FOTOSINTESIS 7.pdf

LA FOTOSÍNTESIS 1 Prof. José R. Lissarrague y Pilar Baeza
Patricia Sánchez de Miguel
F O T O S Í N T E S I S
1. INTRODUCCIÓN
La fotosíntesis es la función mediante la cual se producen los carbohidratos, que representan
l
ab
a
s
ed
el
a“
p
r
o
d
u
c
t
i
v
i
d
a
d
”
,
ap
a
r
t
i
r
d
ee
l
l
o
s
s
ep
r
o
d
u
c
i
r
á
n(
e
ns
e
n
t
i
d
oa
mp
l
i
o
)
l
ae
d
i
f
i
c
a
c
i
ó
ny
acumulación de las distintas partes de la planta (estructuras vegetales hasta compuestos aromáticos
de la uva) y el mantenimiento de la planta (energía necesaria para los distintos procesos).
. Los azúcares son la base de todas las cadenas metabólicas
. La fotosíntesis tiene como sustrato fundamental el CO2 y como fuente de energía
para realizar las reacciones de síntesis de los HCH orgánicos a partir del CO2 inorgánico, la
luz.
La planta utiliza energía de la radiación solar para convertirla en energía química para reducir
las moléculas de CO2 y producir HCH. nCO2 + 2cH2O (con luz y clorofila) dan lugar a (CH2O)n + nO2
+ nH2O.
El proceso fotosintético puede separarse en dos reacciones: luminosa y oscura.
a. Luminosa
La energía luminosa, fotones, son capturados por las moléculas de clorofila presente en los
cloroplastos (otros pigmentos, como carotenoides y xantofilas también pueden absorber
energía) y transferida a los fotosistemas. El flujo de electrones, a través de los fotosistemas I
y II da como resultado la formación de ATP y NADPH necesarias para la asimilación de CO2.
Estos electrones, que llegan al fotosistema II dividen la molécula de agua y se produce
oxígeno molecular, como producto de esta reacción.
b. Oscura (PCR o ciclo de Calvin: Photosynthesis Carbon Reduction)
Energía capturada es utilizada para reducir el CO2 a carbohidratos (8 fotones por molécula
de CO2). Utiliza la energía química ATP1
y NADPH. Las reacciones oscuras ocurren solo si
hay suministro de ATP y NADPH, sin embargo, el suministro generado por las reacciones
nocturnas mantiene el PCR muy poco tiempo (pocos segundos) después de poner las
plantas en oscuridad. PCR funciona en estrecha conjunción con las reacciones luminosas.
. El CO2 se incorpora a la Ribulosa fosfato por RuBPC/O (Ribulosa 1.5 bifosfato
carboxilasa/oxígeno), enzima que constituye el 50% de la proteína de los estomas del
cloroplasto.
. La incorporación de CO2 por carboxidación de la ribulosa RuBPC/O da como primeros
productos estables dos moléculas de glicerato 3 fosfato. La vid es una planta C3
. En presencia de ATP da glicerato 1,3P, que se reduce a gliceraldehído 3P en presencia de
NADPH. Esta puede combinarse estando presente DHAP, para formar Fructosa 1,6-P, que
da luego Fructosa G-P bajo la acción de la Fructosa bifosfatasa. Fructosa GP puede ser
utilizada para formar sacarosa, almidón o continuar en el PCR. El Ciclo PCR (Cliclo de
Calvin) se completa cuando Ribulosa 5P AP con ATP forma (en presencia de ribulosa 5P
kinasa) ribulosa -P2 (bifosfato).
1
ATP: Adenosin trifosfato
NADPH: Nicotinamida adenina dinucleótido fosfato
DHAP: Dihidroxi acetona fosfato

. En las plantas C3, 2 de NADPH y 3 ATP se necesitan para la conversión de CO2 en HCH.
Algunas características de plantas C3
Especies típicas de importancia
económica Trigo, cebada, arroz, patatas
% de la flora mundial (nº de especies) 89
Hábitat típico Ampliamente extendido (dominante en p.ej.,
bosques)
Primer producto de fijación de CO2 Glicerato 3 fosfato
Anatomía Si aparece, vaina abultada no verde
Fotorrespiración Más del 40% de fotosíntesis
Punto de compensación de CO2 40 100 l l
-1
CO2 intracelular a la luz (l l
-1
) 200
Densidad estomática 2000 - 3000
Eficiencia en el uso del agua (g CO2
fijado/ kg H2O transpirado)
1 - 3
Índice máximo de crecimiento (g m
-2
d
-1
) 5 - 20
Productividad máxima (t ha
-1
y
-1
) 10 - 30
2. FOTOSÍNTESIS A NIVEL DE HOJA
2.1. INFLUENCIA DE FACTORES FÍSICOS.
2.1.1. LUZ
. Factor más importante
. La radiación útil a la fotosíntesis es aquella que puede ser usada en la fotosíntesis, de forma que la
energía de los fotones incidentes puede ser convertida en energía química (ATP). Se le conoce como
PAR (Radiación Fotosintéticamente Activa) o PFD (densidad del flujo de fotones fotosintéticos) y
está entre longitudes de onda de 400-700 nm.
. En España, el PAR (400-700 nm) puede considerarse en términos generales como un 45% de la
radiación global incidente (350-3000 nm).
. Se puede expresar en términos energéticos (Irradiancia, J m
-2
) y en términos cuánticos (moles de
fotones incidentes por unidad de superficie horizontal y unidad de tiempo, µmol fotones m
-2
s
-1
o µE
m
-2
s
-1
).
. Es absorbida por diferentes pigmentos foliares: clorofilas (a y b), xantofilas, carotenoides y
antocianos.
. De la radiación luminosa incidente sobre la cubierta vegetal las hojas reflejan un poco más del 10%,
transmiten un 9% y absorben el 81% restante. La radiación absorbida por las hojas sigue tres

caminos diferentes, una parte, 20% de la incidente, es emitida en forma de radiación infrarroja, el
60% calentará las hojas y será disipada evaporando agua mediante la transpiración o emitida por
convección dependiendo del contenido hídrico. Los espectros de absorción, reflexión y transmisión
radiactiva de las hojas varían con su espesor, la edad, el contenido hídrico, la morfología de la
superficie y la orientación. Por tanto, solo el 1% de la energía recibida se utiliza en la fotosíntesis
(Champagnol, 1984). La fotosíntesis sólo emplea una mínima parte (1-2%) de la radiación absorbida
y la almacena en los enlaces químicos de los carbohidratos (Gautier, 1987; Matthews, 2004). La
fotosíntesis es un proceso de baja eficiencia en la utilización de la energía solar. La respiración
además reduce la fotosíntesis neta y la saturación luminosa se alcanza a niveles muy bajos respecto
a los que existen en condiciones de buena insolación. Respecto a las respuestas fotosintéticas de la
vid a la iluminación, frecuentemente la saturación empieza a 1/3 de la iluminación máxima, por lo que
algunos la consideran una planta de iluminaciones medias para optimizar su capacidad.
La relación entre la asimilación neta de CO2 y la PFD puede describirse con una hipérbola
rectangular donde distinguimos dos fases: una donde la relación entre fotosíntesis y PFD es
creciente y prácticamente lineal que responde a la eficiencia en la utilización de la luz por los
cloroplastos, y una segunda fase donde la pendiente se hace menor ya que el rendimiento del flujo
de fotones va disminuyendo hasta un punto donde no hay aumento en la fotosíntesis. El comienzo de
la saturación tiende a hacerse patente a partir de 600-800 µmol m
-2
s
-1
. Los puntos característicos de
la curva son:
Is
Amáx
An
(µmol
CO
2
m
-2
s
-1
)
0 300 600 900 1200 1500
PAR (µmol photons m-2
s-1
)
-2
1
4
7
10
13
16
Ic
- El punto de compensación (Ic): valor de PAR en el que no hay asimilación neta, es decir,
las pérdidas de carbono por respiración y la fijación fotosintética se igualan. En vid, los valores varían
entre 9 y 55 µmol m
-2
s
-1
. En los viñedos de los Campos de Prácticas de Agrónomos de Madrid se
han obtenido valores para lira y guyot en Tempranillo/110R de 30 y 31µmol m
-2
s
-1
, respectivamente.
Baeza (1994) obtuvo Ic inferiores en la cara Oeste respecto a la cara Este y en espaldera y cortina
respecto a los obtenidos en los vasos. De esta forma, concluyó que cuanto menor sea la iluminación
interceptada por una cara o un sistema en su conjunto el punto de compensación tiende a ser menor
para compensar o rentabilizar de esta forma la menor luz recibida. Sánchez-de Miguel et al. (2004)
obtuvieron en la misma variedad valores entre 6-15 µmol m
-2
s
-1
no encontrando diferencias entre
hojas de diferente edad y tipo de tallo. Para Cabernet Sauvignon/SO4 (Socorro, 2004) obtuvieron un

