Profª. Drª. Priscila Mello
Elaborado por: Profa. Dra. Marta Bastos
Seqüência alvo
✓ Reação que permite a amplificação
de um fragmento específico de DNA,
aumentando a possibilidade de
visualização.
✓ “XEROX MOLECULAR”
✓ 1952 - Watson & Crick:
 Modelo da molécula de DNA
✓ 1971 - Gobind Khorana:
replicação de um pedaço de
DNA 2 primers.
✓ Maquinaria de
Replicação.
✓ Separação da dupla fita de DNA
- Helicase X Aumento da temperatura
✓ 1985 - Kary B. Mullis- Amplificação
de sequências de DNA.
Limitações:
-Síntese de primers
- Purificação de DNA polimerase
✓ Limitações:
- Síntese de primers
- Purificação de DNA polimerase
✓ 1976 - Thomas D. Brock
- DNA polimerase termoestável de
Thermus aquaticus .
✓ Desnaturação
✓ Anelamento
✓ Elongação
✓ Termociclador
✓ amostra de DNA (template- molde)
- DNA genômico
- cDNA
✓ primers (iniciadores)
✓ dNTPs
✓ DNA polimerase
✓ MgCl2
✓ Solução Tampão e água destilada
Aula de Engenharia Genética sobre PCR
Aula de Engenharia Genética sobre PCR
✓ primers (iniciadores)
✓ dNTPs
✓ DNA polimerase
✓ MgCl2
✓ Solução Tampão e água destilada
DNA
Esta reação permite a amplificação de qualquer
sequência de DNA coletada de amostras de materiais
biológicos como sangue, urina, outros fluidos corporais,
cabelo e fragmentos teciduais. Amostras de
microorganismos, células vegetais ou animais mesmo
que com milhares de anos, também podem ser
detectadas pela PCR.
* Aplicável em organismos mortos. Uma vez que a amplificação
ocorre in vitro, e depende apenas da amostra genética coletada,
não do complexo enzimático do organismo.
VANTAGENS
* Facilidade de contaminação: Devido a sua alta sensibilidade,
os fragmentos de amostras anteriormente trabalhadas
(amplicons na forma de aerossóis) podem vir a serem
amplificados no processo.
Para reduzir o risco de contaminações são fundamentais os
seguintes cuidados:
DESVANTAGENS
• A separação física em dois laboratórios “pré-PCR” e “pós-PCR”,
de modo que cada um tenha o máximo de independência
possível
• Descarte de ponteiras e tubos utilizados.
• Controle do fluxo de pessoas, também de visitantes externos,
mas principalmente do pessoal que pode transitar de um
laboratório para o outro. O maior risco de contaminação é
através dos amplicons (fragmentos de DNA) produzidos no
laboratório pós “PCR” e transportados pelos experimentadores
ate o laboratório de “pre-PCR”.
DESVANTAGENS
✓ Composta por ciclos
✓Desnaturação das cadeias
✓Anelamento dos Primers ou iniciadores
✓ Polimerização das novas cadeias complementares pela
ação da enzima Taq DNA polimerase.
Aula de Engenharia Genética sobre PCR
✓ Temperatura de 94 a 96ºC (3 a 5 minutos )
✓ Temperatura de 94 a 96ºC (30 segundos)
✓ Temperatura varia de acordo com os primers
✓Tempo
✓ Temperatura de 72ºC, tempo varia de acordo com tamanho
do amplicon
Desnaturação
Anelamento
Extensão
Final do ciclo
✓ Nº de ciclos variável: 25 a 30
Aula de Engenharia Genética sobre PCR
Aula de Engenharia Genética sobre PCR
1 ciclo = 2 Amplicons
2 ciclos = 4 Amplicons
3 ciclos = 8 Amplicons
4 ciclos = 16 Amplicons
5 ciclos = 32 Amplicons
6 ciclos = 64 Amplicons
7 ciclos = 128 Amplicons
No. No. Amplicons
Ciclos Copias do DNA alvo
1 2
2 4
3 8
4 16
5 32
6 64
20 1.048.576
30 1.073.741.824
✓ Eletroforese em gel de agarose
✓ Real time PCR ou PCR em tempo real
ou PCR quantitativo
Intensa padronização
Contaminação
Não automatizado
Necessidade de pós-processamento do produto
da PCR
Resultados não são expressos em números
Aula de Engenharia Genética sobre PCR
Aula de Engenharia Genética sobre PCR
Aula de Engenharia Genética sobre PCR
Aula de Engenharia Genética sobre PCR
Aula de Engenharia Genética sobre PCR
Aula de Engenharia Genética sobre PCR
✓ Real time PCR- PCR quantitativo
Aula de Engenharia Genética sobre PCR
 Diagnósticos de doenças infecciosas:
 O diagnóstico de doenças infecciosas tem
como principio a detecção do patógêno ou de
sua ação..
