de proteínas.
- Identificación de lípidos: el Sudán III es un colorante rojizo específico de los lípidos. Al
añadir unas gotas a una solución que contenga lípidos, ésta adquiere un color rojo oscuro
intenso característico.
Método
- Toma los tubos identificados como X1, X2, X3, X4. Añade a cada uno de ellos 2 ml de la
solución problema “X”.
- Toma los tubos identificados como Y1, Y2, Y3, Y4. Añade a cada uno de ellos 2 ml de la
solución problema “Y”.

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- Con los tubos X1 e Y1 realiza la prueba del Lugol. Observa lo que sucede y anota los
resultados en la tabla.
- Con los tubos X2 e Y2 realiza la reacción de Fehling. Observa lo que sucede y anota los
- Con los tubos X3 e Y3 realiza la prueba de Biuret. Observa lo que sucede y anota los
- Con los tubos X4 e Y4 realiza la prueba del Sudán III. Observa lo que sucede y anota los
Resultados
X1 Solución “X” y Lugol
(+)
Coloración azul oscuro
La solución problema X
contiene almidón
X2 Solución “X” y Fehling A y B
(-)
No se forma un
precipitado rojo
no contiene azúcares
reductores
X3 Solución “X” y Biuret
(-)
No hay coloración violeta
no contiene proteínas
X4 Solución “X” y Sudán III
(-)
No hay coloración roja
intensa
no contiene lípidos
Y1 Solución “Y” y Lugol
(-)
No hay coloración azul
oscuro
La solución problema Y
no contiene almidón
Y2 Solución “Y” y Fehling A y B
(+)
Se forma un
precipitado rojo
contiene azúcares
reductores
Y3 Solución “Y” y Biuret
(+)
Hay coloración violeta
contiene proteínas
Y4 Solución “Y” y Sudán III
(+)
Hay coloración roja
intensa
contiene lípidos
Observaciones
- Estos resultados se obtienen utilizando: agua de cocer arroz como solución problema “X” y
como solución problema “Y” leche diluida y enriquecida con aceite.
- Al situar la solución problema “Y” en los matraces que vayan a utilizar los alumnos, es
mejor poner una pequeña cantidad para tener la seguridad de que al pipetear la solución
“Y” en el tubo de ensayo Y4 éste contenga aceite.

80
ACTIVIDAD ENZIMÁTICA DE LA CATALASA
Objetivo
- Comprobar experimentalmente la actividad enzimática de la catalasa y el efecto de la
temperatura sobre la actividad del enzima.
Material común:
- Agua oxigenada
- Pipeta
- Baño María
- Gradilla con 4 tubos de ensayo numerados
- Pinza de acero
- 2 trozos pequeños de órgano animal
- 2 trozos pequeños de órgano vegetal
- Placa de Petri
Fundamento
Tanto en células eucariotas animales como vegetales hay peroxisomas que contienen enzimas
oxidativos, uno de ellos es la catalasa. Este enzima actúa sobre el agua oxigenada
descomponiéndola en agua y oxígeno molecular que se desprende en forma de burbujas.
La catalasa, al igual que la mayoría de los enzimas, se desnaturaliza por el calor; por eso los
órganos hervidos no producen burbujeo al añadir el agua oxigenada.
Método
- Toma un trozo de órgano vegetal y otro de un órgano animal e introdúcelos en agua
hirviendo durante 15 minutos.
- Toma otros dos trozos de los mismos órganos e introduce cada uno de ellos en los tubos
de ensayo 1 y 2 respectivamente.
- Añade 1 ml de agua oxigenada a cada tubo. Observa lo que sucede y anota los resultados.
- Saca los trozos hervidos con ayuda de una pinza (¡no los toques con los dedos!) y colócalos
en los tubos de ensayo 3 y 4.
Resultados
Órgano Tubo Resultado Conclusiones
1 (fresco) Catalasa + Presencia de catalasa
Pechuga de pollo
3 (hervido) Catalasa - Desnaturalización por calor
2 (fresco) Catalasa + Presencia de catalasa
Zanahoria
4 (hervido) Catalasa - Desnaturalización por calor

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- ¿Sabrías decir ahora por qué se desprenden burbujas al poner H2O2 sobre una herida?
Son burbujas de O2 producidas por la descomposición del H2O2.
- ¿Tiene esto algo que ver con la acción desinfectante del H2O2?
No, se debe a la acción de la catalasa presente en las células de los tejidos.
- Cita otro factor que pueda afectar a la actividad enzimática y diseña una experiencia para
comprobarlo.
El pH. Se puede investigar el efecto del cambio de pH añadiendo una pequeña cantidad de
vinagre (ácido acético) y repitiendo el ensayo.
Observaciones
- Comprobar la fecha de caducidad del agua oxigenada.
- Los trozos de órgano pueden ser: zanahoria y pechuga de pollo.
- Podrían utilizarse sendos tubos de control conteniendo agua.
- Los trozos de órganos introducidos en el baño María deben estar bien “cocidos” para
asegurar que la catalasa esté desnaturalizada.

82
ACCIÓN DIGESTIVA DE LA AMILASA DE LA SALIVA
SOBRE EL ALMIDÓN
Objetivo
- Comprobar experimentalmente la acción digestiva de la amilasa de la saliva sobre el
almidón.
Material común:
- 3 pipetas de 5 o 10 ml
- Reactivos de Fehling A y B
- Baño María
- Gradilla con 4 tubos numerados
- Pipeta de 5 o 10 ml
- 10 ml de disolución de almidón
- Frasco cuentagotas con Lugol
Fundamento
La amilasa de la saliva actúa sobre el almidón hidrolizándolo y liberando una mezcla de
azúcares reductores (glucosa y dextrina). La presencia de almidón o de azúcares reductores
puede revelarse mediante la utilización de reacciones específicas para estos dos tipos de
azúcares:
- Reacción con Lugol: el lugol es un reactivo de color amarillo translúcido que colorea de azul
el almidón, pero que no reacciona con azúcares reductores. En consecuencia, la reacción
positiva con el lugol indica presencia de almidón, mientras que la reacción negativa indica su
ausencia.
- Reacción de Fehling: el licor de Fehling consta de dos disoluciones, el Fehling A y el Fehling
B, que deben añadirse separadamente y en cantidades iguales. El licor de Fehling reacciona
con azúcares reductores virando hacia un color rojo ladrillo. En consecuencia, la reacción
positiva con el licor de Fehling indica presencia de azúcares reductores (glucosa).
Método
- Echa 1 ml de disolución de almidón a cada uno de los cuatro tubos.
- En el tubo 1 añade 3 ó 4 gotas de Lugol y anota el resultado.
- En el tubo 2 añade 1 ml de Fehling A y 1 ml de Fehling B. Calienta al baño maría durante 1
minuto y anota el resultado.
- En el tubo 3 añade una cierta cantidad de saliva (la máxima posible); mezcla bien con la
disolución de almidón e introduce el tubo en el baño maría durante un minuto. Añade unas
gotas de Lugol y anota el resultado.
- Procede con el tubo 4 como en el caso anterior pero realizando la prueba de Fehling en vez
de la del Lugol.

83
Resultados
Tubo nº Contenido Resultados Conclusiones
1 Disolución almidón
Lugol
Positivo El iodo del lugol ha coloreado de
azul la disolución de almidón
Fehling A y B
Negativo No hay azúcares reductores libres
Saliva
Lugol
Negativo No hay almidón porque ha sido
hidrolizado por el enzima
Saliva
Fehling A y B
Positivo La amilasa salivar ha hidrolizado el
almidón liberándose glucosa
Observaciones
- Procurar una buena salivación para disponer de suficiente cantidad de enzima.
- Garantizar una buena mezcla de la saliva con el almidón (agitar bien).
- El agua del baño María debe alcanzar la altura del contenido de los tubos de ensayo donde
se realice la prueba de Fehling, para garantizar una reacción uniforme.

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ELABORACIÓN DE JABONES
Objetivo
- Elaboración de jabón a partir de productos de origen vegetal.
Material
Nivel: E.S.O. (Botánica aplicada) Agrupamiento: 2 alumnos por equipo
Material común:
- Balanza digital
- Hidróxido sódico
- Aceite de oliva
- Mechero, trípode y rejilla
- Diferentes esencias vegetales
- Colorantes variados
- Probeta
- 2 Vasos de precipitados de 250 ml
- Varilla agitadora
- Molde de plástico para el jabón
Fundamento
Los aceites son ésteres del trialcohol glicerina con diferentes ácidos grasos. Cuando
reaccionan con una base, tal como el hidróxido sódico o potásico, se hidrolizan obteniéndose
glicerina y las sales sódicas o potásicas de los ácidos grasos. Estas sales se denominan jabones
y al proceso, saponificación.
En el laboratorio se pueden obtener, con cierta facilidad, pastillas de jabón mediante
saponificación del aceite de oliva con sosa. El proceso resulta muy didáctico para observar
procesos químicos exotérmicos y para estudiar una de las propiedades más importantes de los
ácidos grasos: su capacidad de saponificación.
Método
- Vierte 21 ml de agua en un vaso de precipitados.
- Pesa 8,4 g de hidróxido sódico y con cuidado añádelo, poco a poco al agua, removiendo
hasta la disolución completa de la sosa. Procede con extrema precaución evitando
salpicar o inhalar los vapores que se desprenden pues son irritantes.
- Pesa 62,5 g de aceite en un vaso de precipitados y caliéntalo ligeramente.
- Añade la solución de hidróxido sódico al aceite calentado. Viértela con cuidado dejándola
resbalar por la pared del recipiente y remueve constantemente, siempre en la misma
dirección hasta que espese la mezcla. Tardará, al menos, veinte minutos.
- Cuando esté lo suficientemente espesa (se sostiene en pie el agitador usado para remover)
añade unas gotas de esencia, unas gotas del colorante elegido y mézclalo bien.
- Rellena los moldes y déjalo enfriar una semana como mínimo.
Resultados
- ¿Por qué se calienta el vaso cuando disuelves el hidróxido sódico en el agua?
Porque la disolución del NaOH es un proceso que libera energía en forma de calor:
exotérmico.

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- ¿Cómo se denomina la reacción que se produce entre el hidróxido sódico y el aceite?
Explica en qué consiste.
Se denomina saponificación y consiste en que el hidróxido sódico reacciona con el aceite
produciéndose glicerina y jabones, que son las sales sódicas de los ácidos grasos del
aceite.
Aceite Sosa Jabón Glicerina
Observaciones
- Las cantidades están calculadas para obtener dos pequeñas pastillas de jabón por equipo.
- Se debe emplear aceite de oliva que puede ser del que sobra en la cocina (ya usado).
- No deben usarse recipientes metálicos, particularmente de cinc para evitar reacciones con
el hidróxido sódico.
- Para colorear el jabón, se puede utilizar azulete, azafrán, cacao... siempre diluidos en agua.
También se pueden emplear colorantes al efecto existentes en el mercado.
- Para perfumar el jabón se usan aceites esenciales que pueden adquirirse en farmacias o en
droguerías.

86
ESTUDIO DE LA CRISTALIZACIÓN DE SALES
Objetivos
- Observar el proceso de formación de cristales.
- Comprobar la influencia del factor tiempo en la formación de cristales bien desarrollados.
Nivel : E.S.O. Agrupamiento: 2 Alumnos por equipo
Material común:
- Disoluciones saturadas de nitrato
potásico, cloruro sódico y sulfato
cúprico
- Mechero
- Cuentagotas
- Portaobjetos
- Pinzas de madera
- Lupa binocular
- 2 vidrios de reloj
- 2 placas Petri
Fundamento
Un cristal es un sólido con caras, aristas y vértices, resultado del ordenamiento de sus
partículas atómicas o iónicas en una red tridimensional. Entre los muchos fenómenos que
pueden originar un cristal, la precipitación de sales disueltas es uno de los más comunes en la
naturaleza y que mejor se puede recrear en el laboratorio.
Algunas sales muy solubles en agua, como el nitrato potásico (KNO3), el cloruro sódico (NaCl) y
el sulfato de cobre (CuSO4), permiten preparar disoluciones saturadas que fácilmente
precipitan formando cristales al evaporarse el disolvente, los cuales serán más grandes y
perfectos cuanto más lenta sea la evaporación, porque más preciso será el posicionamiento de
las celdillas unidad sobre las superficies y escalones del cristal en crecimiento.
La cristalización de estas sales puede acelerarse mucho evaporando a la llama el disolvente,
pero también se puede permitir una cristalización lenta por evaporación a temperatura
ambiente. La comparación de los cristales formados de una y otra manera pone de manifiesto
la importancia del factor tiempo en el crecimiento de los cristales.
Método
A) Cristalización de nitrato potásico (KNO3)
- Calienta la disolución de nitrato potásico, sin llegar a ebullición.
- Una vez caliente introduce un portaobjetos y sácalo.
- Observa cómo crecen cristales sobre la superficie del porta a medida que se evapora la
disolución de nitrato potásico.
- Observa con la lupa los cristales formados.
B) Cristalización de cloruro de sodio (NaCl) y sulfato de cobre (CuSO4)
B.1 Cristalización rápida
- Toma una pequeña cantidad de disolución saturada de cloruro sódico (unos 5 ml) y
deposítala en un vidrio de reloj.

87
- Sujeta el vidrio de reloj con las pinzas de madera y calienta a la llama de manera que se
vaya evaporando el disolvente lentamente. Retira cuando aún quede algo de líquido.
- Repite todo el procedimiento con la disolución de sulfato de cobre y observa los cristales
que se obtienen ahora.
B.2 Cristalización lenta
- Vierte cada una de las disoluciones (cloruro sódico y sulfato de cobre) en sendas placas de
Petri hasta la altura aproximada de 1 cm y deja evaporar a temperatura ambiente.
- Observa los resultados a la semana siguiente y compáralos con los obtenidos por el método
anterior.
Resultados
- Dibuja los cristales que has obtenido de cloruro sódico y sulfato de cobre.
Cloruro sódico Sulfato de cobre
- ¿Qué diferencias hay entre los cristales obtenidos rápidamente por calentamiento y los
obtenidos lentamente por evaporación? ¿Por qué?
Los cristales obtenidos rápidamente son pequeños y poco regulares, abunda más la masa
microcristalina que los cristales aislados de formas perfectas. La causa está en que no ha
existido tiempo suficiente para que las redes cristalinas se ordenen con precisión en las
tres dimensiones del espacio, de manera que los cristales formados no son grandes. En
cambio, los cristales obtenidos por evaporación son grandes, regulares y aislados unos de
otros, porque se han formado despacio, dando tiempo a las redes cristalinas para crecer
tridimensionalmente.
- ¿Qué condiciones se deben dar para que se formen cristales grandes y regulares?
Aquellas que permitan un crecimiento ordenado de la red cristalina. Son, principalmente,
tiempo, espacio y disponibilidad iónica.
Observaciones
- Las disoluciones se preparan disolviendo las sales hasta saturación.
- Los cristales de nitrato de potasio pueden proyectarse sobre pantalla introduciendo el
porta en el cajetín de un proyector de diapositivas.