rango más amplio de valores, entre 1-27 µmol m
-2
s
-1
.
- El índice de saturación de la luz (Is): el valor de PAR en el que la fotosíntesis neta (Pn) es
máxima (asíntota). Este valor, al igual que Ic varía también entre otros factores con la especie,
variedad, temperatura, edad, orientación y las condiciones del crecimiento. En el caso de la vid
presenta una gran variación, entre 550 y 1500 µmol m
-2
s
-1
. Baeza (1994) con Tempranillo encontró
que la fotosíntesis se atenúa a los 500-700 µmol m
-2
s
-1
, saturándose cerca de los 1200 µmol m
-2
s
-1
.
Sánchez de Miguel et al. (2004) obtuvieron de la ecuación que relaciona A y PAR valores entre 2000-
400 µmol m
-2
s
-1
para diferentes hojas de Tempranillo y de Cabernet Sauvignon con distintos estados
hídricos.
- Rendimiento fotosintético (Φ
) que nos da idea de la efectividad de la planta en el uso de los
fotones para producir materia seca. Russell et al. (1989) detectaron que para la fijación de un mol de
CO2 en plantas C3 son necesarios 8 moles de fotones, lo que supondría un rendimiento cuántico de
0.125 en ausencia de la fotorrespiración (si consideramos la fotofosforilación cíclica son necesarios 9
moles de fotones y el Φsería de 0.112). El valor referenciado para la vid es de 0.0413 (Correia et al.
1990). Sánchez de Miguel et al. (2004) obtuvieron en Tempranillo valores de 0.026-0.042 y en
Cabernet Sauvignon de 0.052-0.023.
- Fotosíntesis máxima o capacidad fotosintética (Pn sat, Amáx, Pmáx). A saturación de luz los
máximos de fotosíntesis según condiciones varían entre 0,4/0,5 - 0,8/1 mg CO2 m
-2
s
-1
(9 µmol CO2
m
-2
s
-1
- 25 µmol CO2 m
-2
s
-1
). En los viñedos de los Campos de Prácticas de Agrónomos de Madrid,
González-Padierna (2003) ha obtenido valores para lira y guyot en Tempranillo/110R de 15 y 16 µmol
m
-2
s
-1
, respectivamente. Sánchez-de-Miguel et al. (2004) obtuvieron valores entre 4.1 y 18.4 µmol m
-
2
s
-1
en Tempranillo y de 3.8-12 µmol m
-2
s
-1
en Cabernet Sauvignon.
Las tasas de fotosíntesis neta en hojas individuales de V. vinifera máximas registradas están
alrededor de 20 µmol m
-2
s
-1
(1 mg m
-2
s
-1
= 22,5 µmol m
-2
s
-1
); en cv. Tempranillo, en la Ribera del
Duero, hemos registrado puntualmente valores próximos a 25 µmol m
-2
s
-1
. Los valores más
comunes, sin embargo, se sitúan entre 7 y 15 µmol m
-2
s
-1
.
. En iluminaciones altas, la fotosíntesis no puede consumir toda la energía absorbida por las clorofilas
con lo que quedaría una energía en exceso almacenada que puede desencadenar reacciones
oxidativas en los centros de reacción del aparato fotosintético. Las plantas se adaptan a las grandes
iluminaciones, reduciendo su potencial fotosintético (fotoinhibición de la fotosíntesis), posiblemente
para paliar efectos anexos (temperatura), así, en tiempo nublado, la fotosíntesis rentabiliza mejor la
iluminación que en un clima continuamente favorable. En último término se puede producir la
destrucción de los pigmentos fotosintéticos o fotooxidación.
Las hojas aclimatadas a la sombra, comparadas con las que se desarrollan a plena iluminación,
tienen menor Amáx, Is, Ic y respiración oscura. Adaptan sus estructuras disminuyendo el espesor de
la cutícula y del mesofilo, su peso por unidad de superficie (peso específico) y la relación parénquima
en empalizada/lagunar. Schultz et al. (1996) indican que las hojas de White Riesling aclimatadas a la
sombra tenían menor An, gs al CO2 y eficiencia de carboxilación. A bajas intensidades, la fotosíntesis
de las hojas adaptadas a la sombra son más eficientes que las aclimatadas a la luz, es decir, tienen
mayor eficiencia cuántica.

Pallioti y Cartechini (2001) estudiaron la fotosíntesis a nivel de hoja según ésta recibiera la
iluminación en el haz o el envés. A baja PFD el haz fija más CO2 que el envés, pero a iluminación de
saturación, el haz y el envés asimilan lo mismo. Cuando el PFD es menor que el punto de saturación,
la iluminación simultanea de ambas aumenta la An (cosa que suele ocurrir cuando la luz que reciben
es difusa).
Pnsat PFDsat PFDc Rd φ
i
Aclimatadas a la luz 8,09 806 60 1,9 0,034
Aclimatadas a la sombra 4,03 332 28 1,06 0,041
*** *** *** *** **
Haz 6 675 b 42 b 0,036 b
Envés 6,07 730 c 65 c 0,026 a
Haz-Envés 6,11 305 a 22 a 0,052 c
ns ** *** ***
Pn: µmol CO2 m
-2
s
-1
, PFDsat y PFDc: µmol fotones m
-2
s
-1
; Rd: mol CO2 m
-2
s
-1
;
φ
i
:
mo
l
C
O
2/mol PFD. Pallioti y
Cartechini (2001) con el cv. Grecheto en maceta.
P
n
s
a
t
y
R
d:
μ
mo
l
C
O
2m-2 s-1
;
P
F
D
P
n
s
a
t
/
2y
P
F
D
c
:
μ
mo
l
p
h
o
t
o
n
s
m-2 s-1 y 
l
:
μ
mo
l
C
O
2μ
mo
l
-1 photons.
Sánchez de Miguel et al.l (2004) con cv. Tempranillo en Madrid.
Las hojas del interior del canopy están la mayor parte sometidas a radiación difusa, pero si hay
suficiente porosidad y por acción del viento pueden recibir radiación directa en cortos periodos de
tiempo (sunflecks). En estudios con varias especies se ha visto que durante flases de luz el
rendimiento cuántico, la eficiencia con la que se usa dicha radiación para la fijación de CO2, es mayor
que en el caso de recibir alta radiación de forma constante (Pearcy et al, 1988). Kriedemann et al.
(1973) observaron también dicho comportamiento en vid. Sin embargo, Poni et al. (1993) con
Sangiovese y Chardonnay en invernadero observaron que bajas radiaciones, entre 10-500 µmol m
-2
s
-1
, interceptadas de forma constante son utilizadas mejor por la hoja que cuando se reciben de
forma intermitente. Las diferencias en el régimen de iluminación de las ráfagas de luz (intensidad de
PAR y duración del golpe de luz) y en las condiciones de sombra previa (intensidad y duración)
pueden ser la causa de los resultados contradictorios.
Sin embargo, las hojas interiores no fotosintetizan a su máxima capacidad, y en algunos casos no
suponen más del 5% de la fotosíntesis global de la cepa.
Smart (1974) comenta la importancia de la radiación directa, ya que de la energía absorbida, solo 1-
2% se transforma en energía química.
En la bibliografía hay muchos balances de CO2, por ejemplo Smart (1974) da una tasa máxima de
fotosíntesis expresada por unidad de superficie de suelo de 0,102 mol m
-2
s
-1
. Los balances de
Pnsat PFDPnsat/2 PFDc 
l Rd
Exterior 18.4 226 15 0.031 -0.70
Interior 5.0 44 6 0.026 -0.33
** ns ns ns ns
EXTERNA
INTERNA
0 300 600 900 1200 1500
PPFD
-2
1
4
7
10
13
16
P
PFD (µmol m-2 s-1)
Pn
(µmol
CO
2
m
-2
s
-1
)
EXTERNA
INTERNA
0 300 600 900 1200 1500
PPFD
-2
1
4
7
10
13
16
P
0 300 600 900 1200 1500
PPFD
-2
1
4
7
10
13
16
P
PFD (µmol m-2 s-1)
Pn
(µmol
CO
2
m
-2
s
-1
)

Schultz (1991) para Chasselas en Suiza aparecen en la tabla adjunta. No obstante, es preciso
apuntar que los valores de tasas de fotosíntesis que desarrolla el área foliar, varían mucho con las
condiciones cuando se comparan los resultados obtenidos por distintos autores.
CO2 fijado (mmol.día
-1
)
Balance de CO2 (sin respiración)
(mmol.día
-1
)
Soleada Sombreada Soleada Sombreada
Inmadura 165 59 139 43
Madura 361 48 352 45
2.1.2. ANHÍDRIDO CARBÓNICO (CO2)
La atmósfera natural 320-360 ppm. La fotosíntesis aumenta hasta 3000 ppm.
La concentración atmosférica de CO2 es insuficiente para que la Pn alcance su máximo valor, por
encima del Is, las reacciones luminosas siguen produciendo ATP y NADPH que las reacciones
oscuras no pueden usar ya que no tienen CO2 disponible para fijar. A iluminación saturante se
necesitaría 2 a 3 veces más de CO2 (Champagnol, 1984).
2.1.3. TEMPERATURA
La temperatura de la hoja depende del balance de energía: energías absorbidas de la radiación solar
y de las radiaciones emitidas por otros cuerpos y energías perdidas por enfriamiento (calor sensible y
calor latente). El resultado de dicho balance es la energía almacenada por la hoja en forma de
productos fotosintéticos y temperatura de la hoja.
La temperatura atmosférica afecta primero por ser la temperatura de referencia hacia la cual la hoja
tiende y segundo por afectar directamente al déficit de presión de vapor (VPD).
Carbonneau et al. (1992) afirman que la temperatura afecta a la fotosíntesis a nivel estomático y
cloroplástico. Por un lado el aumento de la temperatura afecta a la velocidad de las reacciones
metabólicas (Q10), por el otro si la temperatura del aire es elevada se puede producir un
desequilibrio entre el estado hídrico de la hoja y el flujo de transpiración, de manera que si la
demanda evapotranspirativa supera a la absorción por las raíces, los estomas se cierran y se frena el
intercambio gaseoso.
Cada proceso vital está determinado a unos límites de temperatura y a una temperatura óptima de
funcionamiento, de modo que si se sobrepasa disminuye su rendimiento. Los óptimos de la
temperatura foliar para la fotosíntesis presentan ciertas variaciones según sean las condiciones
climáticas y edáficas de la zona a la que se encuentra la planta, según las características genéticas,
las condiciones culturales y las condiciones previas en las que ha tenido lugar el desarrollo foliar. Los
óptimos de temperatura de hoja para fotosíntesis se suelen situar entre 25 y 35ºC (Kriedemann,
1968). Zufferey y Murisier (2000) con Chasselas demostraron que la temperatura afecta de manera
diferente a la fotosíntesis según la edad de la hoja y el momento del ciclo, siendo más baja a medida
que avanzamos en el ciclo por aclimatación a las temperaturas otoñales.
A partir de 30 ºC la inhibición progresiva de la actividad enzimática, el aumento de la fotorrespiración
y de la respiración oscura o el cierre estomático cuando hay déficit hídrico, hace que la fotosíntesis
disminuya rápidamente (Carbonneau et al. 1992; Kliewer y Smart, 1971).
En cuanto al umbral mínimo, el punto de compensación inferior de la temperatura, varía entre 0 y 6ºC
(Zufferey 2000), es decir, por debajo de estas temperaturas la fotosíntesis neta es nula. Los efectos

