IECH MEDICINA JIMENEZ CHAVEZ LUIS FERNANDO 2B PARASITOS INTESTINALES
- 1. INSTITUTO DE ESTUDIOS SUPERIORES DE CHIAPAS UNIVERSIDAD SALAZAR ESCUELA DE MEDICINA PROGRAMA EDUCATIVO BASES DE LA ECOLOGÍA DOCENTE BIOL. MARISOL PEREZ GUTIERREZ PRACTICA 6: PARÁSITOS INTESTINALES ESTUDIANTE LUIS FERNANDO JIMÉNEZ CHÁVEZ MATRICULA 4001200100 GRADO Y GRUPO 2.B TUXTLA GUTIÉRREZ CHIAPAS, A VIERNES 04 DE DICIEMBRE DE 2020
- 2. OBJETIVOS 1.OBJETIVO GENERAL: 1.1.Estudiar morfológicamente los paracitos intestinales. 1.2.OBJETIVOS ESPECÍFICOS: 1.2.1. Describir el método de faust y amiba en fresco. 1.2.2. Identificar el perfil coprológico. 1.2.3. Investigación de parásitos intestinales por un método de concentración de flotación.
- 3. INTRODUCCION PARASITOIS: CONCEPTOS • Parásito: Organismo animal o vegetal que vive sobre otro o dentro de él y a sus expensas. • Parasitosis: Enfermedad producida por Parásitos.
- 4. EPIDEMIOLOGIA En el ámbito mundial, la prevalencia de las parasitosis intestinales oscila entre 31,2% y 50,7% En nuestro país las frecuencias reportadas oscilan entre 45,7% y 87%. (2011). Afectan principalmente a los niños, entre 1 y 5 años.
- 7. PRACTICA 6. PARÁSITOS INTESTINALES (MÉTODO DE FAUS, AMIBA EN FRESCO, PERFIL COPROLÓGICO).
- 8. INTRODUCCIÓN • El examen coproparasitológico (CPS), que implica la investigación de quistes de protozoarios, huevecillos y larvas de helmintos, así como de parásitos adultos y sus fragmentos • Las muestras deben recolectarse en un periodo de 3 días sucesivos. • El método de faust es muy eficaz y tal vez el mas ampliamente conocido y utilizado, permite encontrar tanto quistes de protozoarios como huevecillos y larvas de helmintos en muestras no preservadas
- 9. MATERIAL TUBO DE ENSAYO DE 13 X 100MM ABATELENGUAS PIPETAS DE PASTEUR
- 10. BULBO DE HULE AGUA DESTILADA PORTAOBJETOS
- 12. Reactivo de faust (sulfato de zinc al 33%
- 14. MATERIAL BIOLOGICO Material fecal Especímenes de colección
- 15. METODO Se prepara una suspensión de material fecal, depositando una porción pequeña en frasco de vidrio o plástico y se añaden 10 ml de agua, se agita con abatelenguas hasta tener una suspensión homogénea Se transfiere la suspensión a un tubo de ensayo hasta llenar los dos tercios del tubo se centrifuga a 2500rpm a 3 minutos.
- 16. Se elimina el liquido sobrenada mente por decantación rápida y se agrega solución de sulfato de zinc a 33% hasta llenar a los dos tercios del tubo. Se tapa el tubo con papel Parafilm y se agita vigorosamente hasta suspender el sedimento.
- 17. Volver a centrifugar durante 3 minutos a 2500rpm Sin agitar o derramar el sobrenadante, se coloca el tubo cuidadosamente en una gradilla. .
- 18. Cuidadosamente con una pipeta de Pasteur, tomar 2 o 3 gotas de la película superficial del tubo y pasarla al portaobjetos, agregar una gota de Lugol. Observar a seco débil y seco fuerte. Realice esquemas de los paracitos observados.
- 19. Observe las laminas de colección y los especímenes de paracitos conservados en formol. Para una mejor identificación compare con esquemas de parásitos y ciclos de vida de los mismos con investigación bibliográfica.
- 20. En caso de encontrar en su muestra parásitos reportarlo al profesor.
- 21. RESULTADOS ESQUEMATICOS Los resultados esquemáticos para la muestra de copro es negativo, al realizar las pruebas correspondientes, no se aprecian parásitos en la porta objetos, por lo cual se muestra que el paciente de la muestra no presenta parásitos, ni larvas o huevecillos. Se concluye la practica con efectividad y se procede a la limpieza de todo el material y conclusiones de resultados.
- 22. DISCUSIÓN Y CONCLUSIÓN Para llevar a cabo esta interesante práctica de parásitos intestinales se utilizó una muestra de copro en el laboratorio , llevando el procedimiento que indica el manual de practicas, realizando paso por paso, algo que me pareció muy interesante es el uso de la centrifuga en donde se colocaron las muestras por tres minutos como máximo, después se sacaron las muestras y se realizo la observación en microscopio, descubriendo que son muchos los parásitos causar infecciones en el tracto gastrointestinal, el estudio de parásitos en heces, consiste en un examen microscópico de una muestra de heces para intentar detectar posibles parásitos que hayan infectado el tracto GI, ocasionando síntomas como diarrea, vomito, calentura, los parásitos o sus huevos se eliminan del tracto intestinal con las heces.
- 23. A lo largo del tiempo se han desarrollado diversas técnicas para el diagnóstico de los parásitos intestinales. Éstas han mejorado conforme el aumento de conocimientos sobre los ciclos de vida y la patogenia; además, la aparición de nuevas tecnologías han permitido la implementación de métodos con mayor sensibilidad y especificidad. Algunas técnicas abarcan la detección de varios parásitos; otras son específicas para un parásito o una fase parasitaria en particular. Sin embargo, no existe una técnica con eficacia de recuperación de 100%, que además sea de bajo costo y de fácil realización.
- 24. CUESTIONARIO DE PRÁCTICA I. Explique el fundamento de la técnica de Faust. II. Investigue que otros métodos coproparasitoscópico existen y explique su fundamento. III. Investigue que es un estudio de amiba en fresco. IV. Diga las ventajas y desventajas que a su juicio tiene la técnica de Faust. V. Explique por qué algunos parasitosis intestinales cursan de manera sintomática. VI. Por qué los parasitosis intestinales tienen alta prevalencia en México
- 25. BIBLIOGRAFIA • Carroll C. Karen. LANGE Microbiología Medica 27 ed. Mc. Graw Hill Interamericana, 201. • Romero Cabello Raúl, Microbiología y Parasitología Humana 4 ed. Panamericana 2018. • Murray R. Patrick. Microbiología Medica 8 ed ELSEVIER, 2017. • Bartlett, M. S., Harper, K., Smith, N., Verbanac, P., & Smith, J. W. (1978). Comparative evaluation of a modified zinc sulfate flotation technique. Journal of clinical microbiology, 7(6), 524-528. • Becker, A. C., Kraemer, A., Epe, C., & Strube, C. (2016). Sensitivity and efficiency of selected coproscopical methods—sedimentation, combined zinc sulfate sedimentation-flotation, and McMaster method. Parasitology research, 115(7), 2581-2587.