88
LAS PROPIEDADES DE LOS MINERALES
Objetivo
- Estudiar las propiedades de los minerales.
Nivel : E.S.O. Agrupamiento: 2 alumnos por equipo
Bandeja nº 1
- Cuarzo, yeso y calcita
- Portaobjetos
- Imán
Bandeja nº 2
- Mica, calcita y cuarzo
- Imán
Bandeja nº 3
- Rejalgar, azurita, cuarzo
rosa, pirita y cinabrio
- Placa de porcelana,
- Imán
Bandeja nº 4
- Pirita, galena, talco y
cuarzo,
- Imán
Bandeja nº 5
- Yeso, yeso fibroso,
cuarzo, espato de Islandia
y fluorita,
- Imán
Bandeja nº 6
- Calcita, baritina,
magnetita y galena
- Imán
Método
- Disponemos de 6 bandejas en cada una de la cuales se estudia una propiedad fácilmente
observable en muestras de mano y que nos permite un reconocimiento rápido de los
minerales, a excepción del magnetismo que se comprueba en todas.
- Cada equipo de alumnos abordará la bandeja que le corresponda y una vez terminada
rotará a la bandeja siguiente hasta completarlas todas.
Magnetismo
Es la propiedad que tienen algunos minerales de ser atraídos por un imán.
A medida que realicen la práctica, deberán ir comprobando y anotando si alguno de los
minerales de las bandejas es magnético. La magnetita.
Bandeja nº 1. Dureza
Es la resistencia que opone la superficie de un mineral a ser rayado.
Los minerales muy blandos se rayan con la uña. Los minerales muy duros rayan al vidrio.
Fíjate en los tres minerales que aparecen en la bandeja; son calcita, cuarzo y yeso.
La calcita tiene una dureza media ya que no raya al vidrio ni se puede rayar con la uña.
El cuarzo es un mineral duro pues raya al vidrio.
El yeso es un mineral blando porque se raya con la uña.
Ordénalos de menor a mayor dureza: Yeso < Calcita < Cuarzo

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Bandeja nº 2. Exfoliación
Es la tendencia que tiene un mineral a romperse con facilidad en determinadas direcciones
cuando se le golpea.
Fíjate en los minerales que tienes en la bandeja; son mica, calcita y cuarzo.
¿Te parece que alguno de ellos tiene exfoliación? ¿Cuál o cuáles? ¿Por qué?
Nombre del mineral Exfoliación ¿Por qué?
Mica Sí Se rompe en láminas
Calcita Sí Se rompe en romboedros
Cuarzo No Se rompe de forma irregular
Bandeja nº 3. Color y raya
El color de un mineral depende de la luz que refleja su superficie.
La raya es el color de un mineral cuando está finamente pulverizado. Para conocer el color de
la raya se frota el mineral contra una placa de porcelana, que es un material muy duro que va a
pulverizar la mayoría de los minerales cuando sean frotados en ella. Algunas veces el color de
un mineral no coincide con el de la raya.
Fíjate en los minerales de la bandeja. Anota su nombre y el color de cada uno en la tabla.
Comprueba el color de la raya y anótalo.
Nombre del mineral Color Raya
Rejalgar Rojo Naranja
Azurita Azul Azul
Pirita Amarillo Negra
Cuarzo rosa Rosa Incolora
Cinabrio Rojo Roja
Bandeja nº 4. Brillo
El brillo es el aspecto que ofrece la superficie de un mineral cuando refleja la luz.
Observa los minerales de la bandeja; anota sus nombres y el brillo.
Nombre del mineral Brillo
Pirita Metálico
Galena Metálico
Talco Céreo
Cuarzo Vítreo
Bandeja nº 5. Diafanidad
Es la propiedad que tienen algunos minerales de dejar pasar la luz.
Fíjate en los minerales de la bandeja. ¿Hay alguno transparente?, ¿translúcido? ¿y opaco?
Nombre del mineral Diafanidad
Yeso Transparente
Yeso fibroso Translúcido
Cuarzo Opaco
Espato de Islandia Transparente, birrefringente
Fluorita Translúcida

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Bandeja nº 6. Densidad
Es la relación que existe entre la masa de un mineral y su volumen.
Fíjate en los minerales de la bandeja. Tienen, aproximadamente, el mismo volumen. ¿Te parece
que pesan lo mismo? Trata de ordenarlos de menor a mayor densidad.
Calcita (2,72) y baritina (4,5) magnetita (5,2) y galena (7,5)
Observaciones
- Seleccionar aquellos minerales que se consideren más adecuados para la propiedad que se
quiere estudiar. Tener en cuenta que para el estudio de la densidad deben ser
ejemplares con volúmenes similares y densidades claramente distintas.

91
ESTUDIO DE LAS ROCAS
Objetivo
- Estudiar las características de las rocas relacionándolas con su origen.
Nivel : E.S.O. Agrupamiento: 2 alumnos por equipo
Bandeja nº 1
- Pizarra, cuarcita y
mármol
- Portaobjetos
Bandeja nº 2
- Conglomerado, arenisca y
arcilla
- Portaobjetos
Bandeja nº 3
- Escoria volcánica,
granito y basalto
Bandeja nº 4
- Gneis y esquisto micáceo
Bandeja nº 5
- Carbón y caliza
Bandeja nº 6
- Granito rosa, riolita y
pumita
Método
- Disponemos de seis bandejas en cada una de las cuales estudiaremos características de
distintos ejemplares de rocas.
- Cada equipo de alumnos abordará la bandeja que le corresponda y cuando haya terminado
rotará a la bandeja siguiente hasta completarlas todas.
Bandeja nº 1. Rocas metamórficas
En la bandeja tienes tres rocas metamórficas: pizarra, cuarcita y mármol.
- ¿Cuáles de estas rocas se han formado por metamorfismo térmico? ¿Y por metamorfismo
dinamotérmico? ¿Por qué lo sabes?
La pizarra se ha formado por metamorfismo dinamotérmico. Las altas presiones hacen que
algunos minerales se extiendan en planos paralelos y perpendiculares a la dirección de la
presión, por lo que la roca toma aspecto hojoso, con forma de láminas.
La cuarcita y el mármol se han formado por metamorfismo térmico. Las altas
temperaturas producen recristalización de minerales la roca adquiere aspecto cristalino;
con cristales de un tamaño semejante que se distribuyen uniformemente en la roca.
- Fíjate en la pizarra. ¿Tiene esquistosidad?
Sí, tiene una esquistosidad muy fina, las láminas son planas, muy delgadas y no se
distinguen los minerales a simple vista porque el metamorfismo ha sido poco intenso.
- ¿Observas fósiles o minerales en la superficie de la pizarra?
En algunas pizarras se observan fósiles de helechos, otras contienen cubos de pirita.

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- ¿Cómo distinguirías la cuarcita del mármol? (Ayúdate utilizando HCl, vidrio...)
La cuarcita proviene del metamorfismo de areniscas, rocas ricas en cuarzo, raya al vidrio.
El mármol proviene del metamorfismo de rocas calizas, no raya al vidrio, produce
efervescencia con el HCl.
Bandeja nº 2. Rocas sedimentarias
Conglomerado
- Describe el aspecto de esta roca con la ayuda de un dibujo.
Se trata de una roca de textura
heterogénea, formada por un conjunto de
clastos de diferentes tamaños atrapados en
una matriz cementada.
- ¿Es una pudinga o una brecha? ¿Por qué lo sabes?
Si los cantos son redondeados es una pudinga, si son angulosos una brecha.
- ¿Qué indica esto respecto a su proceso de formación?
Si los cantos son redondeados se debe que han tenido un transporte largo. Si son
angulosos el transporte habrá sido corto.
- ¿Cuál es la naturaleza de sus componentes? (Ayúdate utilizando HCl, vidrio...).
Si contiene carbonatos produce efervescencia con el clorhídrico. Si es de naturaleza
silícica rayará al vidrio.
Arenisca y arcilla
- Compara el aspecto de estas dos rocas ¿Qué diferencias texturales observas entre ellas?
¿A qué son debidas? (Ayúdate utilizando HCl, vidrio...)
Las areniscas se forman por diagénesis de las arenas, tienen tacto áspero, como el de la
lija, rayan al vidrio. Las arcillas tienen granos de tamaño muy pequeño, son blandas, huelen
a tierra mojada cuando se les echa vaho.
Bandeja nº 3. Rocas magmáticas
Granito
- Describe el aspecto de esta roca.
La roca está íntegramente constituida por cristales de distintos minerales (diferentes
colores), los cristales son grandes y de tamaño similar.
-¿Qué tipo de textura tiene? ¿A qué es debida?
Textura granuda. Este tipo de textura indica que la roca es plutónica, formada por
solidificación del magma en el interior terrestre, el enfriamiento es lento dando tiempo a
que se formen grandes cristales.
Clastos
Matriz

93
- Trata de identificar los distintos minerales presentes en la roca.
Cuarzo: cristales transparentes, incoloros, grisáceos.
Feldespatos: cristales blancos (plagioclasas).
Mica: cristales laminares, escamosos, brillantes, de color negro (biotita) o pardo o
acaramelado (moscovita).
Basalto
Es una roca de color muy oscuro, pesada. Tiene algunos cristales grandes (fenocristales)
observables a simple vista englobados en una masa oscura sin cristales o con cristales muy
pequeños (microcristales).
- ¿Qué tipo de textura tiene? ¿A qué es debida?
Textura porfídica. Se origina cuando el magma enfría en dos etapas. Primero se produce
un enfriamiento lento del magma en la cámara magmática que produce los fenocristales,
después el magma sale a la superficie, produciéndose un enfriamiento rápido que produce
la pasta sin cristalizar o los cristales microscópicos. Esta textura es característica de
rocas volcánicas y filonianas.
Escoria volcánica
No se observan cristales, es de color oscuro, con abundantes poros.
Textura vítrea. Se forma al solidificarse rápidamente y en superficie la lava emitida en
las erupciones volcánicas. El enfriamiento rápido impide que se formen cristales.
- ¿Cuál es el origen de los poros que presenta?
El escape de los gases durante el brusco enfriamiento en superficie.
Gneis y esquisto micáceo
- ¿Qué tipo de metamorfismo han sufrido estas rocas? ¿Por qué lo sabes?
Son rocas formadas por metamorfismo dinamotérmico. Se sabe por su textura
esquistosa: las altas presiones hacen que algunos minerales se dispongan en planos
paralelos entre si y perpendiculares a la dirección de la presión ejercida.
- ¿Qué diferencias observas entre ellas?
Ambas se forman por metamorfismo de arcillas: en el esquisto el metamorfismo es menos
intenso que en el gneis, por lo que la esquistosidad es más fina. El gneis se forma por un
metamorfismo muy intenso, los minerales son de mayor tamaño ya que han sufrido
recristalizaciones y presenta bandas alternas de minerales claros y oscuros.
- Trata de identificar algún mineral.
El esquisto micáceo contiene mica, con aspecto escamoso y brillante, de color negro
(biotita) o pardo acaramelado (moscovita).
Si el gneis es ocelar, se pueden observar grandes cristales de cuarzo deformando el
bandeado.

94
Carbón y caliza
- Establece diferencias y semejanzas entre estas dos rocas.
Semejanzas: ambas son rocas sedimentarias.
Diferencias: las calizas se forman por precipitación de carbonato de calcio (CaCO3),
producen efervescencia con el HCl, son de colores claros. El carbón es una roca orgánica,
se origina a partir de restos vegetales, no produce efervescencia con el HCl, tiene color
oscuro.
En la bandeja tienes tres rocas magmáticas: granito rosa, riolita y pumita.
- ¿Qué tipo de textura tiene cada una de estas rocas?
El granito rosa tiene textura granuda y presenta cristales grandes.
La riolita tiene textura porfídica, presenta cristales oscuros alargados englobados en una
masa vítrea de color claro.
La pumita tiene textura vítrea, no se observan cristales, es de color claro, muy ligera y
tiene poros.
- Relaciona su textura con su proceso de formación.
El granito es una roca plutónica, formada por solidificación del magma en el interior
terrestre; como el enfriamiento es lento, da tiempo a que se formen grandes cristales y
por eso tiene textura granuda.
La riolita y la pumita son rocas volcánicas y el rápido enfriamiento que experimentan no
permite que se formen grandes cristales.
Granito rosa: cristales de cuarzo (transparentes, incoloros o grisáceos), plagioclasas
(cristales blanquecinos), ortosa (cristales rosados), mica (cristales negros).

95
ROCAS Y PROCESOS GEOLÓGICOS EXTERNOS
Objetivos
- Estudiar algunos mecanismos de meteorización y erosión mediante la simulación de los
mismos en el laboratorio.
- Reconocer algunos efectos de la meteorización y la erosión sobre las rocas.
Nivel : E.S.O. Agrupamiento: 3 Alumnos por equipo (máximo 4 equipos)
Bandeja nº1
Balanza
Cristalizador con agua
Muestras de:
Arenisca.
Gneis.
Bandeja nº2
Muestras de:
Escoria.
Granito.
Conglomerado.
Bandeja nº3
Cuentagotas con HCl
Muestra de caliza
Bandeja nº4
Muestras de:
Pizarra meteorizada
Granito meteorizado
Pizarra de cantera
Granito de cantera
Bandeja nº5
Mechero
Pinzas de madera
4 Portaobjetos
Vaso de precipitados
con agua
Método
- Disponemos de cinco bandejas en cinco mesas, en cada una de las cuales estudiaremos un
proceso geológico externo.
- La bandeja nº1 será abordada por todos los grupos a la vez y en primer lugar, dirigidos
por el profesor. Realizada la pesada de las muestras, se introducirán en el agua y se
esperará al final para concluirla, también entre todos.
- Entre tanto, cada equipo de alumnos abordará la bandeja que le corresponda y una vez
terminada rotará a la bandeja siguiente hasta completarlas todas.
Bandeja nº 1
En la bandeja tienes rocas del subsuelo (arenisca y gneis) de diferentes zonas.
- Pesa en la balanza las muestras y anota el resultado.
- Sumerge las rocas en agua y espera hasta el final de la hora.
- Vuelve a pesar las rocas y anota el nuevo resultado.
Peso seco Peso húmedo
Arenisca
Gneis
Cuestiones
a) ¿Son las dos rocas igual de porosas? ¿Son igual de permeables?
Ambas rocas tienen distinta porosidad, lo que se manifiesta en el mayor peso de la arenisca
después de sumergida en agua, consecuencia de la penetración del agua en su interior. La
arenisca es más permeable que el gneis.