de las temperaturas bajas son sobre el metabolismo fotosintético, la regulación estomática y sobre la
velocidad de traslocación a través de la limitación de la fuerza de los sumideros y de la carga del
floema.
El óptimo de temperatura y la sensibilidad de la An (también de la respiración) depende en gran
medida del régimen de temperaturas en el que se ha desarrollado la hoja, pues existe una
aclimatación de la hoja. Esta aclimatación es la manifestación de modificaciones morfológicas,
fisiológicas y bioquímicas. Zufferey (2000) indica que la elevación en la temperatura media diaria de
1ºC provoca un aumento de 0.8ºC en la temperatura óptima para la asimilación. También se ha
observado que el óptimo de temperatura para la fotosíntesis se desplaza a medida que aumenta la
intensidad lumínica incidente. Zufferey y Murisier (2000) indican que la forma de la curva A-PAR se
ve afectada por la temperatura de la hoja.
Influencia de la temperatura y de la iluminación sobre la fotosíntesis de hojas de Chasselas.
Figura de la izquierda: aclimatación del óptimo térmico de la fotosíntesis a la temperatura media diaria para
hojas principales adultas (círculos vacíos, LPI > 10) y para hojas de nieto (círculos llenos).
Figura de la derecha: Aclimatación del óptimo térmico de la fotosíntesis a la intensidad lumínica incidente.
Chasselas, Pully. 1997. Zufferey (2000)
Elías y Castellvi (1996) definen como ideal para la fotosíntesis de la vid, temperaturas diurnas
elevadas y nocturnas bajas para reducir las pérdidas por respiración.
2.1.4. HUMEDAD DEL AIRE
La humedad relativa afecta a la fotosíntesis a través de su efecto sobre la apertura estomática. El
óptimo higrométrico es 60-70% (Stoev, 1966). Todo incremento en la HR en todas las temperaturas
tiene un efecto positivo. El efecto negativo de HR bajas se manifiesta en cambio cuando la
alimentación hídrica de la planta es insuficiente. Algunos estudios vieron que incluso en condiciones
de estrés severos, la hoja era capaz de captar el vapor de agua de la atmósfera evitando cierres
estomáticos prematuros. Schultz (1989) y Zufferey (2000) han observado que la fotosíntesis de hojas
principales y secundarias se ve reducida cuando existe un elevado déficit de saturación y la
temperatura foliar supera los 25ºC, en ausencia de déficit hídrico.
Temperatura foliar (ºC)
Fotosíntesis
aparente
(µmol
m
-2
s
-1
)
15
10
5
0

La diferencia de presión de vapor (VPD) entre hoja y atmósfera juega un papel fundamental en la
apertura estomática. Si los estomas estuvieran todo el día abiertos, la evapotranspiración aumentaría
linealmente al tiempo que la demanda evaporativa. Cualquier incremento en VPD incrementa la
transpiración, y cuando aumenta por encima de un
determinado umbral, produce una disminución en gs. La
respuesta de la fotosíntesis al VPD puede ser diferente
a la que presente gs según en qué punto se encuentre
de la curva gs-A.
El descenso de la gs debido a aumentos del VPD se ve
incrementado en casos de condiciones de sequía, ya
que el sistema radicular no se encuentra bien
abastecido de agua. Cuando la planta recibe menos de
lo que evapotranspira, su gs disminuye a medida que
aumenta el VPD (si VPD aumenta de 1 a 3 kPa, la gs
en vides en lisimetros disminuyen un 50% en
tratamientos del 60% de la ETc y un 75% en
tratamientos de kc de 0.2, Williams). Esto es muy
importante teniendo en cuenta que gran parte de los
viñedos españoles se da la concurrencia de contenidos
bajos de humedad del suelo y elevados VPD en los
veranos de cultivos en secano en zonas de clima
mediterráneo, especialmente por la tarde. En ambientes
semiáridos, el VPD y la temperatura están altamente
correlacionadas, la humedad del aire disminuye cuando
la temperatura y las pérdidas de calor latente aumentan. Una temperatura ambiente elevada
ocasiona un alto déficit de saturación del aire y por tanto una importante diferencia de presión de
vapor entre hoja y aire. Por tanto, en ocasiones es difícil reconocer si la disminución de la asimilación
clorofílica es debida al efecto de la temperatura o del déficit de saturación del aire.
2.1.5. DISPONIBILIDAD DE AGUA EN EL SUELO
La fotosíntesis es muy sensible a la disponibilidad de agua. Hay controversia a la hora de definir el
contenido de humedad del suelo a partir del cual se produce una reducción de la fotosíntesis ya que
el estado hídrico de la hoja no sólo depende del contenido en agua del suelo, también de su flujo a
través de la planta, de las condiciones climáticas y factores internos a la hoja, entre otros. La
necesidad de una apertura estomática para el intercambio de gases hace que la ganancia de CO2
para la fotosíntesis vaya acompañada de una pérdida de H2O por transpiración. Los estomas y las
resistencias cuticulares jugarán un papel fundamental en la conservación de agua por parte de la
planta sin comprometer la fotosíntesis. La transpiración necesaria durante la apertura estomática
representa el 99% del agua absorbida (100g de agua por cada gramo de carbono fijado).
Gs (mmol CO2 m-2
s-1
)
A/E
(µmol
mmol
-1
)
A
(µmol
m
-2
s
-1
)
E
(µmol
m
-2
s
-1
)

Williams et al. (1994) encontraron una alta correlación
entre el contenido de agua en el suelo y la
conductancia estomática.
El contenido de agua en el suelo no es suficiente para
definir el estado hídrico de la planta. Dicho estado
hídrico depende de todos aquellos factores que
intervienen en el flujo de absorción- flujo de
transpiración.
Cuando las plantas se encuentran bajo contenidos no
limitantes, el factor limitante de la fotosíntesis son las
reacciones enzimáticas del cloroplasto. En cambio
cuando se encuentra bajo déficit hídrico, el factor
limitante en un primer momento es la resistencia o
cierre estomático y a medida que el déficit de agua en el suelo se hace más intenso van tomando
más importancia los efectos no estomáticos. La disponibilidad hídrica limita la actividad fotosintética,
incluso más que las altas temperaturas. Está generalmente admitido que la asimilación neta máxima
de CO2 se produce en ausencia de estrés hídrico (Baeza, 1994).
La curva que relaciona la tasa de fotosíntesis (A) con la conductancia estomática (gs) muestra que
cuando la gs es elevada, una disminución de la
misma repercute mínimamente en la A; sin
embargo para rangos bajos de gs, una
disminución de esta produce entonces un
decremento importante en la asimilación neta de
carbono, pero siempre comparativamente con la
producida en gs es menor. Esto aumenta la
eficiencia intrínseca del uso del agua. Eficiencia
del agua: Fotosíntesis/transpiración muy variable
La eficiencia del agua (cantidad agua/1g de
M.S.) aumenta con el vigor de la planta (Bravdo
et al., 1972)
.El estado hídrico de los tejidos puede condicionar fotosíntesis. Kriedemann y Smart (1971) observan
que n a partir de -12 o -16 bar empiezan a limitar fotosíntesis. La disminución del potencial no
explica de forma aislada la disminución de fotosíntesis, los cambios en ABA pueden jugar un papel
regulador estomático esencial.
2.1.6. ELEMENTOS MINERALES
Generalmente, contenido en N de las hojas está linealmente relacionado con facilidad de fijación de
CO2 en hojas adultas (más enzimas disponibles en el PCR), hojas jóvenes mucho N, pero aparato
fotosintético no totalmente desarrollado (Williams y Smith, 1985). P parece afectar la capacidad
(Skinner y Malthens, 1990). Fe (Puget, 1971), factor de clorosis férrica disminuye el contenido en
clorofilas, aunque no hay evidencia precisa entre actividad fotosintética y contenido en clorofilas.
Siempre hay relaciones entre contenidos y relaciones de elementos y actividad fotosintética.
0
5
10
15
20
25
0 100 200 300 400
gs (mmol·m-2
·s-1
)
A
(mmol·m
-2
·s
-1
)
Relación no lineal entre A y gs en Tempranillo entre
cuajado y vendimia (1996-98). Cuevas, 2001.
Campo de Prácticas de Agrónomos. Madrid
0
200
400
600
800
10 13 16 19 22 25 28

v (% v/v)
g
s
(mmol·m
-2
·s
-1
)
9 hs - Este
Relación entre el contenido medio de
h
u
m
e
d
a
d
d
e
l
s
u
e
l
o
θ
v y la conductancia
estomática gs a las 9 hs en hojas iluminadas
de Tempranillo (1996-98). Cuevas, 2001.

2.2. INFLUENCIA DE FACTORES BIOLÓGICOS.
2.2.1. LA APERTURA ESTOMÁTICA
Ya hemos dicho que el CO2 que hay en la atmósfera es insuficiente para alcanzar el máximo de
fotosíntesis de la hoja. Además se plantea otro problema que es la difusión del mismo desde la
atmósfera hasta el interior de la hoja y desde aquí a los cloroplastos donde el CO2 queda fijado. En el
camino encuentra diferentes resistencias. Se pueden distinguir unas resistencias en la fase gaseosa
y otras en la fase líquida. En las primeras, la resistencia estomática, o el inverso conductancia
estomática (gs), es la más importante. Las segundas se denominan resistencia del mesófilo, o el
inverso, la conductancia del mesófilo. El CO2 se difunde 10,000 veces más lento en fase líquida que
en fase gaseosa. Generalmente en el interior del estroma hay de un 50-70% de la fracción molar de
CO2 existente en el aire que rodea a la hoja (Von Caemmerer y Evans, 1991). La difusión cuticular es
mínima, por tanto la regulación estomática controla la fotosíntesis.
La vid es hipoestomática (estomas solo en el envés) cuya frecuencia y distribución, depende de
factores genéticos, condiciones ambientales o estado de desarrollo. Como media tiene una densidad
de 170 estomas/mm
2
(150-300 estomas/mm
2
, During, 1980). Además la anatomía de las hojas de vid
es heterobárica: cierres estomáticos no uniformes. Al no ser uniforme
la apertura estomática en toda la superficie de la hoja, tampoco es
uniforme el intercambio gaseoso, es lo que se conoce como
patchiness. Las zonas patchinesess tienen apertura y cierre
individual.
En el funcionamiento de los estomas intervienen mecanismos
fotoactivos, hidroactivos e hidropasivos. Los movimientos estomáticos
dependen de cambios en la presión de turgencia en el interior de las
células oclusivas y de las células epidérmicas adyacentes. La actividad fotosintética y el transporte
activo de solutos son los responsables de las diferentes turgencias. La luz y la concentración de CO2
controlan la apertura estomática en relación con la demanda fotosintética de CO2 por la planta. La luz
y las bajas concentraciones de CO2 intercelular estimulan la apertura estomática. En general, las
hojas de vid tienen totalmente abiertos los estomas con 1/10 del máximo (200 µmol m
-2
s
-1
). En
relación con el suministro de agua, por lo menos dos señales controlan dicha apertura: la VPD y el
ABA. En cuanto al ABA (ácido abcísico), sus cambios diarios juegan un papel esencial en la
regulación estomática. Otros factores que afectan a regulación estomática son la temperatura foliar,
el potasio y el estado hídrico de la planta. En ausencia de limitaciones hídricas, la conductancia
estomática está fuertemente correlacionada con el microclima luminoso y térmico de las hojas. El
óptimo de temperatura para conductancia se suele situar entre 30-32ºC (Kriedemann y Smart, 1971;
Chaves, 1986). Por otro lado, las altas temperaturas al inducir estrés reducen la conductancia.
El cierre estomático es una herramienta de defensa frente a la limitación hídrica. Kriedenmann y
Smart sostienen que la capacidad fotosintética se mantiene cerca del máximo en tanto el potencial
hídrico foliar (ψ
h)
n
oc
a
i
g
amu
c
h
o
,
ys
o
s
t
i
e
n
e
nq
u
ep
o
r
d
e
b
a
j
od
eψ
h < -1.0 MPa la fotosíntesis cae
bruscamente. Lo mismo sostiene Zufferey (2000).