Atualmente, o PCR é utilizado em laboratórios de
investigação médica e biológica objetivando diferentes
tarefas, como a identificação de doenças hereditárias, a
construção de árvores filogenéticas, a clonagem de genes,
teste de paternidade, detecção de organismos causadores
de infecções, concepção de organismos transgênicos, entre
outras.
✓ Diagnósticos moleculares
Identificação de doenças hereditárias
Testes de paternidade
✓ Teste de paternidade
✓ Teste de paternidade
-Baseado em seqüências repetitivas encontradas no DNA
-Microssatélites (SNP- single nucleotide polimorphism): classe
de DNA repetitivo de poucas bases
- STR ou VNTRs : regiões com número variável de repetições
✓ Microsatélites (SNPs)
✓ Marcador molecular de
doença
✓ Teste de paternidade
(STRs ouVNTRs)
✓ Teste de paternidade
✓ Teste de paternidade
PM M F P1 P2
✓ Identificação de indivíduos
DNA controle
Acusado Vítima
Amostra
✓ Análise Forense
✓ Análise
Forense
✓ Análise da expressão de genes (RT-PCR)
- Extração de RNAm
- Preparo do cDNA
- gene de referência (gene constitutivo)
✓ RAPD (Randomly Amplified Polymorphic DNA – DNA
polimórfico randomicamente amplificado)- DNA
fingerprinting
– PCR utilizando-se iniciadores aleatórios em baixa
estringência (especificidade no produto de DNA a ser
amplificado)
– Não é necessário um conhecimento prévio do genoma
– Uniformidade no padrão de bandas para espécies
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Aula de Engenharia Genética sobre PCR

  • 1. Profª. Drª. Priscila Mello Elaborado por: Profa. Dra. Marta Bastos
  • 2. Seqüência alvo ✓ Reação que permite a amplificação de um fragmento específico de DNA, aumentando a possibilidade de visualização. ✓ “XEROX MOLECULAR”
  • 3. ✓ 1952 - Watson & Crick:  Modelo da molécula de DNA ✓ 1971 - Gobind Khorana: replicação de um pedaço de DNA 2 primers.
  • 5. ✓ Separação da dupla fita de DNA - Helicase X Aumento da temperatura
  • 6. ✓ 1985 - Kary B. Mullis- Amplificação de sequências de DNA.
  • 7. Limitações: -Síntese de primers - Purificação de DNA polimerase ✓ Limitações: - Síntese de primers - Purificação de DNA polimerase
  • 8. ✓ 1976 - Thomas D. Brock - DNA polimerase termoestável de Thermus aquaticus .
  • 11. ✓ amostra de DNA (template- molde) - DNA genômico - cDNA
  • 12. ✓ primers (iniciadores) ✓ dNTPs ✓ DNA polimerase ✓ MgCl2 ✓ Solução Tampão e água destilada
  • 15. ✓ primers (iniciadores) ✓ dNTPs ✓ DNA polimerase ✓ MgCl2 ✓ Solução Tampão e água destilada DNA
  • 16. Esta reação permite a amplificação de qualquer sequência de DNA coletada de amostras de materiais biológicos como sangue, urina, outros fluidos corporais, cabelo e fragmentos teciduais. Amostras de microorganismos, células vegetais ou animais mesmo que com milhares de anos, também podem ser detectadas pela PCR.