96
b) ¿Se podrá formar un acuífero en una capa de gneis? ¿y en una capa de arenisca? Razónalo.
Al ser la arenisca más porosa, será más adecuada para la formación de un acuífero, pues
tendrá mayor capacidad de almacenamiento.
Bandeja nº 2
En la bandeja tienes rocas procedentes del subsuelo de diferentes regiones: una granítica,
otra de conglomerados y otra volcánica.
- Observa cada una de estas muestras y ordénalas de mayor a menor porosidad.
Escoria volcánica > Conglomerado > Granito
Cuestiones
a) ¿En qué regiones será mayor la tasa de infiltración del agua superficial? Explícalo.
Lógicamente en una región volcánica, por la mayor porosidad de estas rocas.
Bandeja nº 3
Algunas sustancias, como los gases de la contaminación, mezcladas con el agua de lluvia
pueden atacar químicamente las rocas y transformarlas.
- Deja caer una gota del "agua" (HCl) del cuentagotas sobre el trozo de roca caliza.
- Observa lo que ocurre y seca la roca con un poco de papel.
Cuestiones
a) ¿Qué crees que ha ocurrido en la roca?
El HCl reacciona con el CaCO3 y se produce desprendimiento de CO2, responsable del
burbujeo que se observa.
b) ¿Existirá en la naturaleza algún fenómeno semejante, aunque más lento, que pueda destruir
la roca caliza? Explícalo.
El CaCO3 de la roca caliza puede reaccionar con los gases de la atmósfera alterándose
químicamente.
Bandeja nº 4
En la bandeja tienes cuatro muestras de rocas (granitos y pizarras); dos han permanecido
largo tiempo en la superficie, mientras que las otras dos han sido extraídas de canteras a
profundidad.
- Identifica las dos muestras de pizarra y las dos de granito.
- Separa las que han permanecido en superficie de las que proceden de canteras.
Cuestiones
a) Indica qué diferencias has observado entre las rocas de la superficie y las de las canteras.
Pueden observarse diferencias como la presencia de piritas oxidadas en la pizarra, superficies
pulidas por rodadura, cambios de color y textura en la superficie de las muestras; el granito
superficial es más deleznable y se rompe con más facilidad que el de la cantera...
b) Explica qué ha podido ocurrir para que se hayan producido estas diferencias entre las rocas
de superficie y las profundas.

97
Las rocas superficiales están alteradas por acción de la atmósfera y de los agentes erosivos
mientras que las extraídas de la cantera están intactas.
Bandeja nº 5
- Sujeta el cristal con una pinza (por un extremo).
- Calienta a la llama del mechero durante un minuto.
- Introdúcelo en el agua y observa lo que ocurre.
- Repite la operación con el mismo cristal cuantas veces puedas y observa lo que ocurre.
Cuestiones
a) Describe lo ocurrido y da una explicación.
Al calentar el vidrio se dilata y al enfriarlo se contrae. Estos cambios tan bruscos provocan su
rotura.
b) ¿Existirá en la naturaleza algún fenómeno semejante que de lugar a la disgregación de las
rocas por efecto de la temperatura? Explícalo.
Sí, la meteorización física por diferencia térmica entre el día y la noche.

98
INTERPRETACIÓN DEL MAPA TOPOGRÁFICO
Objetivos
- Comprender la utilidad del un mapa topográfico para el estudio del relieve.
- Manejar el concepto de escala de un mapa.
- Calcular distancias reales entre dos puntos de un mapa utilizando su escala.
- Interpretar esquemas sencillos de mapas topográficos.
- Reconocer formas elementales del relieve.
Fundamento
Un mapa topográfico es la representación a escala de la superficie terrestre sobre un plano.
La base de su elaboración es la fotografía aérea, complementada con otros datos tomados
directamente en el terreno.
Es un instrumento esencial para el conocimiento del relieve de una zona determinada ya que
contiene información directa sobre dónde están situados los valles, colinas, cursos de agua,
costas…; también contiene información sobre las modificaciones introducidas por el ser
humano: pueblos, ciudades, caminos, cultivos, carreteras, puertos, etc. Todos estos datos
aparecen reflejados en el mapa topográfico mediante signos convencionales. Además podemos
deducir datos como la altitud de cualquier punto del mapa, por dónde circulan las aguas
superficiales, las distancias reales entre dos puntos, la pendiente...
La altitud de un punto sobre el nivel del mar se denomina cota. Las formas del relieve se
representan mediante curvas de nivel que son líneas cerradas que unen puntos de la misma
cota. Las curvas de nivel se obtienen suponiendo el relieve cortado por una serie de planos
imaginarios horizontales, paralelos entre sí y equidistantes, tomando como plano de partida el
nivel del mar; la proyección de las distintas intersecciones en un plano, da el trazado de las
curvas. Las curvas de nivel, por tanto, no se cortan y las de menor altitud engloban a las de
mayor, salvo en las depresiones donde las curvas se indican con trazo discontinuo.
La diferencia de altitud entre dos curvas es constante para cada mapa y recibe el nombre de
equidistancia. La cota de cualquier curva de nivel, se calcula conociendo el valor de una de ellas
y la equidistancia.
La escala de un mapa topográfico es la relación que existe entre una distancia cualquiera
medida sobre el mapa y la que realmente existe medida en el terreno. La escala se expresa
mediante un cociente A:B, donde A es una dimensión del mapa (generalmente 1) y B la que
corresponde en la realidad. Así por ejemplo, la escala 1 : 50.000 significa que una unidad del
mapa equivale a 50.000 unidades en la realidad (por ejemplo, 1 cm del mapa son 50.000 cm en
la realidad, es decir, 500 m). A veces la escala se representa gráficamente mediante un
segmento que indica la relación.
Los mapas topográficos también están definidos por un sistema de coordenadas, que nos
permiten situar cualquier punto en el mapa. Las más frecuente es el sistema de coordenadas
geográficas, basado en la red mundial de meridianos y paralelos, que se expresa en
coordenadas esféricas (grados, minutos y segundos). También son muy utilizadas las
coordenadas planas en unidades de longitud, como las U.T.M.

99
Método
Resuelve los siguientes ejercicios:
1. ¿A cuántos km en la realidad equivale 1 cm de un mapa a las escalas indicadas?
E 1:20.000 1 cm mapa = 0,2 km E 1:500.000 1 cm mapa = 5 km
E 1:100.000 1 cm mapa = 1 km E 1:50.000 1 cm mapa = 0,5 km
2. A las escalas indicadas, 1 Km en la realidad ¿A cuántos cm del mapa equivale?
E 1:10.000 1 km realidad = 10 cm E 1:200.000 1 Km realidad = 0,5 cm
E 1:25.000 1 km realidad = 4 cm E 1:50.000 1 Km realidad = 2 cm
3. Deducir la escala numérica correspondiente a cada una de las escalas gráficas:
1 cm
Escala 1:1.000 Escala 1:250.000 Escala 1:25.000
50 m 10 Km 1 km
Escala 1:100 Escala 1:60.000 Escala 1:4.000
300 m 3 km 120 m
4. Suponiendo que la carretera discurre por terreno llano, ¿a qué distancia está Soto de La
Peral?
Al medir (con un hilo, con una regla...) la distancia entre La Peral y Soto es, más o menos,
de 15,2 cm; luego la distancia real será 25.000 veces mayor, es decir, 3,8 Km.
La Peral
Soto
E 1:25.000

100
5. ¿Cuál de los dos conjuntos de curvas de nivel
representa una pendiente más fuerte?
A B
La pendiente más fuerte es el B, lo que se deduce
porque las curvas de nivel están más apretadas.
6. Cuál de los dos conjuntos de curvas de nivel
A B
No presentan la misma equidistancia. La pendiente
más fuerte es el A.
7. En el siguiente mapa, ¿cuál es la ladera de
pendiente más fuerte?
La ladera Este, porque las curvas de nivel están
más juntas.
8. ¿Cuál de los dos montes de la figura es el más
alto? Pon las cotas.
Es más alto el de la izquierda. Cotas suponiendo una
equidistancia del mapa de 50 m,
9. Señala los dos errores del mapa.
1. Las curvas de nivel no pueden cortarse nunca.
2. La equidistancia tiene que ser constante.
10. Dibuja, con seis curvas de nivel, un monte de
975 m de altitud; equidistancia: 20 m.
11. Señala, mediante flechas, la dirección de la
corriente en cada río.
12. Dibuja, sobre el mapa, por dónde discurriría un
río.

101
ESCALA 1:25.000 Equidistancia: 100 m
1- Pon cota a las curvas de nivel.
2- ¿Verías el pueblo de Paniceros desde Folgueras de Muñalén? ¿Por qué? ¿Desde Paniceros verías La
Oteda? ¿Por qué?
Desde Folgueras de Muñalén no vería Paniceros porque está entre ellos el Pico del Cuerno pero desde
Paniceros sí vería La Oteda porque están en laderas opuestas del valle del río Bárcena.
3- En Llaneces de Calleras se proyecta la construcción de una presa en el río Bárcena. ¿Quedaría
inundado el pueblo de Orderías? Indica la zona que quedaría sumergida.
No quedaría inundado porque está situado a una altitud superior a los 300 m.
4- ¿Qué longitud tendría el muro de contención de la presa proyectada?
El muro que representa la presa mide 1,5 cm que a escala 1:25.000 equivale a 375 metros.

102
EL PERFIL TOPOGRÁFICO
Objetivo
- Levantar perfiles topográficos.
Nivel : E.S.O. / Bachillerato
Material:
- Papel milimetrado
- Portaminas
- Regla
Fundamento
Los perfiles topográficos nos permiten conocer, en una dirección determinada, la dimensión
vertical del relieve a partir de las curvas de nivel.
Método
- Traza con el portaminas, sobre el mapa topográfico, una línea que una los puntos A y B.
- En uno de los extremos de la hoja de papel milimetrado coloca un sistema de coordenadas.
En el eje de ordenadas anota las cotas de las curvas de nivel que afectan al perfil que vas
a levantar, suponiendo que la escala es 1:4000.
- Haz coincidir el borde superior de la hoja de papel milimetrado con la línea que has
trazado en el mapa.
- Señala sobre la hoja de papel milimetrado los puntos en los que ésta corta las curvas de
nivel y proyecta estos puntos hasta la cota que les corresponda en el eje de ordenadas.
- Para obtener el perfil une los puntos.
Resultados

103
EL TIEMPO EN GEOLOGÍA
Objetivos
- Facilitar la comprensión del significado del tiempo en geología.
- Conocer algunos de los hitos más importantes de la historia de nuestro planeta mediante la
consulta de tablas geocronológicas.
Fundamento
La noción de tiempo geológico es bastante difícil de incorporar; el significado de lapsos de
tiempo tan grandes como millones o miles de millones de años se percibe con dificultad. Esto
es además un obstáculo para el aprendizaje de otros conceptos relacionados con el tiempo
geológico como son la formación de las rocas, la fosilización, los cambios en el paisaje, etc.
Mediante esta actividad se pretende una aproximación al concepto de tiempo geológico
partiendo de analogías sencillas con períodos temporales que resultan más familiares (un año o
12 horas). Se consigue además centrar la atención en algunos de los acontecimientos más
importantes de la historia del planeta.
Método
De acuerdo con la información que actualmente se posee, la Tierra tiene una edad aproximada
de 4.700 millones de años (m.a.). Desde ese momento en que se inició la formación de la Tierra
hasta nuestros días, han tenido lugar muchos cambios en el planeta. Algunos de esos
acontecimientos así como su situación en el tiempo están reflejados en la tabla de la hoja
adjunta. Vamos a centrar la atención en algunos de ellos.
A partir de los datos de la escala del tiempo geológico calcula, anotando los resultados en la
tabla:
- El tiempo que ha transcurrido (expresa el resultado en m.a.) desde que se registraron los
acontecimientos que figuran en la tabla hasta nuestros días.
- Los días transcurridos desde dichos acontecimientos si concentramos 4.700 m.a. en 365
días.
- Las horas que habrían transcurrido desde los acontecimientos anteriores, si concentramos
4.700 m.a. en 12 horas.
- Por último, representa gráficamente los resultados de la segunda columna en el calendario
geológico y los de la tercera en el reloj geológico.
Resultados
Tiempo transcurrido
Acontecimientos en m.a. en días en horas
1. Biogénesis 3.500 272 8 h 54´
2. Formación de la atmósfera primitiva 3.400 264 8 h 41´
3. Fósiles más antiguos incuestionables 2.900 225 7 h 24´
4. Proliferación de algas que liberan oxígeno 2.400 186 6 h 6´
5. Formación de la capa de ozono 800 62 2h
6. Primeras plantas terrestres 400 31 1h
7. Apertura del Océano Atlántico 200 16 30´
8. Extinción de los dinosaurios 60 5 9´
9. Primeros homínidos 2 0,16 18´´