CONDUCTANCIA ESTOMATICA
0,00
0,02
0,04
0,06
0,08
0,10
0,12
7:30 9:30 11:30 13:30 15:30 17:00 19:00 21:00
mmol
H2O
m-2·
s-1
T1
T2
0 300 600 900 1200 1500
PFD (μ
m
o
l
p
h
o
t
o
n
s
m
-2
s-1
)
-2
1
4
7
10
13
16
Pn
(µmol
CO
2
m
-2
s
-1
)
Ψ
l > -1.0 MPa
Ψ
l < -1.2 MPa
0 300 600 900 1200 1500
PFD (μ
m
o
l
p
h
o
t
o
n
s
m
-2
s-1
)
-2
1
4
7
10
13
16
Pn
(µmol
CO
2
m
-2
s
-1
)
Ψ
l > -1.0 MPa
Ψ
l < -1.2 MPa
Influencia del potencial hídrico de base y mínimo diario en la
fotosíntesis aparente y conductancia estomática máximas
para hojas adultas de Chasselas. Zufferey (2000).
Curvas de respuesta a la luz fotosintéticas a diferentes
potenciales hídricos foliares. Datos de maduración de hojas
adultas de Tempranillo. Campos de Prácticas de Agrónomos,
Madrid. 2004
Sin embargo es difícil e
s
t
a
b
l
e
c
e
r
u
nv
a
l
o
r
p
r
e
c
i
s
od
eψ
h al que empieza a caer la fotosíntesis ya que
este depende del genotipo, hábitat, condiciones precedentes de crecimiento y de las condiciones
actuales climáticas. Sea como fuere, potenciales hídricos foliares muy negativos reducen la
capacidad fotosintética y suelen darse valores entre -1,0 y -1,5 MPa.
Smart y Robinson (1991) resumen el efecto de las condiciones ambientales en el comportamiento
estomático: Los estomas se abren y se cierran como respuesta a la luz. El aumento que se produce
a primeras horas de la mañana se debe principalmente a la luz (Düring y Loveys, 1996). A medida
que avanza el día, la planta transpira y cuando es incapaz de traslocar el agua suficiente desde las
raíces para satisfacer las tasas de transpiración, cerrará parcial o totalmente los estomas. Avanzada
la tarde, si las condiciones ambientales vuelven a ser propicias, la planta los abrirá de nuevo. Pero en
cualquier caso, al atardecer como consecuencia de la caída de la luz, cerrarán y permanecerán así
durante toda la noche.
Evolución diaria de la conductancia estomática en hojas de Tempranillo. Campos de prácticas de Agrónomos de Madrid.
Centeno, 2004.
2.2.2. EDAD DE LAS HOJAS
Existen diferencias en la capacidad fotosintética entre hojas jóvenes y adultas y dentro de estas
últimas según su edad. La fotosíntesis generalmente aumenta rápidamente durante el desarrollo de

la hoja alcanzando un máximo cerca de la expansión total. Las hojas de vid muestran un pico de
fotosíntesis aproximadamente tras 30-35 días de su aparición (95% de su tamaño final). Tras este se
produce un descenso, pero se mantienen valores aceptables de fotosíntesis durante un cierto
periodo de tiempo, de manera que la hoja con 140 días de edad o 4 meses mantienen el 70% de la
tasa máxima (Kriedemann et al. 1970; Kriedemann, 1977; Intrieri y col, 1992). Esto es porque la vid
es una especie que produce prácticamente toda su superficie foliar en un periodo corto de tiempo, al
inicio de su ciclo, y deben mantener su capacidad productiva para asegurar una correcta maduración
y agostamiento.
Estos cambios están asociados con cambios anatómicos y fisiológicos de las hojas en su desarrollo.
El descenso gradual de la fotosíntesis tras la total expansión de la lámina foliar ocurre a la vez que el
descenso en la cantidad de la rubisco, de la fosforilación y de la conductancia estomática. Además,
en hojas viejas se reduce la respiración mitocondrial y aumenta la fotorrespiración (Dickmann et al.,
1975).
- Hojas jóvenes (terminales
pequeñas)
. Débil fotosíntesis
. Intensa respiración nocturna
(oscuridad)
- Hojas adultas
. Más fotosíntesis
. Menos respiración
- Hojas senescentes
. Débil actividad fotosintética
Relación entre la fotosíntesis máxima (%Amáx ___ , respecto al valor máximo) y el tamaño de la hoja (% Área foliar o o,
respecto al valor máximo) y la edad de la hoja (plastocronos) o la posición que ocupa en el pámpano. Zufferey, 2000.
Zona del pámpano de máxima actividad límite de 2º a 3
er
tercio desde la base (Koblet, 1969 y 1976)
pero esto varía en el transcurso del ciclo. Ya que la edad se correlaciona con la A, y a su vez con la
posición que la hoja ocupa en el pámpano, las zonas de máxima eficiencia se trasladarán
regularmente hacia posiciones superiores en el pámpano con el tiempo. Sin embargo pueden darse
condiciones atmosféricas determinadas que permitan mantener durante un cierto tiempo los valores
altos de eficiencia fotosintética.
0 300 600 900 1200 1500
PFD (
mol photons m
-2 s-1 )
2
1
4
7
10
13
16
0 300 600 900 1200 1500
PFD (
mol photons m
-2 s-1 )
2
1
4
7
10
13
16
Apical externa
Basal externa
Media interior
Media exterior
Pn
(µmol
CO
2
m
-2
s
-1
)
Curvas de respuesta fotosintética (Pn )
a la luz (PFD) en hojas principales de
Tempranillo según la posición que
ocupan en el pámpano de maduración.
Madrid, 2004.

La cubierta vegetal de la cepa está constituida por hojas de distinta edad morfológica. La distribución
de las hojas según su edad fisiológica dentro del canopy juega un papel muy importante en la
fotosíntesis a nivel de toda la planta (Wang y Jarvis, 1990; Schultz 1995). Su posición determinará su
microclima luminoso y la conjunción luz-edad determinará su contribución al balance global de la
cepa. Por ejemplo, la posición que la hoja ocupa en un pámpano verticalmente conducido se
caracteriza porque a medida que se incrementa la intensidad lumínica que reciben, disminuye la
edad foliar. Por otro lado hay que tener en cuanta que el tamaño de la hoja es determinante también
en la medida que dicha hoja contribuye a la productividad global.
En la etapa de maduración, entre un 90-100% de las hojas que interceptan luz pueden considerarse
adultas (Poni et al., 1996). El problema entonces será la senescencia precoz de las hojas principales
que depende principalmente de la alimentación hídrica, del microclima luminoso y de la fuerza de los
sumideros.
Hay que tener en cuanta el papel de los nietos en la maduración del racimo: si no están en
crecimiento activo, si sus hojas son adultas y si se encuentran bajo un microclima luminoso correcto
pueden participar muy positivamente ya que su capacidad fotosintética será elevada y su
senescencia mas tardía (Koblet, 1971, Candolfi-Vasconcelos y Koblet 1990 y 1994; Schultz et al.
1996; Palliotti et al. 2000; Zufferey et al. 2000).
2.2.3. NIVEL DE CONSUMO DE AZUCARES. SUMIDEROS
La acumulación de azúcares frena la A, mientras que el consumo la estimula. Se trata de una
retroalimentación positiva o negativa (efecto de los sumideros positivo o negativo). Este fenómeno es
muy importante cuando las migraciones son perturbadas (incisión en la base del pámpano, tº matinal
reducida). El consumo rápido de los azúcares estimula la A (efecto de los sumideros positivo), por
ejemplo cuando el ratio superficie foliar / peso del fruto es bajo, o pámpanos estériles frente a
pámpanos fértiles. Además hay que tener en cuenta que es el flujo de agua el que soporta todos los
intercambios.
Hay muchas prácticas vitícolas encaminadas a la alteración de las relaciones fuente a sumidero en
orden de mejorar la fotosíntesis que es la principal responsable de una correcta maduración de la