  • 17. * Aplicável em organismos mortos. Uma vez que a amplificação ocorre in vitro, e depende apenas da amostra genética coletada, não do complexo enzimático do organismo. VANTAGENS
  • 18. * Facilidade de contaminação: Devido a sua alta sensibilidade, os fragmentos de amostras anteriormente trabalhadas (amplicons na forma de aerossóis) podem vir a serem amplificados no processo. Para reduzir o risco de contaminações são fundamentais os seguintes cuidados: DESVANTAGENS
  • 19. • A separação física em dois laboratórios “pré-PCR” e “pós-PCR”, de modo que cada um tenha o máximo de independência possível • Descarte de ponteiras e tubos utilizados. • Controle do fluxo de pessoas, também de visitantes externos, mas principalmente do pessoal que pode transitar de um laboratório para o outro. O maior risco de contaminação é através dos amplicons (fragmentos de DNA) produzidos no laboratório pós “PCR” e transportados pelos experimentadores ate o laboratório de “pre-PCR”. DESVANTAGENS
  • 20. ✓ Composta por ciclos ✓Desnaturação das cadeias ✓Anelamento dos Primers ou iniciadores ✓ Polimerização das novas cadeias complementares pela ação da enzima Taq DNA polimerase.
  • 22. ✓ Temperatura de 94 a 96ºC (3 a 5 minutos )
  • 23. ✓ Temperatura de 94 a 96ºC (30 segundos)
  • 24. ✓ Temperatura varia de acordo com os primers ✓Tempo
  • 25. ✓ Temperatura de 72ºC, tempo varia de acordo com tamanho do amplicon
  • 26. Desnaturação Anelamento Extensão Final do ciclo ✓ Nº de ciclos variável: 25 a 30
  • 29. 1 ciclo = 2 Amplicons 2 ciclos = 4 Amplicons 3 ciclos = 8 Amplicons 4 ciclos = 16 Amplicons 5 ciclos = 32 Amplicons 6 ciclos = 64 Amplicons 7 ciclos = 128 Amplicons No. No. Amplicons Ciclos Copias do DNA alvo 1 2 2 4 3 8 4 16 5 32 6 64 20 1.048.576 30 1.073.741.824
  • 30. ✓ Eletroforese em gel de agarose
  • 31. ✓ Real time PCR ou PCR em tempo real ou PCR quantitativo
  • 32. Intensa padronização Contaminação Não automatizado Necessidade de pós-processamento do produto da PCR Resultados não são expressos em números
  • 39. ✓ Real time PCR- PCR quantitativo
  • 41.  Diagnósticos de doenças infecciosas:  O diagnóstico de doenças infecciosas tem como principio a detecção do patógêno ou de sua ação..
  • 42. Atualmente, o PCR é utilizado em laboratórios de investigação médica e biológica objetivando diferentes tarefas, como a identificação de doenças hereditárias, a construção de árvores filogenéticas, a clonagem de genes, teste de paternidade, detecção de organismos causadores de infecções, concepção de organismos transgênicos, entre outras.
  • 43. ✓ Diagnósticos moleculares Identificação de doenças hereditárias Testes de paternidade
  • 44. ✓ Teste de paternidade
  • 45. ✓ Teste de paternidade -Baseado em seqüências repetitivas encontradas no DNA -Microssatélites (SNP- single nucleotide polimorphism): classe de DNA repetitivo de poucas bases - STR ou VNTRs : regiões com número variável de repetições
  • 46. ✓ Microsatélites (SNPs) ✓ Marcador molecular de doença
  • 47. ✓ Teste de paternidade (STRs ouVNTRs)
  • 48. ✓ Teste de paternidade
  • 49. ✓ Teste de paternidade PM M F P1 P2
  • 50. ✓ Identificação de indivíduos
  • 53. ✓ Análise da expressão de genes (RT-PCR) - Extração de RNAm - Preparo do cDNA - gene de referência (gene constitutivo)
  • 54. ✓ RAPD (Randomly Amplified Polymorphic DNA – DNA polimórfico randomicamente amplificado)- DNA fingerprinting – PCR utilizando-se iniciadores aleatórios em baixa estringência (especificidade no produto de DNA a ser amplificado) – Não é necessário um conhecimento prévio do genoma – Uniformidade no padrão de bandas para espécies relacionadas