104
Calendario geológico
ENERO FEBRERO MARZO
L M M J V S D L M M J V S D L M M J V S D
1 2 3 4 5 6 7 1 2 3 4 1 2 3 4
8 9 10 11 12 13 14 5 6 7 8 9 10 11 5 6 7 8 9 10 11
15 16 17 18 19 20 21 12 13 14 15 16 17 18 12 13 14 15 16 17 18
22 23 24 25 26 27 28 19 20 21 22 23 24 25 19 20 21 22 23 24 25
29 30 31 26 27 28 26 27 28 29 30 31
ABRIL MAYO JUNIO
1 1 2 3 4 5 6 1 2 3
2 3 4 5 6 7 8 7 8 9 10 11 12 13 4 5 6 7 8 9 10
9 10 11 12 13 14 15 14 15 16 17 18 19 20 11 12 13 14 15 16 17
16 17 18 19 20 21 22 21 22 23 24 25 26 27 18 19 20 21 22 23 24
23 24 25 26 27 28 29 28 29 30 31 25 26 27 28 29 30
30
JULIO AGOSTO SEPTIEMBRE
1 1 2 3 4 5 1 2
2 3 4 5 6 7 8 6 7 8 9 10 11 12 3 4 5 6 7 8 9
9 10 11 12 13 14 15 13 14 15 16 17 18 19 10 11 12 13 14 15 16
16 17 18 19 20 21 22 20 21 22 23 24 25 26 17 18 19 20 21 22 23
23 24 25 26 27 28 29 27 28 29 30 31 24 25 26 27 28 29 30
30 31
OCTUBRE NOVIEMBRE DICIEMBRE
1 2 3 4 5 6 7 1 2 3 4 1 2 3 4 5
8 9 10 11 12 13 14 5 6 7 8 9 10 11 6 7 8 9 10 11 12
15 16 17 18 19 20 21 12 13 14 15 16 17 18 13 14 15 16 17 18 19
22 23 24 25 26 27 28 19 20 21 22 23 24 25 20 21 22 23 24 25 26
29 30 31 26 27 28 29 30 27 28 29 30 31
Reloj Geológico
Biogénesis
Atmósfera
primitiva
Fósiles más
antiguos
Proliferación de
algas
Formación de la
capa de ozono
Primeras plantas
terrestres
Extinción
dinosaurios
Primeros homínidos
Apertura del
Atlántico
5:54 Proliferación algas fotosintéticas
Primeras plantas 11:00
12
3
6
9 3:06 Biogénesis
3:19 Atmósfera primitiva
4:36 Fósiles más antiguos
Capa de ozono 10:00
Apertura O. Atlántico 11:30
11:58 Extinción dinosaurios
12:00 Primeros homínidos

105
Principales acontecimientos en la historia de la Tierra
MILES
DE
M.A.
ACONTECIMIENTOS
MILES
DE
M.A
ACONTECIMIENTOS
5,0
Acreción de planetesimales en plena
actividad
2,5
4,9 2,4
La proliferación de las algas fotosintéticas libera
oxígeno a la atmósfera
4,8 2,3
4,7 Se forma el planeta Tierra 2,2
4,6 2,1
4,5 2,0
4,4 1,9
4,3 1,8
El oxígeno representa el 0,1 % de la composición
atmosférica
4,2 Formación del océano primitivo 1,7
4,1 1,6
4,0 Se va enfriando la corteza inicial 1,5
3,9 1,4
3,8 Rocas más antiguas conocidas 1,3
3,7 Se forman los núcleos continentales 1,2 Disminuye el contenido de CO2 en la atmósfera
3,6 1,1
3,5 Aparece la vida en la Tierra 1,0
3,4
Se forma la atmósfera primitiva, sin
oxígeno
0,9
3,3 0,8 Empieza a formarse la capa de ozono
3,2 0,7 Los océanos son salados
3,1 0,6
Era de los invertebrados
Los pluricelulares llenan los océanos
3,0 0,5
2,9 Fósiles más antiguos conocidos, algas 0,4
Era de los peces
Primeras plantas terrestres
2,8 0,3
Pangea sigue intacta
Era de los anfibios
2,7 0,2
Era de los reptiles. Rotura de Pangea, se abre el
Atlántico
2,6 Los océanos empiezan a ser salados 0,1
Extinción de los dinosaurios (0,06)
Primeros homínidos (0,002)

106
3– Fichas de trabajo para el alumno

Prácticas de Biología y Geología Fichas de trabajo
107
RECONOCIMIENTO DE MATERIAL DE LABORATORIO
Objetivo
- Identificar y conocer algunos de los materiales más frecuentes en el laboratorio.
Material
1.-................................................. 7.-................................................ 13.- ...............................................
2.-................................................. 8.- ............................................... 14.- ...............................................
3.-................................................. 9.- ............................................... 15.- ...............................................
4.-................................................. 10.-............................................... 16.- ...............................................
5.-................................................. 11.- .............................................. 17.- ...............................................
6.-................................................. 12.- .............................................. 18.- ...............................................
Método
- Observa el material que tienes dispuesto en la mesa del laboratorio.
- Con ayuda de la lámina, que te facilitará el profesor, identifica los materiales numerados y
escribe sus nombres en el apartado anterior.
- Elabora una sopa de letras y dásela a tu compañero para que la resuelva.
- Completa, igualmente, la tabla que aparece en el reverso de esta ficha de trabajo.
Resultados
- Elabora una sopa de letras con el nombre de 9 instrumentos de laboratorio:
1-............................................
2-............................................
3-............................................
4-.............................................
5-............................................
6-............................................
7-............................................
8-............................................
9-.............................................
- Qué instrumentos utilizarías para:
1 – Medir 1 ml de un líquido:
2 – Medir el volumen de una piedra pequeña:
3 – Observar microorganismos de agua de charca:
4 – Observar una flor:
5 – Hacer la disección de una rana:
6 – Cultivar bacterias y hongos:

108
- Completa la siguiente tabla con los nombres que hay en la sopa de letras:
Nombre:
Función:
Dibujo
Nombre:
Función:
Dibujo
Nombre:
Función:
Dibujo
Nombre:
Función:
Dibujo
Nombre:
Función:
Dibujo
Nombre:
Función:
Dibujo
Nombre:
Función:
Dibujo
Nombre:
Función:
Dibujo
Nombre:
Función:
Dibujo

109
LA LUPA BINOCULAR
Objetivo
- Conocer las características, el uso y
la conservación de la lupa binocular.
Método
- Siguiendo las explicaciones del
profesor, completa la tabla con el
nombre de las partes y la función
de cada una de ellas.
- Realiza la observación de las
muestras que te faciliten siguiendo
las indicaciones del profesor.
Nombre Función
1 -
2 -
3 -
4 -
5 -
6 -
7 -
8 -
9 -
10 -
11 -

110
EL MICROSCOPIO ÓPTICO
Objetivo
- Conocer las características, el uso y la
conservación del microscopio óptico.
Método
- Siguiendo las explicaciones del profesor,
completa la tabla con el nombre de las
partes y la función de cada una de
ellas.
- Observa alguna preparación siguiendo el
procedimiento que te indique el
profesor.
Nombre Función
1 -
2 -
3 -
4 -
5 -
6 -
7 -
8 -
9 -
10 -
11 -
12 -
13 -
14 -

111
OBSERVACIÓN DE MICROORGANISMOS
DE AGUA DULCE
Objetivos
- Estudiar la diversidad de microorganismos que habitan en una charca de agua dulce.
- Practicar el manejo del microscopio óptico.
Material
-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
Método
- Toma una pequeña gota de agua y colócala en el porta.
- Identifica los microorganismos con ayuda de los dibujos o las guías que se te faciliten.
Resultados
- Dibuja en los círculos los microorganismos que observas. Fíjate si son unicelulares o
pluricelulares, si son algas, protozoos o metazoos, y trata de identificarlos con ayuda de
la clave o de los dibujos.
Nombre:.................................
Tipo:........................................
Aumentos: ............ x ...........
Nombre:.................................
Tipo:........................................
Aumentos: ............ x ...........
Nombre:.................................
Tipo:........................................
Aumentos: ............ x ...........
Nombre:.................................
Tipo:........................................
Aumentos: ............ x ...........

112
OBSERVACIÓN DE CÉLULAS
ANIMALES Y VEGETALES
Objetivos
- Estudiar la capacidad del microscopio óptico para mostrar estructuras celulares.
- Observar células animales y vegetales al microscopio óptico y compararlas.
Material
-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
Método
A) Epidermis de cebolla
- Toma un trozo de un bulbo de cebolla y, con una lanceta y una pinza, separa una pequeña
muestra de epidermis de la cara interna (basta con un trozo muy pequeño).
- Extiende la muestra sobre el porta lo mejor que puedas.
metileno sobre la muestra, con cuidado para que no se derrame.
- Espera dos minutos mientras penetra el colorante en las células y coloca el cubre.
- Si hay exceso de colorante, absórbelo con un trozo de papel secante por encima de la
preparación.
- Observa al microscopio óptico.

113
B) Epitelio bucal
- Usando una espátula rasca cuidadosamente un poco del revestimiento interior del carrillo.
- Extiende la muestra extraída sobre el porta.
metileno, procurando que no se derrame.
- Espera dos minutos mientras actúa el colorante y coloca el cubre.
- Si es necesario, absorbe el exceso de azul de metileno con un trozo de papel.
- Observa al microscopio.
Resultados
- Dibuja lo observado en cada caso.
Células animales Células vegetales
- ¿Qué diferencias observas entre los dos tipos de células en relación a su forma, tamaño,
posición del núcleo, etc?
- ¿Observas la pared celular y la membrana citoplasmática?. Razona la respuesta.

114
OBSERVACIÓN DE EPIDERMIS VEGETAL
Objetivo
- Observar células epidérmicas de diferentes especies tratando de descubrir sus principales
estructuras y establecer comparaciones entre ellas.
Material
-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
Método
A) Epidermis de cebolla (Allium cepa)
- Toma un trozo de un bulbo de cebolla y, con la ayuda de la pinza, separa una porción de su
“piel” – epidermis- de la cara interna (procura que dicha porción sea pequeña).
- Colócala en un porta junto con una gota de agua y extiéndela con la lanceta lo mejor que
puedas.
- Coloca encima cuidadosamente el cubre, procurando que no se doble la epidermis y que no
queden burbujas.
B) Epidermis de cala y de lirio (Iris sp.) y de cala (Arum sp.)
- Toma una hoja de cala y rásgala con los dedos separando una pequeña muestra de su
epidermis. Procura arrastrar la menor cantidad posible del tejido subyacente de color
verde.
- Colócala en un porta junto con una gota de agua y, con ayuda del bisturí, elimina las partes
verdes. ¡Una pequeña porción de epidermis basta! Extiéndela con la lanceta lo mejor que
puedas.
- Coloca encima cuidadosamente un cubre, procurando que no se doble la epidermis y que no
queden burbujas.
- Repite el proceso con la hoja de lirio, montándola sobre el mismo porta.

115
Resultados
- Dibuja la estructura de la epidermis de las tres especies.
Lirio Cebolla Cala
- Dibuja la estructura de un estoma al microscopio óptico.
- ¿Qué es un estoma? ¿Qué función tiene?
- ¿Existen cloroplastos en los estomas?

116
ÓSMOSIS EN CÉLULAS VEGETALES
Objetivo
- Observar fenómenos de ósmosis en células vegetales.
Material
-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
Método
- Rasga lentamente un pétalo de Camelia japonica de manera que puedas obtener un pequeño
fragmento de su epidermis, procurando que no arrastre mucho tejido subepidérmico
(dificultaría la observación).
- Extiende la muestra sobre un porta y elimina el exceso con el bisturí si es necesario.
Añade una gota de agua corriente y coloca el cubre.
- Toma otra muestra de epidermis y construye otra preparación similar a la anterior, pero
colocando una gota de disolución salina en lugar de agua corriente.
- En esta última preparación, levanta un poco el cubre y deja escurrir una o dos gotas de
agua destilada hacia la muestra. Después coloca de nuevo el cubre y observa al microscopio
unos minutos.
- Interpreta y dibuja lo que observas.
Resultados
- Interpreta y dibuja tus observaciones.

117
OBSERVACIÓN DE MITOSIS EN RAÍZ DE CEBOLLA
Objetivo
- Observar y reconocer las diferentes fases de la mitosis.
Material
-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
Método
- Corta con las tijeras el ápice de una raíz de cebolla (unos tres milímetros) y colócalas en
un vidrio de reloj.
- Añade unas gotas de orceína A de forma que el ápice quede bien cubierto y calienta
suavemente a la llama hasta que se desprendan vapores. Evita la ebullición de la orceína
y procura que el ápice de raíz no se quede seco.
- Retira de la llama y mantén el ápice sumergido en el colorante (orceína A) durante 10
minutos.
- Coloca la raicilla sobre un portaobjetos, añade una gota de orceína B y espera dos o tres
minutos.
- Coloca un cubreobjetos y realiza un “splash” presionando suavemente con el dedo.
- Observa al microscopio, colocando 400 aumentos como mínimo.
Técnica del splash:
Consiste en presionar suavemente con el dedo sobre la preparación para extender la masa
celular. Lo mejor es hacerlo con la preparación “boca abajo”, evitando presionar
directamente sobre el cubre, ya que éste se puede romper. Conviene emplear una tira de
papel para recoger el exceso de colorante.

118
Resultados
- ¿Por qué es necesario hacer un splash para observar al microscopio?
................................................................................................................................................................................
................................................................................................................................................................................
................................................................................................................................................................................
................................................................................................................................................................................
................................................................................................................................................................................
................................................................................................................................................................................
- Haz dibujos de las diferentes fases de la mitosis que hayas observado.
Fase: ........................... Fase:..........................
Fase: ........................... Fase:..........................

119
ESTUDIO DE UN MOHO
Objetivos
- Reconocer el aparato vegetativo y reproductor de los mohos.
- Observar distintas especies de mohos y compararlas.
Material
-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
Método
- Corta un trozo de pimiento o de tomate, deposítalo en una placa de Petri y déjalo fuera de
la nevera durante una semana para que se desarrollen en su superficie distintas especies
de mohos.
- Transcurrido ese tiempo, observa la mohos crecidos colocando la placa a la lupa binocular.
- Con ayuda de las pinzas y de la lanceta, extrae una pequeña cantidad de cada especie y
sitúala en un porta junto con una gota de agua.
Resultados
- Los mohos más frecuentes pertenecen a los géneros Penicillium, Aspergillus y Rhizopus.
¿Puedes identificar la especie a la que pertenece cada uno de los mohos?
- Haz un dibujo de los diferentes mohos que observes y señala en ellos sus distintas partes.
- ¿Cómo se reproducen los mohos?
Especie: Especie: Especie:

120
SIMBIOSIS
Objetivo
- Reconocer dos relaciones de simbiosis: nódulos de leguminosa (plantas-bacterias) y
líquenes (algas-hongos).
Material
-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
Método
- Toma una planta de trébol y colócala bajo la lupa para observar sus raíces.
- Abre uno de los nódulos con ayuda del bisturí y observa su coloración.
- Con ayuda de las pinzas, corta un trozo pequeño de liquen.
- Colócalo entre dos portas con una gota de agua y fricciona uno contra otro para triturar el
liquen.
- Retira el porta superior, añade una gota de agua y coloca el cubre.
- Examina la preparación al microscopio tratando de identificar las algas y las hifas del
hongo.
Resultados
- Dibuja el aspecto general de la planta.
- Dibuja el aspecto general de los nódulos bajo la lupa.