uva. Entre otros están los diferentes sistemas de conducción, el deshojado, la densidad de
plantación, las prácticas de poda y el ajuste del nivel de carga. Muchas de ellas buscan favorecer el
transporte de carbono hacia los frutos a expensas de las estructuras vegetativas. Sin embargo estas
operaciones pueden no afectar a la fotosíntesis a nivel de hoja (Williams, 1986) o a nivel de toda la
planta (Edson y col, 1993).
SUMIDEROS
. La eliminación provoca disminución de fotosíntesis (raíces, racimos)
. Cepas cargadas de cosecha pueden tener más actividad que las débiles
. Los asimilados se orientan preferentemente a las zonas tratadas con giberelinas o citoquininas.
. Las relaciones óptimas dependen de variedad, condiciones ambientales, etc.
. Aclareo hacia el envero es más efectivo que el temprano, por el efecto estimulante que la presencia
de racimos ejerce en la actividad fotosintética de la hoja.
2.2.4. GENÉTICO
Variedad/Patrón
. Capacidad de adaptación al medio es diferente, en gran parte debido a las exigencias
ambientales para fotosíntesis.
. Adaptación patrón al suelo: adaptación al régimen hídrico y ausencia de desequilibrio en
nutrición mineral.
La variedad aporta una variabilidad significativa en términos de fotosíntesis debido a la capacidad de
éstas a adaptarse al medio. Chavés (1986) al estudiar variables fisiológicas de diferentes variedades
concluye que las diferencias encontradas pueden entenderse como adaptaciones a las zonas de
origen. El carácter genético se manifiesta en la respuesta a la luz, a la temperatura (óptimo de
temperatura en 24ºC para variedades septentrionales y 28ºC para meridionales, Motorina, 1958), al
estado hídrico, etc. En cuanto al estrés hídrico se pueden distinguir dos grupos de variedades: las
más sensibles al estrés hídrico que reducen fuertemente la gs y A (Semillon, Ugni Blanc) y las más
adaptadas (Chardonnay y Moscatel de Alejandría). En una situación intermedia se encuentra
Sauvignon y Cabernet Sauvignon (Alburquerque-Regina, 1993). Gómez del Campo (1998) realizó
durante 1994 y 1995 los mecanismos de adaptación a la sequía de 4 variedades de vid cultivadas en
maceta en los Campos de Agrónomos de Madrid. En condiciones de buena alimentación hídrica,
Gómez del Campo (1998) no encontró diferencias de actividad fotosintética existente entre genotipos
entre Garnacha, Tempranillo, Chardonnay y Airen cultivadas en maceta en Madrid. Entre estas
variedades, la misma autora encontró que el Tempranillo presentó las tasas más altas de fotosíntesis
tanto en estrés como no estrés. La Garnacha en condiciones de estrés obtuvo valores muy bajos.
Schultz (1996) observó que esta variedad evitaba la sequía (adaptada) cerrando los estomas para
mantener en valor adecuado el potencial hídrico, con lo que hace fotosíntesis sólo a primeras horas
de la mañana. La variedad Airén presentó un descenso de la fotosíntesis en condiciones de total
disponibilidad de agua más amortiguado que el resto de las variedades. Encontró que la variedad
Chardonnay fue la que peor reguló la escasez de agua ya que abre los estomas más horas pudiendo
esto suponer una deshidratación irreversible. En cuanto a la respiración oscura, la Garnacha y el
Chardonnay presentaron valores en general mayores frente a Tempranillo y Airén, tanto en estrés
como en condiciones de no estrés hídrico.

0
2
4
6
8
10
12
6 9 12 15 18
hora solar
µmol
CO2
m-2
s-1
Regadí o
Secano
0
2
4
6
8
10
12
14
16
8 12 16
hora solar
µmol
CO2
m-2
s-1 Regadío
Secano
0
2
4
6
8
10
12
8 12 16
hora solar
µmol
CO2
m-2
s-1
0
2
4
6
8
10
12
7:30 9:30 11:30 13:30 15:30 17:00 19:00 21:00
µmol
CO
2
m
-2
·
s
-1
T1
T2
3. EVOLUCIÓN DE LA FOTOSÍNTESIS
3.1. EVOLUCIÓN DIARIA
La fotosíntesis, en días claros y en hojas bien
expuestas a la luz, aumenta desde primeras horas de la
mañana hasta alcanzar un máximo y disminuir
posteriormente durante el resto del día o recuperarse
parcialmente, avanzada la tarde.
Este comportamiento se debe a que durante las
primeras horas del día se produce un aumento en la
iluminación, la temperatura y la conductancia
estomática. La caída posterior puede ser debida a un
progresivo cierre estomático debido a las altas
temperaturas, aumento del VPD y disminución del
potencial hídrico, o a la inhibición de la fotosíntesis por
acumulación de azúcares (Champagnol, 1984) o a la
continuada exposición a intensidades lumínicas
superiores a las de saturación (Iacono y Sommer,
1996). El máximo se puede desplazar según el
contenido de agua en el suelo: Yuste (1995) y Gómez
del Campo (1998) lo encuentran a primeras horas de mañana, Baeza (1994) a mediodía o ya entrada
la tarde Bartolomé (1993), figuras 3º, 2º y 1º respectivamente.
La recuperación parcial vespertina, cuando se produce, da lugar a un segundo máximo relativo
debido a una nueva apertura estomática como respuesta a condiciones ambientales de nuevo
favorables pero que es un máximo de menor (Yuste, 1994).
.
Evolución diaria de la fotosíntesis foliar de la var. Tempranillo. Dos tratamientos de riego: T1: 40% ETo, T2: 20% ETo. Campos
de Prácticas de Agrónomos. Madrid. 2003

3.2. EVOLUCIÓN ESTACIONAL
La fotosíntesis aumenta al principio del ciclo para alcanzar un máximo, a media estación, y
posteriormente disminuir hasta la caída de la hoja.
A finales de la primavera o comienzos del verano, la planta ya ha desarrollado una superficie foliar
suficiente y las condiciones ambientales (temperatura, iluminación, duración del día, agua en el
suelo,
…) son ideales para una fotosíntesis alta (Champagnon, 1984)
La tendencia descendente de la fotosíntesis, paralela a la disminución de las condiciones
ambientales óptimas es el comportamiento que caracteriza al pleno verano. El contenido de agua en
el suelo y las condiciones de las hojas provocan una reducción de la fotosíntesis y una parada del
crecimiento. A partir de este momento el destino de los fotoasimilados es la respiración, la
maduración y la acumulación de reservas (Champagnon, 1984). La caída en verano de la fotosíntesis
se atenúa si el contenido de agua en el suelo no es limitante. Después de vendimia y hasta la caída
de hojas, la fotosíntesis sigue bajando debido a las condiciones ambientales (disminuye la
iluminación, la temperatura y la duración del día) y al envejecimiento de las hojas.
FOTOSÍNTESIS DE ÓRGANOS DISTINTOS A LAS HOJAS
F
u
n
d
a
me
n
t
a
l
me
n
t
e
,
l
o
só
r
g
a
n
o
sc
l
o
r
o
f
í
l
i
c
o
sd
i
f
e
r
e
n
t
e
sd
el
a
sh
o
j
a
sr
e
a
l
i
z
a
nf
o
t
o
s
í
n
t
e
s
i
s“
r
e
f
i
j
a
n
d
o
”
CO2 procedente de la respiración, de tal forma que los pámpanos pueden reducir las pérdidas de
CO2 por respiración en 70-90%, incluso los sarmientos llegan hasta el 13%. Dependiendo del estado
de crecimiento de las bayas, éstas son capaces de refijar del 10 al 90% de las pérdidas de CO2 por
respiración con luz. La fotosíntesis expresada por baya oscila de 10-120 mg CO2 h
-1
.
Nietos (Koblet, 1969, 1976) Koblet y Perret (1971). Si los nietos se desarrollan pronto el efecto
parásito inicial desaparece con el tiempo y su presencia acaba resultando positiva.
Pámpano fértil más activo que el estéril (Stoev, 1966)
Bayas CO2/O2 < 1. Poca contribución
0
5
10
15
20
25
6
-
6
2
1
-
6
5
-
7
1
8
-
7
1
-
8
1
4
-
8
3
0
-
8
1
2
-
9
1
9
-
9
Amax
(
m
mol
CO
2
/m
2
·s)
**
a
a
b
b
**
a
b
bc
c
*
ab
a
ab
b
**
a
ab
bc
c
**
ab
a
bc
c
**
a
b
b
c
Evolución de la fotosíntesis
máxima (Amáx) durante el ciclo
2004 para diferentes tratamientos
de riego: dosis de riego
proporcionales a la ETo: 45, 30,
20 y 0% para los rombos,
cuadrados, triángulos y cruces,
respectivamente.
Estados fenológicos: Floración
(6/6); Envero (18/7); Maduración
(4/10). Centeno, 2005.

3. FOTOSÍNTESIS DE LA CUBIERTA VEGETAL
La estimación de de la fotosíntesis neta midiendo los intercambios gaseosos a nivel de hoja, aunque
es una técnica válida, presenta una serie de
limitaciones cuando se extrapolan los resultados a toda
la planta ya que en la asimilación neta intervienen
numerosos aspectos, las diferencias de edad en las
hojas, su contenido en clorofila, la respiración de los
tejidos vegetativos y reproductivos, estrés bióticos o
abióticos y variaciones adicionales debidas a
diferencias dentro de la planta o entre plantas como
consecuencia de la carga en racimos, de la proximidad
de sumideros de carbohidratos y de relaciones
fuente/sumidero distintas. Por ejemplo, la
superposición de hojas reduce la energía incidente en
cada capa nueva. Entre el 70-90% de la fotosíntesis
del canopy es debida a la radiación directa, por ello
gran parte de las actividades en el viñedo van
encaminadas a aumentar la superficie foliar expuesta.
La contribución de una única hoja a la fotosíntesis
global varía al considerarla como parte de una
población de hojas, por ejemplo, aunque una hoja
aclimatada a la sombra tenga poca fotosíntesis, a
determinadas horas del día, puede que las condiciones
meteorológicas de la superficie externa sean limitantes
(temperatura –
figura A-, higrometría –
figura b-) con lo que toman importancia relativa las hojas
sombra (línea discontinua para la transpiración -figura c- y para la fotosíntesis –
figura d-) respecto a
las hojas expuestas a luz directa (línea continua). En muchos casos conviene tener en cuenta que las
hojas interiores pueden contribuir del 20-30% de la asimilación diaria, debido a intercepción de
radiación difusa.
La vid presenta una cobertura vegetal heterogénea pues existen volúmenes de vegetación
separados por porciones de suelo. Este irregular reparto de la vegetación disminuye la eficiencia en
la captación de la energía luminosa respecto a una misma superficie vegetal repartida
homogéneamente por dos razones principalmente:
1.- disminuye el porcentaje de hojas que reciben radiación directa y aumenta las hojas con radiación
difusa.
2.- en ciertos momentos del día (a primeras y últimas horas del día en orientaciones E-O, a mediodía
en N-S) un alto porcentaje de radiación solar incide sobre el suelo. El 90% de esta radiación servirá
para calentar las partes basales de la atmósfera y el suelo, el resto es reflejado y podrá ser usado
por las hojas.
A
B
C
D