121
- ¿Qué coloración presentan los nódulos? ¿A qué se debe?
- Observa y dibuja el aspecto general del liquen.
- Dibuja lo observado al microscopio identificando los componentes de la simbiosis.

122
EXTRACCIÓN Y SEPARACIÓN DE
PIGMENTOS FOTOSINTÉTICOS
Objetivo
- Extraer los pigmentos fotosintéticos de diferentes vegetales y separarlos mediante la
técnica de cromatografía sobre papel.
Material
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-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
Método
a) Extracción de pigmentos.
- Coloca en el mortero 30 cc de alcohol y una pizca de arena. Tritura los fragmentos
vegetales hasta lograr un líquido de color verde intenso.
- Coloca el papel de filtro sobre el embudo y éste sobre el tubo de ensayo. Filtra el
contenido del mortero.
- Desecha el papel de filtro con su contenido y recoge el filtrado que contendrá los
pigmentos fotosintéticos.
b) Separación de pigmentos.
- Introduce la tira de papel en el tubo de forma que el extremo quede empapado en la
solución de pigmentos.
- Coloca en oscuridad y deja reposar unas horas hasta lograr una buena separación de los
pigmentos.
- Retira la tira de cromatografía y procede a su estudio.
Resultados
- Dibuja en la silueta adjunta las diferentes bandas de color que has obtenido en la tira de
cromatografía e identifica cada pigmento.
Colores Pigmentos

123
- ¿Por qué has empleado alcohol para extraer los pigmentos? ¿Cuáles te parece que se
disuelven mejor?
- ¿Por qué crees que esta técnica recibe el nombre de cromatografía?
- ¿Cuál te parece que es el fundamento de la cromatografía?

124
TINCIÓN DE TEXTILES CON PIGMENTOS
VEGETALES
Objetivo
-Teñir textiles utilizando tintes de origen vegetal.
Material
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-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
Método
A) Tinción con cebolla, azafrán y cáscara de nuez verde
- Prepara tres cristalizadores con agua hasta una altura aproximada de 2 cm.
- En uno de ellos coloca unos trozos de cebolla cortados con su cáscara, en otro el contenido
de un sobre de azafrán y en el tercero unos trozos de cáscara de nuez verde.
- Añade un trozo del tejido textil para teñir en cada cristalizador.
- Hazlos hervir unos 30 minutos.
- Extrae el tejido con ayuda de las pinzas, aclara en agua y déjalo secar.
B) Tinción con clorofila
- Toma un pequeño puñado de hierba y pícala en el mortero con las tijeras.
- Añade al mortero 15 ml de alcohol y una cucharadita de arena.
- Tritura la hierba hasta obtener un líquido verde oscuro.
- Filtra el machacado sobre un vaso de precipitados.
- Introduce en el filtrado de clorofila el tejido a teñir y un macarrón.
- Calienta el vaso al baño María durante 30 minutos.
- Extrae el tejido y el macarrón con ayuda de las pinzas, aclara en agua y déjalos secar.
Resultados
Colorante Producto teñido Color

125
FACTORES QUE CONDICIONAN LA FOTOSÍNTESIS
Objetivo
- Identificación de dos factores que afectan al proceso de fotosíntesis en vegetales.
Material
-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
Método
- Con un trozo de papel de aluminio y un clip, tapa parcialmente una hoja de una planta viva
de geranio, de forma que no incida la luz en esa zona durante dos o tres días.
- Dibuja la silueta de la hoja de geranio con el papel de aluminio en el recuadro A1. Dibuja la
silueta de la hoja variegada en el recuadro B1 y sombrea la zona blanca de la hoja.
- Retira el aluminio y sumerge las dos hojas en el agua hirviendo durante unos 5 minutos.
- Coloca aproximadamente 20 ml de alcohol en el vaso de precipitados.
- Con ayuda de las pinzas, saca las hojas del agua, pásalas al alcohol y coloca el vaso al baño
María hasta que se decoloren (entre 10 y 15 minutos).
- Retira las hojas del alcohol, pásalas por agua fría y sumérgelas en el lugol de la placa de
Petri durante unos minutos.
- Dibuja en el recuadro A2 la silueta del geranio y en el B2 la silueta de la hoja variegada.
Sombrea en ambos casos las zonas teñidas por el lugol.

126
Resultados
A1 B1
A2 B2
Responde a las cuestiones:
- ¿Por qué la tinción con lugol permite revelar las zonas donde se ha producido fotosíntesis?
- Observa lo ocurrido con la hoja de geranio y explica el resultado. ¿Qué factor es el que ha
condicionado la fotosíntesis y cómo lo ha hecho?
- Observa lo ocurrido con la hoja variegada y explica el resultado ¿Qué factor es el que ha
condicionado la fotosíntesis en este caso y cómo lo ha hecho?

127
OBSERVACIÓN DE ANTERAS Y
GERMINACIÓN DEL GRANO DE POLEN
Objetivo
- Estudiar el androceo mediante la observación de anteras y la germinación del grano de
polen.
Material
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-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
Método
- Toma, con el cuentagotas, algunas anteras del vaso de precipitados.
- Sitúalas en un porta.
- Coloca un cubre y obsérvalas al microscopio.
- Coloca con la pipeta 2 ml de disolución de sacarosa al 5 % en el tubo nº 1, 2 ml de
disolución de sacarosa al 10 % en el tubo nº 2 y 2 ml de disolución de sacarosa al 15 % en
el tubo nº 3.
- Toma con el pincel una pequeña cantidad de polen de una flor de camelia e introdúcelo en
los tubos que contienen las diferentes disoluciones de sacarosa.
- Al final de la clase toma con el cuentagotas una pequeña cantidad de cada tubo y colócala
en un porta con un cubre.
- Obsérvala al microscopio. Puedes repetir la observación a las 24 horas.
Resultados
- ¿Qué forma tienen las anteras? ¿Qué aspecto
tienen las células que están en su interior?
- Haz un dibujo de las anteras vistas al microscopio
e identifica las estructuras.

128
- Haz un dibujo de los granos de polen y de la germinación de los mismos identificando las
estructuras observadas.
- ¿Por qué germina el polen en presencia de sacarosa? ¿Tiene esto algo que ver con lo que
ocurre en la naturaleza?
- ¿Qué diferencias observas en la germinación de los granos de polen de las distintas
disoluciones de sacarosa?

129
EL DESARROLLO DEL RENACUAJO
Objetivos
- Observar las principales modificaciones que se producen durante la metamorfosis.
- Estudiar el efecto de la hormona tiroidea sobre el desarrollo.
Material
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-......................................................... -........................................................ -.................................................
-......................................................... -........................................................ -.................................................
Método
- Prepara 3 cristalizadores con agua de charca y unos renacuajos (puedes añadir algunas
plantas y unas piedrecitas).
- El cristalizador número 1 se usará como testigo para poder realizar el control de la
experiencia.
- Añade al cristalizador número 2 media pastilla de tiroxina y al cristalizador número 3 una
pastilla entera.
- Echa en los tres cristalizadores algo de comida para los renacuajos (trocitos de pan, de
pollo crudo, pienso para perros, etc).
- Coloca los cristalizadores a temperatura ambiente.
Para garantizar la continuidad y el seguimiento de la experiencia debes renovar el medio cada
semana y aprovechar ese momento para realizar tus observaciones. Procede de la siguiente
manera:
- Con la ayuda del vaso de precipitados correspondiente, captura los renacuajos de cada
cristalizador.
- Renueva el agua de los 3 cristalizadores con agua de charca fresca. Añade al cristalizador
número 2 la media pastilla de tiroxina y al número 3 la pastilla entera.
- Antes de devolver a los renacuajos de cada grupo del vaso de precipitados al cristalizador
que le corresponde, colócalos (uno de cada vez) en una placa de Petri con un poco de agua;
así podrás medirlos y realizar las observaciones cómodamente.
Resultados
- Apunta en la siguiente tabla el seguimiento de la experiencia anotando las observaciones
que realices, los momentos más importantes, los acontecimientos más relevantes…
acompañando con dibujos.
- A la vista de los resultados obtenidos, ¿cuáles son las conclusiones que se pueden extraer?

130
Fecha de
observación
Cristalizador Aspecto externo Características
Nº 1
control
Nº 2
½ tiroxina
Nº 3
1 tiroxina
Nº 1
control
Nº 2
½ tiroxina
Nº 3
1 tiroxina

131
ESTUDIO Y DISECCIÓN DE UN ERIZO DE MAR
Objetivos
- Conocer la anatomía de un equinodermo.
Material
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-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
Método
A) Organización externa del erizo de mar
- Orienta el erizo de forma que la parte más plana quede hacia abajo: este es el polo oral
donde se encuentra la boca. El opuesto en la parte superior, es el polo aboral donde está
el ano.
- A continuación quítale las púas al erizo y lávalo con agua para examinar el esqueleto. Fíjate
en la forma, disposición y características que presentan las placas.
- Observa de nuevo la cara aboral, alrededor del ano se encuentran cinco placas; una de ellas
es mayor que las demás y está perforada como una criba: es la placa madrepórica. Trata
de identificarla con ayuda de una lupa.
- Coloca ahora el erizo apoyado sobre el ano. Observa el polo oral fijándote en los dientes
con los que se inicia el aparato mandibular (están unidos a otras piezas esqueléticas
internas, formando en su conjunto la Linterna de Aristóteles).
Resultados
- ¿En qué zona se insertan las púas?
- ¿En qué zonas y cómo se encuentran distribuidos los pies ambulacrales?
- ¿Cuántos dientes aparecen en la boca?

132
B) Estudio de la anatomía interna
- Con ayuda de una navaja y con mucho cuidado para evitar roturas, abre el erizo por la zona
ecuatorial y separa las dos mitades. En la mitad que corresponde a la cara del ano verás un
tubito fino, oscuro, que parte de la placa madrepórica: es el canal hidróforo. Observarás
también cinco masas de aspecto esponjoso, anaranjadas: son las gónadas. El tubo más
grueso que termina en el ano es el canal intestinal. Si no se ha roto el canal intestinal,
sigue su curso en la mitad que corresponde a la boca y observa como se inserta en la
Linterna de Aristóteles.
Resultados
- Haz un dibujo y pon nombres a todas las partes observadas.
- Fíjate ahora en la pared interna del caparazón de las dos caras. En cinco zonas aparecen
unas membranas de color marrón y aspecto húmedo. ¿Sabes cómo se llaman y qué misión
tienen?
- Procede ahora a vaciar el erizo para observar desde el interior las placas esqueléticas.
¿Qué forma tienen las placas?
- ¿En qué se diferencian las placas de las zonas ambulacrales de aquellas de las zonas
interambulacrales?

133
FECUNDACIÓN Y DESARROLLO EMBRIONARIO EN
ERIZO DE MAR
Objetivos
- Estudiar el aparato reproductor de los erizos de mar y la morfología de los gametos.
- Provocar y analizar la fecundación in vitro del erizo de mar.
- Observar su desarrollo embrionario.
Material
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-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
Método
- Corta los erizos por la zona ecuatorial, separa las dos mitades y observa las gónadas: si
son de color naranja fuerte, son hembras; si son de color amarillo, son machos. Fíjate en la
colocación de las gónadas en el interior del erizo.
- Extrae un trozo de ovario y tritúralo dentro del pocillo marcado con el símbolo femenino,
para liberar los óvulos.
- Deposita a continuación una gota de la suspensión de óvulos en un porta excavado. Coloca el
cubre y observa los gametos al microscopio.
- Repite el proceso con la gónada masculina y observa los gametos al microscopio.
- IMPORTANTE: no utilices los mismos utensilios (pocillos, cuentagotas, lanceta...)
para manipular las suspensiones de óvulos y espermatozoides.
- Levanta con cuidado el cubre de la preparación de óvulos. Añade una gota de la suspensión
de espermatozoides y coloca de nuevo el cubre. Observa al microscopio.
- Con el cuentagotas toma una muestra de la suspensión de embriones y deposítala en un
porta excavado, coloca el cubre y observa al microscopio. Intenta localizar diferentes
fases del desarrollo embrionario.

134
Resultados
- ¿Cuántas gónadas observas? Indica su disposición y dibújalas.
- ¿Qué diferencias aprecias entre los gametos en cuanto al tamaño, la forma, la movilidad y
el color?
- ¿Cómo se disponen los gametos masculinos y
femeninos al producirse la fecundación?
¿Observas algún cambio después de algunos
minutos? Dibújalos.
- Dibuja las fases del desarrollo embrionario que hayas localizado.

135
ESTUDIO Y DISECCIÓN DE UN MEJILLÓN
Objetivos
- Estudiar la morfología y anatomía de un molusco.
Material
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-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
A) Estudio de la concha
- Mira la concha con atención. El extremo puntiagudo (umbo) es la parte anterior donde se
sitúa la boca del animal. A partir de aquí y hasta el borde posterior, se observan las
estrías de crecimiento.
- Observa si existe algún animal adherido. En caso afirmativo, trata de identificarlos.
- Vierte una gota de HCl sobre la concha y observa lo que sucede.
- Introduce con cuidado, las tijeras por la abertura anterior de las conchas.
- Corta el músculo aductor posterior y abre las valvas. Separa el manto de la concha con
mucho cuidado y coloca el ejemplar sobre la cubeta para estudiar la concha y el animal por
separado.
Cuestiones
- Haz un dibujo de la concha por su cara externa indicando las partes que reconozcas. Si
existen invertebrados adheridos dibújalos igualmente.
Cara externa

136
- Haz otro dibujo de la cara interior de las valvas. En esta cara han quedado unas huellas. ¿A
qué corresponden esas marcas o impresiones?
B) Estudio anatómico del cuerpo
- Abre los dos lóbulos del manto y sujétalos con alfileres. Observa su coloración.
- A ambos lados de la masa visceral, se observan cuatro láminas (dos a cada lado) de color
pardo oscuro: son las branquias. Extiéndelas con cuidado.
- En el extremo anterior de la masa visceral se encuentra la boca con cuatro palpos labiales.
- Debajo de ella está situado el estómago, cruzado por los músculos del pie y, a continuación,
encontrarás el pie y los hilillos del biso.
- Siguiendo hacia la parte posterior verás una zona hinchada de la masa visceral (joroba de
polichinela), rodeada de las gónadas que tienen un color más oscuro que la joroba.
- Los riñones, de forma estriada, están situados a los lados de la masa visceral.
Cuestiones
- En el siguiente dibujo, pon nombre a las partes observadas.
Cara interna

137
C) Observación del epitelio vibrátil
- Corta un trozo de branquia y sitúala en un porta junto con una gota de agua. Coloca un
cubre y observa al microscopio.
Cuestiones
- ¿Cómo es el epitelio que tapiza los filamentos branquiales?
D) Observación de los gametos
- Haz un corte en la zona de las gónadas y frota contra un porta. Coloca el cubre y observa
los gametos al microscopio.
Cuestiones
- Los mejillones son unisexuales, el que has diseccionado ¿Es macho o hembra? ¿Por qué lo
sabes?
- ¿Has observado gametos? ¿Qué características tienen?