La arquitectura de la cubierta vegetal es un factor básico que es necesario caracterizar pues
condiciona el microclima y por tanto la fotosíntesis, la productividad y la calidad de la cosecha.
Es importante conocer la superficie foliar desarrollada, que es la fuente de asimilados, y las
características que determinan su microclima. El área foliar representa la superficie de intercambio
entre la planta y el medio aéreo y por tanto la intensidad y calidad de estos intercambios dependerá
de la disposición de las hojas y de su superficie (Fregoni, 1984). El índice de área foliar o LAI es el
parámetro más utilizado y se define como la relación entre la superficie de hojas y la superficie del
suelo (Carbonneau, 1989): m
2
superficie de hojas/m
2
superficie de suelo.
La producción fotosintética aumenta con el LAI hasta un punto a partir del cual el aumento de la
densidad de vegetación limita el número de hojas expuestas a radiación directa (Reynier, 1989).
Necesitamos cuantificar la superficie foliar en función de la iluminación que incide sobre ella, es decir
conocer la superficie de hojas activas por unidad de superficie de suelo. Para ello podemos corregir
LAI con la iluminación media de la vegetación, o incluso teniendo en cuenta la exposición directa o
indirecta a la luz, las zonas sombreadas, la fotosíntesis media, la senescencia, la macroporosidad y
el espesor de la cubierta. Ya que estas medidas son delicadas y largas, en la práctica son sustituidas
por la superficie foliar externa de la cubierta que representa su perímetro exterior (SA). Estos índices
no tienen en cuenta por ejemplo edad y posición del pámpano que afectan a la fotosíntesis.
El espacio del que disponen las hojas, racimos y pámpanos dentro del canopy afecta a la producción
y a la maduración. Dos índices que se emplean para evaluar la densidad son la relación LAI/SA y el
número de capas de hojas. La relación LAI/SA es el inverso del índice foliar (IF) que representa la
parte media de superficie foliar que recibe luz solar directa. El número de capas de hojas (LLN) se
puede obtener a través del método del point quadrat.
4. INTERCEPTACIÓN DE LA RADIACIÓN POR LA CUBIERTA VEGETAL
La radiación solar atraviesa la atmósfera y alcanza la vegetación de forma directa y difusa. La
radiación directa es más importante cuantitativamente, salvo en días nublados donde la difusa toma
más importancia al ser absorbida la directa por las nubes para posteriormente ser emitida en todas
las direcciones. Hay que recordar el balance energético de la hoja. La radiación interceptada y
absorbida por la cubierta vegetal es el balance entre las radiaciones que entran menos las que salen.
Las radiaciones que ENTRAN: incidente (difusa y directa), la reflejada por el suelo. Las radiaciones
que SALEN: transmitida por la cubierta al suelo y la reflejada por el conjunto suelo-cepa.
La cantidad de luz interceptada es un factor muy importante por su interacción con otros factores:
temperatura de las hojas, estado hídrico de la planta (Zufferey y Murisier, 1997), y por su influencia
en la fijación del carbono (Schultz, 1995; Zufferey y Murisier, 1997); directamente relacionada con la
producción de la biomasa (P
e
l
a
e
z
y
c
o
l
,
1
9
9
7
;
Z
u
f
f
e
r
e
y
y
Mu
r
i
s
i
e
r
,
1
9
9
7
;
I
n
t
r
i
e
r
i
y
c
o
l
,
1
9
9
8
)
,
…
La cantidad de radiación que incide sobre nuestro viñedo varía con la latitud, la estación y las
condiciones metereológicas del día (soleado y nublado). En un día soleado la intensidad de los rayos
de sol es relativamente constante. Pero la cantidad de radiación directa absorbida depende de la
posición del sol, de la arquitectura de la cubierta, de la orientación de las líneas de cultivo.

5. MICROCLIMA DE LA CUBIERTA VEGETAL
Forma de la cepa como resultado de la interacción entre los elementos de la geometría de la
plantación, de la orientación de las filas, de la poda de formación y mantenimiento, empalizamiento y
porte de la vegetación, y operaciones en verde.
El microclima de la vid es el espacio que representa el interior y los alrededores inmediatos de la
cubierta vegetal y se adopta este término para definir las condiciones ambientales próximas a las
hojas y frutos. La variación del microclima del canopy afecta a la fotosíntesis, la respiración, el
potencial hídrico foliar, el crecimiento de los pámpanos y bayas y la maduración.
La temperatura de las hojas bien expuestas se calientan al absorber radiación solar pero también se
refrigeran por convección gracias al viento y por transpiración. Su temperatura puede ser entre 1-7ºC
mayor a la ambiental. En las hojas interiores la temperatura puede llegar a ser 2ºC menor ya que no
absorben calor del sol y mantienen cierto grado de transpiración.
La evaporación disminuye en el interior del canopy como consecuencia de la atenuación de la
radiación, de la temperatura y de la velocidad del viento y de la humedad. Esto se incrementa con
cubiertas de mayor densidad y se favorecen las enfermedades.
La velocidad del viento se reduce por el efecto amortiguador de las hojas, que depende de la
densidad y de la dirección de las filas respecto al viento. Los vientos fuertes reducen la conductancia,
la transpiración por tanto la fotosíntesis.
La humedad aumenta debido a la transpiración de las hojas y la menor velocidad del viento, siendo
mayor que la ambiental en canopies densos.
La luz no se distribuye uniformemente al atravesar la cubierta vegetal ni en altura. Sólo la luz que
reciben las dos primeras capas de hojas es suficiente para una asimilación neta positiva, en los días
nublados sólo la que recibe la primera capa. La superficie foliar externa es la responsable del 70% de
la fotosíntesis total de la planta. Generalmente, la luz que reciben las partes altas del canopy es
mayor que la que recibe las bajas, debido a la sombra proyectada por las líneas vecinas. Además se
altera la calidad espectral de la luz, de manera que las hojas exteriores absorben principalmente en
la zona del rojo y azul, reflejando más el verde. Disminuye por tanto la relación R:FR (rojo:infrarrojo)
que regula el equilibrio del fotocromo (éste influye en muchos aspectos del crecimiento,
diferenciación y metabolismo).

6. TRASLOCACIÓN, UTILIZACIÓN Y ALMACENAJE DE FOTOSINTATOS.
Mientras la productividad total de materia seca depende de la fotosíntesis global de la cepa, el
volumen de una cosecha depende de la producción de fotosintatos dirigidos hacia el desarrollo de
racimos en detrimento del crecimiento vegetativo. Luego hay dos aspectos a considerar: la
fotosíntesis global y la traslocación y utilización de los fotosintatos en los diferentes órganos de la
cepa.
6.1. TRASLOCACIÓN
En un pámpano en crecimiento se distinguen dos figuras que son la base para entender los
movimientos de los fotoasimilados en el mismo: fuente y sumideros.
- Fuente: En ella por fotosíntesis se producen sustancias hidrocarbonadas a partir de CO2
y agua. Produce más de lo que necesita por lo que se produce una exportación de los
productos a otras zonas (sumideros)
- Sumideros: Puede que tengan clorofila y realicen fotosíntesis pero sus necesidades
superan a la producción e importan productos desde otras zonas del pámpano (fuentes).
La distribución de los carbohidratos en la planta implica la competencia entre sumideros (Keller y col,
1995). Esta competencia se encuentra determinada por la fuerza del sumidero y la proximidad y
eficacia de sus conexiones vasculares con las fuentes. La fuerza o capacidad del sumidero para la
acumulación de metabolitos queda definida por su tamaño y actividad (Miller y col, 1996) y varía a lo
l
a
r
g
od
e
l
c
i
c
l
o
.P
o
r
e
j
e
mp
l
o
,
u
n
ah
o
j
aa
l
p
r
i
n
c
i
p
i
od
es
uc
r
e
c
i
mi
e
n
t
oe
su
ns
u
mi
d
e
r
o(
“
p
a
r
á
s
i
t
a
”
)
p
e
r
o
a medida que va desarrollándose el grado de parasitismo va disminuyendo hasta que se hace nulo y
pasa a ser una fuente. Lo mismo ocurre con los nietos. En cuanto a los racimos, antes de floración la
inflorescencia tiene un mínimo, por no decir nulo, efecto sumidero. Desde el momento que se lleva a
cabo la fecundación y comienza a desarrollarse el fruto, este adquiere una gran fuerza como
sumidero.
6.2. FORMA Y VÍA DE TRANSPORTE
Una pequeña parte de los productos de la fotosíntesis es utilizada por las hojas para su
mantenimiento y crecimiento, el resto emigra hacia otros lugares de la planta donde se utiliza o se
almacena.
En las plantas superiores la principal forma de transporte es la sacarosa, azúcar cuya molécula es
más voluminosa pero menos activa químicamente que la de glucosa y fructosa, y es transportada
principalmente a través de los vasos liberianos
Los productos de fotosíntesis son usados para sintetizar almidón en los cloroplastos y sacarosa en el
citoplasma. Cuando la sacarosa producida excede del transporte, se sintetiza almidón. Puede haber
solo una pequeña degradación de almidón, durante los períodos de fotosíntesis activa.
Los productos fotoasimilados son transportados principalmente por los vasos liberianos como
sacarosa.
La posibilidad de transporte de la sacarosa está determinada por la tasa de fotosíntesis, el reparto de
fotoasimilados entre las formas de CHO transportables (sacarosa) y no transportables (almidón,
celulosa), la velocidad de síntesis de sacarosa, la velocidad con la que esta es transferida al floema,
la velocidad con la que el floema se carga con sacarosa.
La traslocación precisa energía, aunque también hay gradientes de difusión por concentración pero

no es bien conocido. Desde dónde se sintetiza se mueve a través del mesófilo. Puede moverse a
través del apoplasto (espacio libre) y hacerlo a favor de gradientes de concentración, o en el
simplasto por cotransporte de protones (energía). En floema forma un continuo en el que la carga de
sacarosa parece suficiente para asegurar el flujo.
Las traslocaciones son verticales y laterales.
Con elementos marcados se ha podido observar que también existe un desplazamiento a través del
xilema y en sentido transversal de los ramos. Por ejemplo Kriedemann (1969) observó tratando una
hoja con
14
CO2, que la radioactividad se encontraba en el fruto opuesto al cabo de una hora. Algunos
estudios han visto que la hoja que más contribuye al racimo es la opuesta.
Delrot y Bonnemain (1979) estudian el transporte lateral del carbono asimilado. Observan que antes
de entrar en el floema que asegura su movimiento longitudinal, debe efectuar un recorrido lateral
desde los cloroplastos hasta los haces liberianos. Este sale en forma de triosas-fosfato y en el
citoplasma de su célula se sintetiza la sacarosa que es la que se trasporta lateralmente vía
simplástica y vía apoplástica.
El floema lo trasporta hasta el órgano receptor. Aquí su distribución lateral no es totalmente
unidireccional, por ejemplo, en la raíz una parte vuelve a los órganos aéreos. Los azúcares de los
tejidos de reserva harán un recorrido lateral y en sentido inverso hasta la vía longitudinal que los lleve
a los nuevos tejidos, esta vía es principalmente floema pero también puede ser xilema (la savia bruta
contiene aa, ác. orgánicos y a veces glúcidos en cantidades relativamente importantes, Bollard,
1960).
Existen indicios de que la sacarosa sigue caminos determinados por los ortósticos o filotaxis dística:
las hojas que están en el mismo ortóstico que los racimos son las primeras que los alimentan de
asimilados, al menos hasta envero. Las hojas basales del ortóstico opuesto, principalmente
alimentan al tallo, tronco y raíz. (Motomura, 1990)
6.3. DIRECCIÓN. MODELOS DE TRASLOCACIÓN.
Debido a las relaciones
fuente-sumidero en los
pámpanos, aparecen
movimientos de
fotoasimilados entre los
diferentes órganos que
permiten establecer
modelos de traslocación.
El transporte de los
fotoasimilados desde las
hojas expandidas sigue el
mismo modelo de su
actividad fotosintética.
Cuando la hoja alcanza un
tercio o la mitad de su
Floración:
zona media
Pámpano
joven:
consumidor
de reservas
Envero:
racimos
Maduración:
racimos y
basal
Pámpano
envejecido:
basal
Floración:
zona media
Pámpano
joven:
consumidor
de reservas
Envero:
racimos
Maduración:
racimos y
basal
Pámpano
envejecido:
basal