138
DISECCIÓN DE UN CORAZÓN DE CERDO
Objetivo
- Conocer la anatomía externa e interna de un corazón.
Material
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-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
A - Estudio de la morfología externa
- Identifica la cara anterior y posterior del corazón. La posterior es la más plana y su parte
inferior más puntiaguda.
- Identifica las aurículas y los ventrículos. Las aurículas están en la parte superior, cada
aurícula está separada de su correspondiente ventrículo por un surco aurículo-ventricular.
En la cara anterior del corazón hay un surco oblicuo que coincide con el tabique interno que
separa los dos ventrículos.
- Observa que todos los vasos sanguíneos están en la parte superior, pero parten de
diferentes puntos. Introduce la sonda por cada uno de ellos y fíjate con qué cavidades
comunican.
Cuestiones
- Pon el nombre de las partes señaladas en el dibujo e identifica cada una de ellas sobre el
corazón que tienes en la bandeja.

139
- ¿Observas diferencia de tamaño y consistencia entre aurículas y ventrículos?
-¿Observas diferencias de grosor y consistencia entre arterias y venas?
-¿A qué cavidades cardiacas llegas si introduces la sonda por la arteria pulmonar, arteria
aorta, venas cavas y venas pulmonares?
B – Estudio de la anatomía interna de los ventrículos
- Introduce las tijeras por la arteria pulmonar y
realiza el corte 1 de la figura (sigue la línea
discontinua dibujada por encima del surco anterior).
- Realiza el corte 2 indicado en la figura, iniciándolo
por la arteria aorta y siguiendo la línea por debajo
del surco anterior.
- Examina el interior de los ventrículos. Localiza,
con ayuda de la sonda, el orificio que comunica
cada una de las aurículas con su correspondiente
ventrículo.
Cuestiones
- En la base de las arterias pulmonar y aorta se observan unos repliegues membranosos con
forma de nido o bolsillo. ¿Cómo se llaman y qué función tienen?
Corte 1
Corte 2

140
- Entre las aurículas y los ventrículos hay unos repliegues membranosos con forma de vela
que se fijan mediante fibras tendinosas a unos pilares carnosos o resaltes musculares del
interior de la pared. ¿Cómo se denominan estos repliegues? ¿Qué función tienen?
- Compara el grosor de la pared de los dos ventrículos. ¿Tiene alguna relación con la función
que desempeñan?
- Pon los nombres de las estructuras señaladas.
C – Estudio de la anatomía interna de las aurículas
- Introduciendo las tijeras por las venas cavas, abre para observar el interior de la aurícula
derecha. Repite el proceso con la aurícula izquierda cortando por las venas pulmonares.
Cuestiones
- Compara el grosor de la pared de las aurículas y de los ventrículos. ¿A qué se debe esta
diferencia?

141
DETERMINACIÓN DEL PORCENTAJE DE AGUA EN LA
MATERIA VIVA
Objetivo
- Comprobar que el agua forma parte de la materia viva.
Material
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-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
Método
- Toma un trozo de papel de aluminio. Pésalo y anota el resultado en la tabla.
- Coloca sobre este papel un órgano (varias semillas, trozo de carne...). Pésalo y anota el
resultado en la casilla correspondiente.
- Repite las operaciones con los restantes órganos.
- Sitúa todos los órganos sobre la placa de Petri, convenientemente rotulada con el nombre
del grupo e introdúcela en la estufa de desecación.
- Después de varios días, saca la placa, pesa de nuevo cada órgano y anota los resultados.
- Determina el contenido en agua de la siguiente manera:
Peso del material fresco: X
Peso del material seco: Y
Cantidad de agua perdida en la desecación: X – Y = Z
% de agua de la muestra: Z * 100
X
Resultados
Órgano Peso papel Peso papel
cargado
Peso material
fresco (X)
Peso material
seco (Y)
% de agua en
la muestra

142
RECONOCIMIENTO DE LA PRESENCIA DE UNA SAL
MINERAL: CARBONATO CÁLCICO
Objetivo
- Poner de manifiesto la presencia de sales minerales (CaCO3) en la materia viva.
Material
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-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
Método
- Añade unas gotas de ácido clorhídrico a cada una de las muestras situadas en la bandeja.
- Anota los resultados obtenidos.
Resultados
- ¿Podrías explicar por qué se produce un burbujeo al añadir HCl a algunos órganos?

143
RECONOCIMIENTO DE AZÚCARES REDUCTORES
Objetivo
- Identificar la presencia de azúcares reductores mediante la reacción de Fehling.
Material
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-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
Método
- Coloca, con la pipeta, 3 ml de disolución de glucosa, 3 ml de zumo de uva y 3 ml de
disolución de sacarosa a los tubos 1, 2 y 3 respectivamente.
- Añade a cada tubo 1 ml de Fehling A y 1 ml de Fehling B (coge las soluciones con pipetas
distintas).
- Calienta los tubos de ensayo al baño María durante unos minutos hasta que observes
coloración rojiza en alguno de ellos. Retira los tubos y anota los resultados en la tabla.
Resultados
1
2
3

144
RECONOCIMIENTO DE LA PRESENCIA DE UN
POLISACÁRIDO: ALMIDÓN
Objetivo
- Reconocer la presencia de almidón mediante solución yodo-yodurada de Lugol.
Material
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-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
Método
- Echa, con la pipeta, 2 ml. de agua en el tubo nº1 y 2 ml. de solución de almidón en el tubo
nº2.
- Añade a cada uno de ellos una o dos gotas de Lugol.
- Añade asimismo una o dos gotas de Lugol a cada uno de los órganos colocados en la placa
de Petri.
- Anota los resultados y extrae conclusiones.
Resultados
Tubo nº/ órgano Resultado Conclusión

145
RECONOCIMIENTO DE LÍPIDOS
Objetivos
- Comprobar la solubilidad de los lípidos en diferentes solventes.
- Reconocer la presencia de lípidos mediante coloración con Sudan III.
Material
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-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
Método
- Coloca 1 ml de aceite en cada uno de los tubos.
- Añade 1 ml de éter, 1 ml de cloroformo y 1 ml de agua a los tubos 1, 2 y 3 respectivamente.
- Agita vigorosamente los tubos.
B) Reconocimiento de los lípidos
- Coloca en la placa Petri un trozo de tocino, otro de queso y otro de patata.
- Baña cada uno de los trozos anteriores con una gotas de Sudán III.
- Añade unas gotas de Sudán III al tubo nº 3.
Resultados
Tubo nº Contenido Resultados
1
2
3
- ¿Por qué razón el aceite se disuelve en unos solventes y en otros no?

146
B) Reconocimiento de los lípidos (tinción con Sudán III)
Aceite
Tocino
Queso
Patata

147
RECONOCIMIENTO DE PROTEÍNAS
Objetivo
- Reconocer la presencia de proteínas mediante la reacción de Biuret.
Material
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-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
Método
- Añade, con la pipeta, 2 ml de clara de huevo diluida, 2 ml de jugo de carne y 2 ml de
disolución de aminoácido a los tubos 1, 2 y 3 respectivamente.
- Añade en cada uno de los tubos 2 ml de hidróxido sódico (NaOH) y a continuación unas
gotas de sulfato cúprico (CuSO4), agitando para que se mezcle bien.
Resultados
Tubo nº Contenido Resultado
1
2
3
- ¿Cómo explicas los resultados obtenidos en el tubo nº 3?

148
IDENTIFICACIÓN DE BIOMOLÉCULAS
EN SOLUCIONES PROBLEMA
Objetivo
- Reconocer la presencia de almidón, azúcares reductores, proteínas y lípidos mediante
técnicas de análisis bioquímico en dos soluciones problema.
Material
-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
Método
- Toma los tubos identificados como X1, X2, X3, X4. Añade a cada uno de ellos 2 ml de la
solución problema “X”.
- Toma los tubos identificados como Y1, Y2, Y3, Y4. Añade a cada uno de ellos 2 ml de la
solución problema “Y”.
- Con los tubos X1 e Y1 realiza la prueba del Lugol. Observa lo que sucede y anota los
- Con los tubos X2 e Y2 realiza la reacción de Fehling. Observa lo que sucede y anota los
- Con los tubos X3 e Y3 realiza la prueba de Biuret. Observa lo que sucede y anota los
- Con los tubos X4 e Y4 realiza la prueba del Sudán III. Observa lo que sucede y anota los
Resultados
X1
X2
X3
X4

149
Y1
Y2
Y3
Y4

150
ACTIVIDAD ENZIMÁTICA DE LA CATALASA
Objetivo
- Comprobar experimentalmente la actividad enzimática de la catalasa y el efecto de la
temperatura sobre la actividad del enzima.
Material
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-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
Método
- Toma un trozo de órgano vegetal y otro de un órgano animal e introdúcelos en agua
hirviendo durante 15 minutos.
- Toma otros dos trozos de los mismos órganos e introduce cada uno de ellos en los tubos
de ensayo 1 y 2 respectivamente.
- Saca los trozos hervidos con ayuda de una pinza (¡no los toques con los dedos!) y colócalos
en los tubos de ensayo 3 y 4.
Resultados
Órgano Tubo Resultado Conclusiones
1 (fresco)
3 (hervido)
2 (fresco)
4 (hervido)
- ¿Sabrías decir ahora por qué se desprenden burbujas al poner H2O2 sobre una herida?
- ¿Tiene esto algo que ver con la acción desinfectante del H2O2?
- Cita otro factor que pueda afectar a la actividad enzimática y diseña una experiencia para
comprobarlo.

151
ACCIÓN DIGESTIVA DE LA AMILASA DE LA SALIVA
SOBRE EL ALMIDÓN
Objetivo
- Comprobar experimentalmente la acción digestiva de la amilasa de la saliva sobre el
almidón.
Material
-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
Método
- Echa 1 ml de disolución de almidón a cada uno de los cuatro tubos.
- En el tubo 1 añade 3 ó 4 gotas de Lugol y anota el resultado.
- En el tubo 2 añade 1 ml de Fehling A y 1 ml de Fehling B. Calienta al baño maría durante 1
minuto y anota el resultado.
- En el tubo 3 añade una cierta cantidad de saliva (la máxima posible); mezcla bien con la
disolución de almidón e introduce el tubo en el baño maría durante un minuto. Añade unas
gotas de Lugol y anota el resultado.
- Procede con el tubo 4 como en el caso anterior pero realiza la prueba de Fehling en vez de
la del Lugol.
Resultados
Tubo nº Contenido Resultados Conclusiones
1
2
3
4

152
ELABORACIÓN DE JABONES
Objetivo
- Elaboración de jabón a partir de productos de origen vegetal.
Material
-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
Método
- Vierte 21 ml de agua en un vaso de precipitados.
- Pesa 8,4 g de hidróxido sódico y con cuidado añádelo, poco a poco al agua, removiendo
hasta la disolución completa de la sosa. Procede con extrema precaución evitando
salpicar o inhalar los vapores que se desprenden pues son irritantes.
- Pesa 62,5 g de aceite y caliéntalo ligeramente.
- Añade la solución de hidróxido sódico al aceite calentado. Viértela con cuidado dejándola
resbalar por la pared del recipiente y remueve constantemente, siempre en la misma
dirección hasta que espese la mezcla. Tardará, al menos, veinte minutos.
- Cuando esté lo suficientemente espesa (se sostiene en pie el agitador usado para remover)
añade unas gotas de esencia, unas gotas del colorante elegido y mézclalo bien.
- Rellena los moldes y déjalo enfriar una semana como mínimo.
Resultados
- ¿Por qué se calienta el vaso cuando disuelves el hidróxido sódico en el agua?
- ¿Cómo se denomina la reacción que se produce entre el hidróxido sódico y el aceite?
Explica en qué consiste.

153
ESTUDIO DE LA CRISTALIZACIÓN DE SALES
Objetivos
- Observar el proceso de formación de cristales.
- Comprobar la influencia del factor tiempo en la formación de cristales bien desarrollados.
Material
-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
Método
A) Cristalización de nitrato potásico (KNO3)
- Calienta la disolución de nitrato potásico, sin llegar a ebullición.
- Una vez caliente introduce un portaobjetos y sácalo.
- Observa cómo crecen cristales sobre la superficie del porta a medida que se evapora la
disolución de nitrato potásico.
B) Cristalización de cloruro de sodio (NaCl) y sulfato de cobre (CuSO4)
B.1 Cristalización rápida.
- Toma una pequeña cantidad de disolución saturada de cloruro sódico (unos 5 ml) y
deposítala en un vidrio de reloj.
- Sujeta el vidrio de reloj con las pinzas de madera y calienta a la llama de manera que se
vaya evaporando el disolvente lentamente. Retira cuando aún quede algo de líquido.
- Repite todo el procedimiento con la disolución de sulfato de cobre y observa los cristales
que se obtienen ahora.
B.2 Cristalización lenta
- Vierte cada una de las disoluciones (cloruro sódico y sulfato de cobre) en sendas placas de
Petri hasta la altura aproximada de 1 cm y deja evaporar a temperatura ambiente.
- Observa los resultados a la semana siguiente y compáralos con los obtenidos por el método
anterior.

154
Resultados
- Dibuja los cristales que has obtenido de cloruro sódico y sulfato de cobre.
Cloruro sódico Sulfato de cobre
- ¿Qué diferencias hay entre los cristales obtenidos rápidamente por calentamiento y los
obtenidos lentamente por evaporación? ¿Por qué?
- ¿Qué condiciones se deben dar para que se formen cristales grandes y regulares?

155
LAS PROPIEDADES DE LOS MINERALES
Objetivo
- Estudiar las propiedades de los minerales.
Material
-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
Magnetismo
Es la propiedad que tienen algunos minerales de ser atraídos por un imán.
A medida que realices la práctica, deberás ir comprobando si alguno de los minerales de las
bandejas es magnético. Anótalo.
................................................................................................................................................................................
Bandeja nº 1. Dureza
Es la resistencia que opone la superficie de un mineral a ser ................................................................
Los minerales muy blandos se rayan con ..................................................... Los minerales muy duros
rayan al .................................................
Fíjate en los tres minerales que aparecen en la bandeja; son calcita, cuarzo y yeso.
La calcita tiene una dureza media ya que ....................................................................................................
El cuarzo es un mineral duro pues .................................................................................................................
El yeso es un mineral blando porque .............................................................................................................
Ordénalos de menor a mayor dureza:............................................................................................................
Bandeja nº 2. Exfoliación
Es la tendencia que tiene un mineral a ........................................ con facilidad en determinadas
.................................... cuando se le golpea.
Fíjate en los minerales que tienes en la bandeja; son mica, calcita y cuarzo.
¿Te parece que alguno de ellos tiene exfoliación? ¿Cuál o cuáles? ¿Por qué?
Nombre del mineral Exfoliación ¿Por qué?

156
Bandeja nº 3. Color y raya
El color de un mineral depende de la luz que .......................................... su superficie.
La raya es el color de un mineral cuando está finamente pulverizado. Para conocer el color de
la raya se frota el mineral contra una placa de porcelana, que es un material muy duro que va a
pulverizar la mayoría de los minerales cuando sean frotados en ella. Algunas veces el color de
un mineral no coincide con el de la raya.
Fíjate en los minerales de la bandeja. Anota su nombre y el color de cada uno en la tabla.
Comprueba el color de la raya y anótalo.
Nombre del mineral Color Raya
Bandeja nº 4. Brillo
El brillo es el aspecto que ofrece la superficie de un mineral cuando ..................................... la luz.
Observa los minerales de la bandeja; anota sus nombres y el brillo.
Nombre del mineral Brillo
Bandeja nº 5. Diafanidad
Es la propiedad que tienen algunos minerales de dejar pasar ................................................................
Fíjate en los minerales de la bandeja. ¿Hay alguno transparente? ¿Y translúcido? ¿Y opaco?
Nombre del mineral Diafanidad
Bandeja nº 6. Densidad
Es la relación que existe entre ....................................... de un mineral y .................................................
Fíjate en los minerales de la bandeja. Tienen, aproximadamente, el mismo volumen. ¿Te parece
que pesan lo mismo? Trata de ordenarlos de menor a mayor densidad.

157
ESTUDIO DE LAS ROCAS
Objetivo
- Estudiar las características de las rocas relacionándolas con su origen.
Método
- Disponemos de seis bandejas en cada una de las cuales estudiaremos características de
distintos ejemplares de rocas.
- Ocúpate de la bandeja que te corresponde y cuando termines, dirígete a la bandeja
siguiente hasta completarlas todas.
En la bandeja tienes tres rocas metamórficas: pizarra, cuarcita y mármol.
- ¿Cuáles se han formado por metamorfismo térmico? ¿Y por metamorfismo dinamotérmico?
¿Por qué lo sabes?
- Fíjate en la pizarra. ¿Tiene esquistosidad?
- ¿Observas fósiles o minerales en la superficie de la pizarra?
- ¿Cómo distinguirías la cuarcita del mármol? (Ayúdate utilizando HCl, vidrio...).
Conglomerado
- Describe el aspecto de esta roca con la ayuda de un dibujo.
- ¿Es una pudinga o una brecha? ¿Por qué lo sabes?
- ¿Qué indica esto respecto a su proceso de formación?
- ¿Cuál es la naturaleza de sus componentes? (Ayúdate utilizando HCl, vidrio...).
Arenisca y arcilla
- Compara el aspecto de estas dos rocas ¿Qué diferencias texturales observas entre ellas?
¿A qué son debidas? (Ayúdate utilizando HCl, vidrio...).
Granito
- Trata de identificar los distintos minerales presentes en la roca.

158
Basalto
Escoria volcánica
- ¿Cuál es el origen de los poros que presenta?
Gneis y esquisto micáceo
- ¿Qué tipo de metamorfismo han sufrido estas rocas? ¿Por qué lo sabes?
- ¿Qué diferencias observas entre ellas?
Carbón y caliza
- Establece diferencias y semejanzas entre estas dos rocas.
En la bandeja tienes tres rocas magmáticas: granito rosa, riolita y pumita.
- ¿Qué tipo de textura tiene cada una de estas rocas?
- Relaciona su textura con su proceso de formación.

159
ROCAS Y PROCESOS GEOLÓGICOS EXTERNOS
Objetivos
- Estudiar algunos mecanismos de meteorización y erosión mediante la simulación de los
mismos en el laboratorio.
- Reconocer algunos efectos de la meteorización y la erosión sobre las rocas.
Método
- Disponemos de cinco bandejas en cada una de las cuales estudiaremos un proceso geológico
externo.
- La bandeja nº1 la abordaremos todos los grupos a la vez y en primer lugar, dirigidos por el
profesor.
- A continuación, ocúpate de la bandeja que te corresponde y cuando termines, dirígete a la
siguiente, hasta completarlas todas.
Bandeja nº 1
En la bandeja tienes rocas del subsuelo (arenisca y gneis) de diferentes zonas.
- Pesa en la balanza las muestras y anota el resultado.
- Sumerge las rocas en agua y espera hasta el final de la hora.
- Vuelve a pesar las rocas y anota el nuevo resultado.
Peso seco Peso húmedo
Arenisca
Gneis
Cuestiones
a) ¿Son las dos rocas igual de porosas? ¿Son igual de permeables?
b) ¿Se podrá formar un acuífero en una capa de gneis? ¿Y en una capa de arenisca? Razónalo.
Bandeja nº 2
En la bandeja tienes rocas procedentes del subsuelo de diferentes regiones: una granítica,
otra de conglomerados y otra volcánica.
- Observa cada una de estas muestras y ordénalas de mayor a menor porosidad.
Cuestiones
a) ¿En qué regiones será mayor la tasa de infiltración del agua superficial? Explícalo.
Bandeja nº 3
Algunas sustancias como los gases de la contaminación, mezcladas con el agua de lluvia,
pueden atacar químicamente las rocas y transformarlas.
- Deja caer una gota del "agua" (HCl) del cuentagotas sobre el trozo de roca caliza.
- Observa lo que ocurre y seca la roca con un poco de papel.

160
Cuestiones
a) ¿Qué crees que ha ocurrido en la roca?
b) ¿Existirá en la naturaleza algún fenómeno semejante, aunque más lento, que pueda destruir
la roca caliza? Explícalo.
Bandeja nº 4
En la bandeja tienes cuatro muestras de rocas (granitos y pizarras); dos han permanecido
largo tiempo en la superficie, mientras que las otras dos han sido extraídas de canteras a
profundidad.
- Identifica las dos muestras de pizarra y las dos de granito.
- Separa las que han permanecido en superficie de las que proceden de canteras.
Cuestiones
a) Indica qué diferencias has observado entre las rocas de la superficie y las de las canteras.
b) Explica qué ha podido ocurrir para que se hayan producido estas diferencias entre las rocas
de superficie y las profundas.
Bandeja nº 5
- Sujeta el cristal con una pinza (por un extremo).
- Calienta a la llama del mechero durante un minuto.
- Introdúcelo en el agua y observa lo que ocurre.
- Repite la operación con el mismo cristal cuantas veces puedas y observa lo que ocurre.
Cuestiones
a) Describe lo ocurrido y da una explicación.
b) ¿Existirá en la naturaleza algún fenómeno semejante que de lugar a la disgregación de las
rocas por efecto de la temperatura? Explícalo.

161
INTERPRETACIÓN DEL MAPA TOPOGRÁFICO
Un mapa topográfico es la representación a escala, sobre un plano, de una parte de la
superficie terrestre. La base de su elaboración es la fotografía aérea, complementada con
otros datos tomados directamente en el terreno.
Elementos esenciales del mapa topográfico
1. Cota. Es la altura sobre el nivel del mar de un punto determinado.
2. Curvas de nivel. Son las líneas que unen los puntos que tienen la misma altura respecto al
nivel del mar (la misma cota).
3. Equidistancia. Es la diferencia de cota (altura) entre dos curvas de nivel consecutivas.
4. Escala. Es la relación que existe entre una distancia cualquiera medida sobre el mapa y la
que realmente existe medida en el terreno.
La escala se expresa mediante un cociente A:B, donde A es una dimensión del mapa
(generalmente 1) y B la que corresponde en la realidad. Así por ejemplo, la escala 1 : 50.000
significa que una unidad del mapa equivale a 50.000 unidades en la realidad (por ejemplo, 1 cm
del mapa son 50.000 cm en la realidad, es decir, 500 m). A veces la escala se representa
gráficamente mediante un segmento que indica la relación.
Ejercicios
1. ¿A cuántos km en la realidad equivale 1 cm de un mapa a las escalas indicadas?
E 1:20.000 1 cm mapa = km E 1:500.000 1 cm mapa = km
E 1:100.000 1 cm mapa = km E 1:50.000 1 cm mapa = km
2. A las escalas indicadas, 1 Km en la realidad ¿A cuántos cm del mapa equivale?
E 1:10.000 1 km realidad = cm E 1:200.000 1 Km realidad = cm
E 1:25.000 1 km realidad = cm E 1:50.000 1 Km realidad = cm
3. Decir la escala numérica de las representadas gráficamente mediante los siguientes segmentos:
1 cm
Escala Escala
50 m 10 Km 1 km
Escala Escala
300 m 3 km 120 m
4. Suponiendo que la carretera discurre por terreno llano, ¿a qué distancia está Soto de La Peral?
E 1 : 25.000
Soto
La Peral
Escala
Escala

162
5. ¿Cuál de los dos conjuntos de curvas de nivel
A B
6. Cuál de los dos conjuntos de curvas de nivel
A B
7. En el siguiente mapa ¿Cuál es la ladera de
pendiente más fuerte?
8. ¿Cuál de los dos montes de la figura es el más
alto? Pon las cotas.
9. Señala los dos errores del mapa. 10. Dibuja, con seis curvas de nivel, un monte de
975 m de altitud; equidistancia: 20 m.
11. Señala, mediante flechas, la dirección de la
corriente de cada río.
12. Dibuja, sobre el mapa, por dónde discurriría un
río.

163
ESCALA 1:25.000
Equidistancia: 100 m
1- Pon cota a las curvas de nivel.
2- ¿Verías el pueblo de Paniceros desde Folgueras de Muñalén? ¿Por qué? ¿Desde Paniceros verías la
Oteda? ¿Por qué?
3- En Llaneces de Calleras se proyecta la construcción de una presa en el río Bárcena. ¿Quedaría
inundado el pueblo de Orderías? Indica la zona que quedaría sumergida.
4- ¿Qué longitud tendría el muro de contención de la presa proyectada?

164
EL PERFIL TOPOGRÁFICO
Objetivo
- Levantar perfiles topográficos.
Material
-.................................................. -.................................................. -..................................................
-.................................................. -.................................................. -..................................................
Método
- Traza con el portaminas, sobre el mapa topográfico, una línea que una los puntos A y B.
- En uno de los extremos de la hoja de papel milimetrado coloca un sistema de coordenadas.
En el eje de ordenadas anota las cotas de las curvas de nivel que afectan al perfil que vas
a levantar, suponiendo que la escala es 1:4000.
- Haz coincidir el borde superior de la hoja de papel milimetrado con la línea que has
trazado en el mapa.
- Señala sobre la hoja de papel milimetrado los puntos en los que ésta corta las curvas de
nivel y proyecta estos puntos hasta la cota que les corresponda en el eje de ordenadas.
- Para obtener el perfil une los puntos.
Resultados
- Pega en el recuadro el perfil obtenido.

165

166
EL TIEMPO EN GEOLOGÍA
Objetivos
- Facilitar la comprensión del significado del tiempo en geología.
- Conocer algunos de los hitos más importantes de la historia de nuestro planeta mediante la
consulta de tablas geocronológicas.
Método
De acuerdo con la información que actualmente se posee, la Tierra tiene una edad aproximada
de 4.700 millones de años (m.a.). Desde ese momento en que se inició la formación de la Tierra
hasta nuestros días, han tenido lugar muchos cambios en el planeta. Algunos de esos
acontecimientos así como su situación en el tiempo están reflejados en la tabla de la hoja
adjunta. Vamos a centrar la atención en algunos de ellos.
A partir de los datos de la escala del tiempo geológico calcula, anotando los resultados en la
tabla:
- El tiempo que ha transcurrido (expresa el resultado en m.a.) desde que se registraron los
acontecimientos que figuran en la tabla hasta nuestros días.
- Los días transcurridos desde dichos acontecimientos si concentramos 4.700 m.a. en 365
días.
- Las horas qué habrían transcurrido desde los acontecimientos anteriores, si concentramos
4.700 m.a. en 12 horas.
- Por último representa gráficamente los resultados de la segunda columna en el calendario
geológico y los de la tercera en el reloj geológico.
Resultados
Tiempo transcurrido
Acontecimientos
en m.a. en días en horas
1. Biogénesis
2. Formación de la atmósfera primitiva
3. Fósiles más antiguos incuestionables
4. Proliferación de algas que liberan oxígeno
5. Formación de la capa de ozono
6. Primeras plantas terrestres
7. Apertura del Océano Atlántico
8. Extinción de los dinosaurios
9. Primeros homínidos