tamaño definitivo, es mayor lo que exporta que lo que importa, contribuyendo al crecimiento global de
la cepa (fuente).
El movimiento de fotoasimilados a lo largo del pámpano depende del desarrollo vegetativo y
reproductivo. Las primeras 2 o 3 semanas tras el desborre se caracterizan por el movimiento de las
sustancias de reserva de los elementos permanentes hacia el pámpano y hacia su ápice en
crecimiento. Las nuevas hojas no exportarán hasta alcanzar un tercio o la mitad de su tamaño
definitivo. Tras este periodo y hasta floración ya existe un cierto flujo basípeto hacia las partes viejas.
Las inflorescencias son sumideros muy débiles, pero durante la floración se establece una gran
competencia entre las inflorescencias y el ápice. Desde cuajado hasta envero existen principalmente
tres sumideros: el ápice del pámpano, los racimos y las partes permanentes. Al ápice lo alimentan las
hojas superiores, a los racimos además de las hojas del pámpano las reservas de la madera vieja y
todo el pámpano aporta reservas que se transportan basípetamente. En el envero, las sustancias
elaboradas cesan temporalmente su circulación hacia las raíces siendo en estos días los racimos
grandes consumidores. En este periodo los brotes sin racimos que antes transportaban la mayor
parte de sus asimilados hacia las raíces, interrumpen el transporte en esa dirección para dirigirlos,
casi en su totalidad, hacia los racimos de los brotes fértiles. Pasado este periodo de acumulación en
los racimos vuelven a ser enviados al sistema radicular. El resto del periodo de maduración de las
bayas se caracteriza porque son los racimos los principales sumideros, siendo menores los nietos, el
desarrollo del principal y la acumulación de reservas. Después de la vendimia, los asimilados son
transportados fuera del sarmiento hacia la madera vieja y raíces. Este es un periodo de importante
crecimiento radicular.
La hoja deja de ser sumidero y pasa a ser fuente alrededor de la mitad de su tamaño. Al principio sus
asimilados se transportan hacia el ápice del brote, pero cuando se separa de su posición inicial por
dos hojas adultas, exporta en ambos sentidos, hacia el ápice y hacia la cepa. A medida que bajamos
de rango en el pámpano domina el movimiento basípeto hasta ser él único (parada de crecimiento).
En cambio, las hojas por debajo de los racimos tras envero presentan traslocación en ambos
sentidos y por la gran fuerza de sumidero que suponen los frutos en crecimiento.
La joven inflorescencia es un débil sumidero en comparación con el ápice y la cepa y no influye en la
dirección de los asimilados. Desde 10-14 días antes de floración hasta cuajado, el racimo atrae
débilmente los asimilados. Las yemas axilares, los zarcillos tienen muy poco efecto sumidero. Los
nietos se comportan como hojas jóvenes hasta que una o dos de sus hojas se hacen adultas, desde
ese momento dejarán de importar asimilados. Antes del cuajado los sumideros más importantes son
los ápices y la cepa, tras cuajado son los racimos. Koblet (1975) y Calo e Iannini (1975) indican que
los nietos trastocan asimilados a los racimos del mismo ortóstico.
Velocidad: Ascendente: 15-17 cm/s
Descendente: 34-44 cm/s
Gradientes estacionales
En el gráfico se observa que en las primeras fases de crecimiento, el gradiente de asimilados en el
pámpano joven es acrotono, las hojas jóvenes y zonas meristemáticas son sumideros. Más tarde

aparece una segunda polaridad basipeta hacia racimos, nietos y órganos de reserva, en equilibrio
con lo anterior. Después de la parada de crecimiento solo subsiste la basipeta
Hoja: 50% del tamaño normal, para exportar. Koblet: 1/3 de su tamaño final comienzan a exportar,
pero la importación no cesa hasta 1 /2 del final y 3/4 para nietos.
Ejemplos de modelos de distribución de fotoasimilados (Baldini, Intrieri)
6.5. UTILIZACIÓN DE CARBOHIDRATOS
La utilización de los carbohidratos varía mucho con el ciclo, así, antes de antesis el 98% del carbono
se utiliza para edificar, mientras que durante la maduración del fruto, el 83% se utiliza como
acumulación de hidratos de carbono no estructurales.
La fotosíntesis neta global es igual a la masa de azúcares fotosintetizados, disminuida por la
respiración. Lo productos resultantes de la fotosíntesis neta se destinan bien a la formación de
pámpanos, hojas, bayas, crecimiento y desarrollo de raíces y tronco, bien a la acumulación de
glúcidos sea en forma soluble (bayas) o insoluble (almidón de los órganos vivaces).
La materia seca y su reparto es un buen estimador de esta fotosíntesis neta. Trabajos como los de
Miller et al. (1997) indican que existe una relación lineal positiva entre la materia seca global
producida por la cepa y la tasa de fotosíntesis neta media para el conjunto de la planta.
Champagnol (1984) establece el orden de prioridad en el reparto de asimilados durante el ciclo de la
siguiente forma:
- En el periodo de crecimiento: 1) consumo en el propio lugar de producción, 2) ápices en
crecimiento, 3) bayas jóvenes.
- En maduración, tras la parada de crecimiento: 1) consumo en el propio lugar de

producción, 2) bayas, 3) partes perennes.
Cuando tras envero no se ha producido la parada de crecimiento, los ápices son
sumideros dominantes respecto a las bayas y partes vivaces.
La acumulación de reservas y la utilización de los fotoasimilados dependen del momento de
crecimiento del pámpano y del nivel de cosecha.
El periodo típico de utilización de los carbohidratos por los elementos permanentes de la cepa es el
que transcurre desde desborre hasta floración. También son usados por el pámpano que presenta un
crecimiento muy acentuado hasta que en floración desciende bruscamente. Este descenso depende
en gran medida de factores como la humedad del suelo, el clima, la fertilidad del suelo, la carga y la
variedad.
Existe un periodo corto de tiempo, coincidente con el descenso en la velocidad de crecimiento del
pámpano, donde la cantidad de reservas que se movilizan de los elementos perennes se iguala con
los carbohidratos que proceden de la fotosíntesis.
Para el resto del ciclo hay una acumulación de carbohidratos en los tejidos de la madera. Poco
después de que el crecimiento del pámpano descienda, los carbohidratos empiezan a acumularse en
los pámpanos que los producen. La acumulación se inicia en la mitad del pámpano y continúa hacia
arriba y hacia abajo del mismo. La velocidad es pequeña al principio y a medida que avanza el
periodo de maduración se acelera.
6.6. ACUMULACIÓN DE CARBOHIDRATOS. MATERIA SECA ACUMULADA.
Las estructuras permanentes (raíz, tronco) pueden variar anualmente en almidón un 10% (Stoev,
1966). Este autor en la misma experiencia observó una pérdida de 175 g.cepa
-1
entre desborre y
floración. La reserva es menor en antesis más que en ningún otro estado fenológico. Posteriormente
registra un incremento (Williams, 1996).
Existe un equilibrio entre el crecimiento de las raíces y de la parte aérea. Algunos autores dicen que
los carbohidratos almacenados en las raíces son únicamente utilizados por las propias raíces.
En cuanto a la acumulación media anual en el tronco algunos resultados son los siguientes: 527
g./cepa.año en Tompson sedles hasta los 7 años; 250 g/cepa.año en Cabernet Sauvignon hasta los
18 años; 300 g/cepa.año en tronco y cordones de Chenin blanc durante 12 años. Pero estos
resultados varían mucho, incluso entre diferentes años.
Diversos autores han cuantificado el reparto de materia seca en las partes renovables: Fernández y
col (1077) con 6 tipos de espaldera con diferentes alturas y marcos de plantación, obtienen
resultados muy similares: 61% racimos, 23% hojas, 16% sarmientos. Fregoni (1980): 42-53%
racimos, 13-29% hojas, 22-37% sarmientos. Bartolomé (1993) en plantas en secano: racimos 39-
43%, hojas 28-34%, sarmientos 27-29% y en regadío: racimos 52-56% hojas 19-22% y sarmientos
25-26%. Baeza (1994) bajo regadío en Tempranillo en espaldera encontró: 57% racimos, 19% hojas,
24% sarmientos, para vaso alto: 47% racimos, 22% hojas, 31% sarmientos, para vaso bajo: racimos
40%, hojas 26% y sarmientos 35% y para cortina: racimos 41%, hojas 28% y sarmientos 31%.
En la práctica, la cuantificación de la biomasa total producida se limita a los elementos renovables
que nos permite una buena aproximación a la productividad total de la cepa por suponer entre el 88-
93% de la materia seca total producida anualmente (Williams 1996). Yuste (1995) sostiene que el