167
Calendario geológico
Sitúa en el calendario el día que tubo lugar cada uno de los acontecimientos.
ENERO FEBRERO MARZO
1 2 3 4 5 6 7 1 2 3 4 1 2 3 4
8 9 10 11 12 13 14 5 6 7 8 9 10 11 5 6 7 8 9 10 11
15 16 17 18 19 20 21 12 13 14 15 16 17 18 12 13 14 15 16 17 18
22 23 24 25 26 27 28 19 20 21 22 23 24 25 19 20 21 22 23 24 25
29 30 31 26 27 28 26 27 28 29 30 31
ABRIL MAYO JUNIO
1 1 2 3 4 5 6 1 2 3
2 3 4 5 6 7 8 7 8 9 10 11 12 13 4 5 6 7 8 9 10
9 10 11 12 13 14 15 14 15 16 17 18 19 20 11 12 13 14 15 16 17
16 17 18 19 20 21 22 21 22 23 24 25 26 27 18 19 20 21 22 23 24
23 24 25 26 27 28 29 28 29 30 31 25 26 27 28 29 30
30
JULIO AGOSTO SEPTIEMBRE
1 1 2 3 4 5 1 2
2 3 4 5 6 7 8 6 7 8 9 10 11 12 3 4 5 6 7 8 9
9 10 11 12 13 14 15 13 14 15 16 17 18 19 10 11 12 13 14 15 16
16 17 18 19 20 21 22 20 21 22 23 24 25 26 17 18 19 20 21 22 23
23 24 25 26 27 28 29 27 28 29 30 31 24 25 26 27 28 29 30
30 31
OCTUBRE NOVIEMBRE DICIEMBRE
1 2 3 4 5 6 7 1 2 3 4 1 2 3 4 5
8 9 10 11 12 13 14 5 6 7 8 9 10 11 6 7 8 9 10 11 12
15 16 17 18 19 20 21 12 13 14 15 16 17 18 13 14 15 16 17 18 19
22 23 24 25 26 27 28 19 20 21 22 23 24 25 20 21 22 23 24 25 26
29 30 31 26 27 28 29 30 27 28 29 30 31
Reloj Geológico
Coloca en el reloj cada uno de los acontecimientos estudiados.
12
3
6
9

168
Principales acontecimientos en la historia de la Tierra
MILES
DE
M.A.
ACONTECIMIENTOS
MILES
DE
M.A
ACONTECIMIENTOS
5,0
Acreción de planetesimales en plena
actividad
2,5
4,9 2,4
La proliferación de las algas fotosintéticas libera
oxígeno a la atmósfera
4,8 2,3
4,7 Se forma el planeta Tierra 2,2
4,6 2,1
4,5 2,0
4,4 1,9
4,3 1,8
El oxígeno representa el 0,1 % de la composición
atmosférica
4,2 Formación del océano primitivo 1,7
4,1 1,6
4,0 Se va enfriando la corteza inicial 1,5
3,9 1,4
3,8 Rocas más antiguas conocidas 1,3
3,7 Se forman los núcleos continentales 1,2 Disminuye el contenido de CO2 en la atmósfera
3,6 1,1
3,5 Aparece la vida en la Tierra 1,0
3,4
Se forma la atmósfera primitiva, sin
oxígeno
0,9
3,3 0,8 Empieza a formarse la capa de ozono
3,2 0,7 Los océanos son salados
3,1 0,6
Era de los invertebrados
Los pluricelulares llenan los océanos
3,0 0,5
2,9 Fósiles más antiguos conocidos, algas 0,4
Era de los peces
Primeras plantas terrestres
2,8 0,3
Pangea sigue intacta
Era de los anfibios
2,7 0,2
Era de los reptiles. Rotura de Pangea, se abre el
Atlántico
2,6 Los océanos empiezan a ser salados 0,1
Extinción de los dinosaurios (0,06)
Primeros homínidos (0,002)

169
4– Preparación de algunas mezclas y fórmulas
comunes en las prácticas de laboratorio.

170
SOLUCIONES Y REACTIVOS
Soluciones porcentuales en peso (% en peso)
Pesar el nº de gramos del reactivo en un matraz y aforar con agua a 100 ml.
Soluciones porcentuales en volumen (% en volumen)
Colocar el nº de ml del reactivo en un matraz y aforar con agua a 100 ml.
Soluciones molares
Disolver un nº de gramos de soluto igual a su peso molecular y aforar con agua a 1000 ml para
obtener una disolución 1 M.
Benedit, reactivo de
Usos: identificación de proteínas
• Citrato sódico o potásico ............................173 g
• Carbonato sódico cristalino ........................200 g
• Sulfato de cobre cristalino ........................17,3 g
• Agua destilada...............................................1000 ml
Disolver el carbonato y el citrato en 800 ml de agua calentando ligeramente. Disolver el
sulfato de cobre en 100 ml de agua, añadir esta disolución a la anterior y agitar. Aforar con
agua a 1000 ml.
Bouin
Usos: fijador de uso general en histología vegetal
• Ácido pícrico (disolución saturada)...........75 ml
• Formol..............................................................25 ml
• Ácido acético glacial.....................................5 ml
F.A.A. (formol-aceto-alcohol)
Usos: fijador de uso general en histología animal y vegetal
• Formol..............................................................10 ml
• Agua .................................................................35 ml
• Alcohol de 95-96% .......................................50 ml
Fenolftaleína
Usos: indicador de pH.
• Fenolftaleína..................................................1 g
• Alcohol etílico de 96%.................................50 ml
• Agua ................................................................50 ml
Disolver la fenolftaleína en el alcohol y después añadir el agua.
Griess-Ilosvay, reactivo de
Usos: detección de nitritos.
• Ácido sulfanílico............................................0,5 g
• Agua .................................................................100 ml
Disolver el ácido sulfanílico en el ácido acético caliente, añadir el agua y filtrar. Dura un mes
en frigorífico.

171
Indofenol
Usos: identificación de vitamina C
• Indofenol ........................................................0,1 g
• Agua .................................................................100 ml
Licor de Fehling
Usos: identificación de azúcares reductores
a) Solución Fehling A:
• Sulfato de cobre...........................................34,6 g
• Agua ................................................................500 ml
Disolver el sulfato de cobre en 400 ml de agua y aforar a 500 ml.
b) Solución Fehling B
• Tartrato sódico-potásico ...........................173 g
• Hidróxido de sodio .......................................50 g
• Agua .................................................................500 ml
Disolver el tartrato sódico-potásico (sal de Rochelle) y el hidróxido sódico en 400 ml de agua y
aforar a 500 ml. Dejar reposar durante dos días.
Lugol
Usos: presencia de almidón y tinción Gram
• Yodo .................................................................1 g
• Yoduro potásico.............................................2 g
• 300 ml agua destilada..................................300 ml
Disolver y filtar.
Nessler, reactivo de
Usos: detección de amoniaco
• Yoduro de mercurio......................................5 g
• Yoduro potásico.............................................3,65 g
• Agua .................................................................100 ml
• Hidróxido sódico 3 N...................................100 ml
Disolver las sales en el agua y añadir la disolución de hidróxido sódico 3 N (12 g de NaOH en
100 ml de agua). Conservar en cristal topacio.
Ovoalbúmina, solución de
Disolver clara de huevo (fresca o desecada) en una solución de cloruro sódico al 7,5%
Suero fisiológico
Usos: solución isotónica para la mayoría de los tejidos
• Cloruro sódico................................................0,9 g
Winkler, reactivo de
Usos: determinación del oxígeno disuelto.
• Hidróxido de potasio....................................100 g
• Yoduro de potasio .........................................60 g
• Agua .................................................................200 ml
Disolver removiendo y filtrar si es necesario.

172
COLORANTES
Azul de metileno
Usos: tinciones simples de tejidos animales y vegetales.
• Azul de metileno............................................1 g
• Etanol al 90% .................................................25 ml
• Hidróxido de potasio ....................................0,01 g
• Agua..................................................................100 ml
Disolver el azul de metileno en el etanol y añadir el resto.
Para contraste de flagelos se puede usar una disolución de azul de metileno al 1 % en agua.
Carmín alumínico
Usos: tinción diferencial en vegetales
• Alumbre potásico o amónico .......................3 a 5 g
• Carmín..............................................................1 g
• Formol..............................................................1 ml
• Agua .................................................................100 ml
Disolver el alumbre en el agua y después añadir el carmín calentando la disolución hasta
ebullición durante 15 minutos. Dejar enfriar, filtrar y añadir 1 ml de formol.
Cristal violeta (Violeta de genciana)
Usos: tinción Gram y tinción simple de tejidos vegetales
• Cristal violeta (violeta de genciana)..........1 g
• Agua .................................................................100 ml
Calentar hasta ebullición, filtrar y dejar reposar una semana.
Eosina:
Usos: tinción de tejidos animales y vegetales en general. También para contrastar con otros
colorantes.
• Eosina...............................................................1 g
• Alcohol etílico al 70% ..................................100 ml
Disolver el colorante en el alcohol y filtrar.
Giemsa
Usos: tinción de frotis sanguíneos y protozoos.
• Solución de Giensa........................................10 ml
Es importante que se utilice agua destilada. Mejora la tinción si en lugar de agua destilada se
utiliza la misma cantidad de una disolución preparada a partir de una pastilla comercial de
sales tampón a pH=7,2.
La solución de Giemsa puede adquirirse comercialmente o prepararse del siguiente modo:
• Azur-eosina-azul de metileno.....................0,76 g
• Glicerina..........................................................50 ml
• Metanol absoluto...........................................50 ml
Disolver el polvo de Giemsa (Azur-eosina-azul de metileno) en la glicerina, calentar durante
una hora (mejor 2) al baño María a unos 60 ºC, añadir el metanol y dejarlo reposar una semana
en oscuridad. Filtrar y guardar en frascos muy limpios enjuagados con alcohol.

173
Hematoxilina de Mayer
Usos: tinción de tejidos. Se puede contrastar con eosina.
• Solución madre de hematoxilina................1 ml
• Alumbre de potasio.......................................5 g
• Tymol ...............................................................0,1 g
• Agua .................................................................100 ml
Disolver el alumbre de potasio (sulfato de aluminio-potasio) en 75 ml de agua, añadir 1 ml de
solución madre de hematoxilina y aforar con agua hasta 100 ml. Finalmente añadir el tymol,
para impedir la proliferación de hongos. Dura varios meses.
La solución madre e hematoxilina puede adquirirse comercialmente o prepararse del modo
siguiente:
• Hematoxilina en polvo ..................................10 g
• Alcohol absoluto............................................100 ml
Disolver el polvo de hematoxilina en alcohol caliente, enfriar y dejar envejecer esta disolución
durante un mínimo de 4 semanas. Conservación indefinida.
Orceína
Usos: tinción de cromosomas.
Solución A (Acética y clorhídrica):
• Orceína ...........................................................2 g
• Agua..................................................................55 ml
• Ácido clorhídrico concentrado...................1 ml
Disolver el polvo de orceína en el ácido acético caliente. Enfriar y añadir el agua. Dejar
reposar 48 horas y filtrar. Finalmente añadir 1 ml de ácido clorhídrico.
Solución B (acética):
• Orceína............................................................2 g
• Agua .................................................................55 ml
Disolver el polvo de orceína en el ácido acético caliente. Enfriar y añadir el agua. Dejar
reposar 48 horas y filtrar.
Sugerencia: preparar 200 ml de la solución B y después separar 100 ml de esta para obtener la
solución A al añadir 1 ml de HCl
Rojo neutro (solución 1/10000)
Usos: coloración vital de protozoos y otros organismos.
• Rojo neutro.....................................................0,1 g
• Agua .................................................................1000 ml
Se puede utilizar una disolución 1/5000 diluyendo 0,2 g de rojo neutro en 100 ml de agua, que
mata las células, pero permite coloraciones más intensas.
Safranina
Usos: colorante de contraste en tinción Gram. Tinción de lignina en vegetales
• Safranina ........................................................1 g
• Agua .................................................................100 ml
Disolver y filtrar si es necesario

174
Sudán III:
Usos: tinción de lípidos
• 50 ml. Acetona...............................................50 ml
• 50 ml. Alcohol al 70%...................................50 ml
• Sudán III .......................................................Hasta saturación.
Disolver y filtrar.
Verde brillante
Usos: tinción diferencial de cartílagos y fibras musculares. Observación de esporas.
Para tinción diferencial preparar una disolución saturada de verde brillante en etanol de 90%.
Para observación de esporas preparar una disolución acuosa al 5%
Verde de metilo acético
Usos: tinciones simples y contraste de núcleos.
• Verde de metilo.............................................1 g
• Ácido acético .................................................1 ml
• Alcohol absoluto............................................100 ml
Disolver el verde de metilo en alcohol y añadir el ácido acético.
Verde yodo
Usos: coloración de lignina
• Verde yodo .....................................................1 g
• Agua .................................................................100 ml
Disolver y filtrar si es necesario.
MEDIOS DE CULTIVO
Agar nutritivo
Usos: cultivo de microorganismos, algas unicelulares y hongos
• Peptona............................................................15 g
• Cloruro sódico................................................5 g
• Agar .................................................................12 g
• Glucosa ............................................................10 g
Disolver calentando suavemente y después esterilizar al microondas durante 5 minutos o
hervir durante 15 minutos como mínimo (esterilización parcial).
Medio de cultivo para amebas
• Cloruro sódico................................................0,1 g
• Cloruro de potasio.........................................0,009 g
• Cloruro de calcio ...........................................0,006 g
Disolver las sales en el agua destilada. Antes de sembrar añadir 5 g de polvo de arroz o de
trigo por cada 250 ml del medio de cultivo y mantener entre 18 y 20 ºC.

175
Medio de cultivo para hongos
• Harina de avena.............................................3 g
• Agar .................................................................2 g
Disolver el harina en agua fría evitando los grumos, añadir el agar, disolverlo y calentar hasta
ebullición.
Papilla nutritiva para Drosophila melanogaster
1º - En un recipiente, preparar:
• Agar .................................................................15 g
• Azúcar .............................................................3 cucharadas
• Agua .................................................................500 ml
• Levadura de panadería (no química)..........20 g
Calentar hasta ebullición, removiendo constantemente para que no se formen grumos.
2º - En otro recipiente, se preparan:
• Harina de maíz...............................................165 g
• Agua .................................................................500 ml
Disolver la harina de maíz en el agua sin formar grumos y añadir todo al primer recipiente,
manteniéndolo en ebullición y removiendo durante 10 minutos.
3º - Retirar del fuego y, en caliente, verter la papilla sobre los tubos de cultivo hasta unos 2
cm de espesor. Tapar los tubos y dejar enfriar.
4ª - Para evitar contaminación por hongos, preparar la siguiente disolución:
• Ácido acético .................................................10 ml
• Agua .................................................................100 ml
• Levadura de panadería.................................20 g
Mezclar el ácido acético y el agua y desleír la levadura. Depositar unas gotas de esta
mezcla en cada tubo de cultivo, por encima de la papilla.

BIBLIOGRAFÍA
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