análisis de la biomasa de los órganos renovables de la planta, expresada en materia seca, es una
forma objetiva de evaluar el crecimiento, el desarrollo y cuantificar, en unas determinadas
condiciones, el potencial productivo de la vid.
Miller et al. (1996) describen un comportamiento doble sigmoide en la acumulación de materia seca
en la planta entera donde se distinguen dos periodos de crecimiento: uno entre desborre y floración y
otro entre cuajado y maduración; y dos periodos donde el crecimiento es más lento: uno durante la
floración y otro al final del periodo vegetativo. Otros modelos son los de Gómez del Campo (1985) y
Sipiora (2005) donde señalan los periodos típicos de acumulación de materia seca, válidos a priori,
para condiciones similares de cultivo, ya que la producción de materia seca del canopy depende de
la variedad, del portainjerto, del sistema de conducción, del régimen hídrico y de la carga entre otros.
Smart y Coombe (1983) recopilaron varios trabajos:
Órgano Distribución de la materia seca (g)
Raíces 4.310 (38%)
Tronco + cordón 3.610 (32%)
Brotes 1.490 (13%)
Hojas 600 (5%)
Racimos 1.350 (12%)
TOTAL 11.360
Araujo y Williams (1988) con Thompson Sedles de dos años de edad sin racimos y podadas a
pulgares, con un área foliar de 4.1 m
2
, obtuvieron 1.670 g.cepa
-1
:
Órgano Distribución de la materia seca (%)
Raíces 24,8
Madera vieja 10,3
Madera de un año 42,4
Hojas 2,4
Williams y Biscay (1991) en Cabernet Sauvignon de 18 años sin riego y con un área foliar de 7,2 m
-2
obtuvieron:
Órgano Distribución de la materia seca (g)
Raíces 3.159 (27%)
Tronco 4.311 (37%)
Madera vieja 230 (2%)
Madera de un año 1.000 (9%)
Hojas 780 (7%)
Racimos 2.150 (18%)
TOTAL 11.630
Mullins y col (1992) obtuvieron en Chenin Blanc de 10 años:
Órgano Brotación 1 semanas tras 2 semanas Madurez comercial

floración tras envero
Raíces 2.139 (27%) 2.535 (21%) 3.020 (20%) 2.984 (16%)
Tronco 2.535 (32%) 2.870 (24%) 2.961 (20%) 3.015 (16%)
Cordón 3.319 (41%) 3.646 (31%) 3.284 (22%) 3.421 (18%)
Brotes 1.143 (10%) 1.198 (8%) 2.539 (13%)
Hojas 1.185 (10%) 1.469 (10%) 1.732 (9%)
Racimos 519 (4%) 2.901 (20%) 5.199 (28%)
TOTAL 7.993 11.898 14.833 18.890
7. RESERVAS
Conviene recordar, tal y como vimos anteriormente, que las estructuras permanentes de la
vid son la primera fuente de carbohidratos en ausencia de pámpanos. Los hidratos de carbono no
estructurales de las partes permanentes, consecuencia de la fotosíntesis pasada, pueden
representar cantidades muy importantes, por ejemplo, Ruhl y Clingeleffer (1993) han encontrado
valores 1680 a 2216 g cepa
-1
según el tipo de poda. En la figura 1 (pág. 855) se puede ver la
variación estacional de los azúcares solubles y del almidón en las partes permanentes (tronco y
raíces) y que representa porcentajes muy importantes, se observa que durante el invierno, en raíces
y troncos, más del 15% del peso seco son almidones y, del 4 al 5% azúcares solubles.
Después de vendimia, prácticamente todos los asimilados van hacia el tronco y las raíces y se
almacenan en forma de almidón en las células de la madera. El crecimiento de las raíces tiene dos
picos, uno en la antesis y otro en vendimia. Las partes permanentes aumentan en masa a lo largo del
ciclo, pero el crecimiento mayoritario se produce antes de envero. En un estudio cerca del 10 –
30%
del C asimilado por las cepas jóvenes fue traslocado al tronco. Los carbohidratos (principalmente en
forma de almidón) y los minerales son almacenados como reservas en las partes permanentes de la
cepa. Los requerimientos en carbohidratos almacenados son muy intensos al principio del
crecimiento ya que es baja la cantidad de asimilados formados por las hojas, todavía jóvenes. El
contenido de estos en la madera de los sarmientos y del tronco aumenta durante el desarrollo y
maduración de la uva, cuando cesa el crecimiento de los pámpanos. Durante el ciclo y después de la
vendimia se acumula también en las raíces.
BIBLIOGRAFÍA
Gómez del Campo, M. V. (1998). Mecanismos de adaptación a sequía en la vid.Evaluación del
consumo de agua, crecimiento y desarrollo vegetativo, productividad y eficiencia en el uso del agua
de cuatro genotipos de vid. E.T.S.I.Agrónomos.Producción Vegetal: Fitotecnia. J. R. Lissarrague.
Madrid, Universidad Politécnica de Madrid: 383.
González-Padierna, C. M. (2003). Estudio ecofisiológico y agronómico de cuatro sistemas de
conducción de la vid (Vitis vinifera L.): Cubiertas vegetales simples versus divididas. Departamento
De Producción Vegetal: Fitotecnia. Madrid, Universidad Politécnica de Madrid. Escuela Técnica
Superior de Ingenieros Agrónomos.
Intrieri, C., S. Poni, O. Silvestroni y I. Filippetti (1992). "Leaf age, leaf position and photosynthesis
in potted grapevines." Adv. Hort. Sci 1: 23-27.
Keller, M. y W. Koblet (1995). "Dry matter and leaf area partitioning, bud fertility and second
season growth of vitis vinifera L.: responses to nitrogen supply and irradiance." Vitis 34(2): 77-83.
Kliewer, W. M. (1971). "Effect of day temperature and light intensity on concentration of malic and
tartaric acids in V. vinifera L. grapes." J. Amer. Soc. Hort. Sci. 96(3): 372-377.

Koblet, W. (1984). Influence of light and temperature in vine performance in cool climates and
applications to vineyard management. Internatinal symposium on cool climate viticulture and Enology,
Oregon - USA.
Koblet, W., M. C. Candolfi-Vasconcelos, Zweilfel y G. Howell (1994). "Influence of leaf removal,
rootstock and training sysmtem on yield and fruit composition of Pinot noir grapevines." Am.J.Enol.
Vitic. 45(2): 181-187.
Kriedemann, P. E. y M. S. Buttrose (1971). "Chlorophyll content and photosynthetic activity within
woody shoots of Vitis vinifera L." Photosynthetica 5(1): 22-27.
Kriedemann, P. E. y R. E. Smart (1971). "Effects of irradiance, temperature and leaf water
potential on photosynthesis of vine leaves." Photosynthetica 5(1): 6-15.
Matthews, M. A. (2004). "Growth and physiology of the grapevine." Viticulture & Enology 110.
University of California, Davis. 6. Fundamentals of light. Environmental Control of photosynthesis.: 67-
79.
Miller, D. P., G. S. Howell y J. A. Flore (1996). "Effect of shoot number on potted grapevines. II.
Dry matter accumulation and partitioning." American Journal of Enology and Viticulture 47(3): 251-
256.
Mullins, M. G., A. Bouquet y L. E. Williams (1992). Developmental physiology: the vegetative
grapevine. Biology of the grapevine. M. G. B. Mullins, A. Williams. L.E. Cambridbe. U.K, Cambridge
University Press: 80-111.
Palliotti, A. y A. Cartechini (2001). "Photosynthetic light response curves in relation to illumination
of adaxial and abaxial surfaces of sun and shade leaves of Vitis vinifera L." Vitis 40(4): 175-177.
Palliotti, A., A. Cartechini y F. Ferranti (2000). "Morpho-anatomical and physiological
characteristics of primary and lateral shoot leaves of Cabernet Franc and Trebbiano Toscano
grapevines under twoo irradiance regimes." Am. J. enol. vitic 51(2): 122-130.
Peláez, H. (1999). Balance de radiación fotosintéticamente activa, microclima luminoso y
evaluación fisiológica y agronómica de distintos sistemas de conducción en diferentes regímenes
hídricos en el cultivo de la vid (Vitis vinifera L.). Dto. Producción Vegetal: Fitotécnia. Madrid,
Universidad Politécnica de Madrid: 272.
Poni, S., L. Marchiol, C. Intrieri y G. Zerbi (1993). "Gas-exchange response of grapevine leaves
under fluctuating light." Vitis 32: 137-143.
Rubio, J. A. (2002). Riego y aclareo racimos: efectos en la actividad fisiológica, en el control del
rendimiento y en la calidad de la uva del cv. Tempranillo (Vitis vinifera L.). Madrid.
Schultz, H. R. (1995). "Grape canopy structure, light microclimate and photosynthesis I. A two
dimensional model of the spatial distribution of surface area densities and leaf ages in two canopy
systems." Vitis 34(4): 211-215.
Schultz, H. R., W. Kiefer y W. Gruppe (1996). "Photosynthetic duration, carboxylation efficiency
and stomatal limitation of sun and shade leaves of different ages in field-grown grapevine (vitis
vinifera L.)." Vitis 35(4): 169-176.
Sipiora, M. J. (2005). Influencia de la densidad de pámpanos por metro de cordón sobre la
variedad de vid (Vitis vinifera L.) Tempranillo en secano y regadío. Comportamiento agronómico,
fisiológico y modelos descriptivos del desarrollo de la vid. Departamento de Producción Vegetal:
Fitotecnia. Madrid, E.T.S.I. Agrónomos. Universidad Politécnica de Madrid.: 256.
Smart, R. E. (1974). "Aspects of water relations of the grapevine (Vitis vinifera)." Am. J. enol. vitic
25(2): 84-91.
Stoev, K. y S. Dobreva (1976). "Influence du modo de conduite de la vigne sur la photosynthese et
la distribution des substances." Connaissance de la Vigne et du Vin 10(2): 125-139.
Williams, L. E. (1994). Grape. In: Handbook of environmental physiology of fruit crops. pp. 86-118.
Orlando.
Williams, L. E. y P. J. Biscay (1991). "Partitioning of dry weight, nitrogen and potasium in Cabernet
sauvignon grapevines from anthesis until harvest." Am. J. enol. vitic 42(2): 113-117.
Yuste, J. (1995). Comportamiento fisiológico y agronómico de la vid (Vitis vinífera L.) en diferentes
sistemas de conducción en secano y regadío. Madrid, E.T.S.I. Agrónomos. Universidad Politécnica
de Madrid: 280.
Zufferey, V. (2000). Echanges gazeux des feuilles chez Vitis vinifera L. (cv. Chasselas) en fonction
des parametres climatiques et physiologiques et des modes de conduite de la vigne. Zurich, Ecole
Polytechnique Federale: 335.
Zufferey, V., F. Murisier y R. Schultz (2000). "A model analysis of the photosynthetic response of
Vitis vinifera L. cvs. Riesling and Chasselas leaves in the field: I. Interaction of age, light and

temperature." Vitis 39(1): 19-26.

FOTOSINTESIS 7.pdf

Más contenido relacionado

La actualidad más candente (20)

Similar a FOTOSINTESIS 7.pdf (20)

Más de IPN (20)

Último (20)

FOTOSINTESIS 7.pdf